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        土木香乙酸乙酯提取物對人胰腺癌Capan-2細胞增殖的抑制作用及機制研究Δ

        2017-11-16 06:36:07王霖玲曾健梅閻優(yōu)優(yōu)張博林能明浙江中醫(yī)藥大學附屬杭州第一醫(yī)院轉(zhuǎn)化醫(yī)學研究中心杭州30006杭州市第一人民醫(yī)院南京醫(yī)科大學附屬杭州醫(yī)院轉(zhuǎn)化醫(yī)學研究中心杭州30006
        中國藥房 2017年31期
        關鍵詞:檢測

        王霖玲,曾健梅,閻優(yōu)優(yōu),張博,林能明,#(.浙江中醫(yī)藥大學附屬杭州第一醫(yī)院轉(zhuǎn)化醫(yī)學研究中心,杭州30006;.杭州市第一人民醫(yī)院/南京醫(yī)科大學附屬杭州醫(yī)院轉(zhuǎn)化醫(yī)學研究中心,杭州30006)

        土木香乙酸乙酯提取物對人胰腺癌Capan-2細胞增殖的抑制作用及機制研究Δ

        王霖玲1*,曾健梅1,閻優(yōu)優(yōu)2,張博2,林能明1,2#(1.浙江中醫(yī)藥大學附屬杭州第一醫(yī)院轉(zhuǎn)化醫(yī)學研究中心,杭州310006;2.杭州市第一人民醫(yī)院/南京醫(yī)科大學附屬杭州醫(yī)院轉(zhuǎn)化醫(yī)學研究中心,杭州310006)

        目的:研究土木香乙酸乙酯提取物(IHE)對人胰腺癌Capan-2細胞增殖的抑制作用及機制。方法:采用MTT法測定0、0.5、1、2、4、8 μg/mL的IHE作用48 h后細胞的增殖抑制率,克隆形成試驗觀察0、1、2 μg/mL的IHE作用1周后對細胞克隆形成的影響,Hoechst 33342染色法觀察0、2、4 μg/mL的IHE作用48 h后細胞核形態(tài)的變化,流式細胞術檢測0、4、8、16 μg/mL的IHE作用48 h后細胞的凋亡率,JC-1染色法觀察0、4、8、16 μg/mL的IHE作用24 h后細胞線粒體膜電位變化,Western blot法檢測0、4、8、16 μg/mL的IHE作用48 h后細胞線粒體凋亡相關蛋白Bcl-2、Bax、Mcl-1和p53上調(diào)凋亡因子(PUMA)、多聚二磷酸腺苷核糖聚合酶(PARP)蛋白的表達。結(jié)果:2、4、8 μg/mL的IHE對細胞的增殖有明顯抑制作用,且呈濃度依賴性,半數(shù)抑制濃度為6.6 μg/mL;1、2 μg/mL的IHE可明顯抑制細胞的克隆形成;4 μg/mL的IHE可明顯造成細胞核固縮;8、16 μg/mL的IHE可明顯促進細胞凋亡,16μg/mL的IHE作用48 h后細胞凋亡率達到45.53%;16 μg/mL的IHE作用24 h后可引起82.47%的細胞線粒體膜電位下降;8 μg/mL的IHE可明顯下調(diào)細胞中Bcl-2、Mcl-1、PUMA、PARP蛋白表達,16 μg/mL的IHE可明顯下調(diào)細胞中Mcl-1、PUMA表達。結(jié)論:IHE可能通過引起細胞線粒體膜電位的下降,下調(diào)細胞中PUMA、Mcl-1蛋白的表達,引起細胞的凋亡,從而發(fā)揮其抑制人胰腺癌Capan-2細胞增殖的作用。

        土木香;乙酸乙酯提取物;人胰腺癌Capan-2細胞;線粒體;細胞凋亡

        胰腺癌是惡性程度最高的腫瘤之一,預計在2030年將成為病死率第二高的惡性腫瘤[1]。由于大多數(shù)胰腺癌患者確診時已處于晚期,失去了手術機會,因此全身化療對于晚期胰腺癌患者來說顯得至關重要。盡管已有大量的研究致力于開發(fā)抗胰腺癌藥物,但胰腺癌患者的5年生存率在過去40年沒有明顯提高,仍低于5%[2]。我國中藥資源豐富,尚有許多具有抗腫瘤活性的天然藥物仍處于開發(fā)階段。土木香系菊科旋覆花屬植物,為多年生草本,其根供藥用,具有健胃、利尿和驅(qū)蟲的功效[3]。有研究表明,土木香的醇提取物中富含倍半萜內(nèi)酯類成分,而該類成分具有較強的抗腫瘤活性,對頭頸部鱗狀細胞癌、成膠質(zhì)細胞瘤、前列腺癌等具有明顯的細胞毒作用,但對胰腺癌的作用尚不明確[4]。本研究在獲得土木香醇提取物的基礎上[5-6],進一步用乙酸乙酯萃取,得到了富含倍半萜內(nèi)酯類成分的土木香乙酸乙酯提取物(Inula helenium ethyl acetate extract,IHE),并探討IHE對人胰腺癌Capan-2細胞增殖的抑制作用及機制。

        1 材料

        1.1 儀器

        FACSCantoⅡ型流式細胞儀(美國BD公司);SpectraMax M3型全波長多功能酶標儀(美國Molecular Devices公司);高速冷凍離心機(美國Thermo Fisher公司);Microsystems CMS GmbH Am Friendensplatz 3型熒光顯微鏡(德國Leica公司);ChemiDoc XRS+型凝膠成像系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司)。

        1.2 藥品與試劑

        RPMI 1640培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Gibco公司);胰蛋白酶-EDTA消化液(0.25%)、MTT(北京索萊寶科技有限公司);熒光素異硫氰酸(FITC)標記的膜聯(lián)蛋白Ⅴ(AnnexinⅤ-FITC)/碘化丙啶(PI)凋亡檢測試劑盒(美國BD公司,批號:6119908);線粒體膜電位檢測試劑盒(美國SAB公司,批號:H16);Hoeschst 33258染色液(碧云天生物技術研究所);兔源B細胞白血病2(Bcl-2)、Bax、p53上調(diào)凋亡因子(PUMA)、髓樣細胞白血病1(Mcl-1)、多聚二磷酸腺苷核糖聚合酶(PARP)單克隆抗體和鼠源β-肌動蛋白(β-actin)單克隆抗體(美國Abcam公司);辣根過氧化酶(HRP)標記的二抗(武漢艾美捷科技有限公司);其余試劑均為分析純。

        1.3 細胞

        人胰腺癌Capan-2細胞購于中國科學院上海生物化學與細胞生物學研究所細胞庫,以含10%胎牛血清的RPMI 1640為培養(yǎng)基,在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

        2 方法

        2.1 IHE的提取

        將10.0 kg干燥的土木香根莖磨成粗粉,95%乙醇浸泡48 h,在室溫下用20倍的95%乙醇滲濾提取,真空濃縮,得到粗提物,約3.7 kg。將粗提物溶于1.5 L溫水中,并用3倍量的乙酸乙酯(3×1.5 L)萃取后,減壓蒸發(fā),得到370.16 g的IHE(產(chǎn)率為3.7%)。用香草醛-硫酸比色法驗證IHE中含有生物活性化合物[3]。臨用時,用二甲基亞砜(DMSO)制備成高濃度母液后,用培養(yǎng)基稀釋成不同質(zhì)量濃度的IHE樣品溶液。

        2.2 MTT法檢測細胞的增殖活性

        收集對數(shù)生長期的Capan-2細胞,以離心半徑為13.5 cm、1 000 r/min離心3 min,棄上清液,用培養(yǎng)基吹打成細胞懸液。然后分別以5×103個細胞/孔的密度接種于96孔板中,每孔100 μL,置于細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,然后分別加入質(zhì)量濃度分別為0(空白對照,含DMSO的培養(yǎng)液,下同)、1、2、4、8 μg/mL的IHE。作用48 h后,棄培養(yǎng)液,加入50 μL的MTT溶液,在細胞培養(yǎng)箱中繼續(xù)孵育4 h后,離心去上清,每孔加入100 μL的DMSO,輕微振蕩使藍色結(jié)晶完全溶解。用全波長多功能酶標儀測每孔的光密度(OD),檢測波長為570 nm,參照波長為650 nm。試驗重復3次,每次設定5個平行復孔。細胞增殖抑制率(%)=(1-給藥孔OD均值/空白對照孔OD均值)×100%。使用GraphPad Prism 5軟件計算半數(shù)抑制濃度(IC50)。

        2.3 克隆形成試驗檢測細胞的克隆形成能力

        收集對數(shù)生長期的Capan-2細胞,計數(shù),以500個細胞/孔的細胞密度接種于6孔板中,置于細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h后,加入0(空白對照)、1、2 μg/mL的IHE,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1周。取出,棄去原培養(yǎng)液,以磷酸鹽緩沖液(PBS)洗2遍,然后用4%的多聚甲醛固定20 min,用吉姆薩(Giemsa)染液染色20 min。PBS洗干凈后晾干,拍照觀察細胞集落形成數(shù)量。試驗重復3次。

        2.4 Hoechst 33342染色試驗觀察細胞核形態(tài)變化

        收集對數(shù)生長期的Capan-2細胞,以2×104個細胞/孔的密度接種于24孔板中,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,加入0(空白對照)、2、4 μg/mL的IHE,培養(yǎng)48 h。棄原培養(yǎng)液,用PBS洗2遍,然后每孔加入1 mL的4%多聚甲醛固定20 min。用PBS洗2遍后,再每孔加入300 μL的Hoechst 33342熒光染色液,于細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)20 min。取出后棄培養(yǎng)液,PBS洗2遍,用熒光顯微鏡觀察細胞核變化,并拍照記錄。試驗重復3次。

        2.5 AnnexinⅤ-FITC/PI雙染法流式細胞術檢測細胞的凋亡情況

        收集對數(shù)生長期的Capan-2細胞,以2×105個細胞/孔的密度接種于6孔板中,將細胞置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,加入0(空白對照)、4、8、16 μg/mL的IHE培養(yǎng)48 h,收集上清培養(yǎng)液,用胰酶消化細胞并收集。之后加入300 μL的AnnexinⅤ-FITC凋亡檢測試劑盒中的緩沖液、5 μL的AnnexinⅤ-FITC染液,輕輕混勻后,于2~8℃避光條件下培養(yǎng)15 min。再加入10 μL的PI,輕輕混勻,于2~8℃避光條件下培養(yǎng)5 min后,流式細胞儀檢測,計算細胞凋亡率(%)。試驗重復3次。

        2.6 JC-1染色法檢測細胞內(nèi)線粒體膜電位

        收集對數(shù)生長期的Capan-2細胞,以2×105個細胞/孔的密度接種于6孔板中,將細胞置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,加入0(空白對照)、4、8、16 μg/mL的IHE培養(yǎng)24 h。收集上清培養(yǎng)液,用胰酶消化并收集細胞,然后用PBS洗2遍。每個樣本加入500 μL的JC-1工作液,于細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)15 min后,用流式細胞儀檢測膜電位下降細胞比例。試驗重復3次。

        2.7 Western blot法檢測細胞中凋亡相關蛋白的表達

        收集對數(shù)生長期的Capan-2細胞,分別加入0(空白對照)、4、8、16 μg/mL的IHE培養(yǎng)48 h后,采用細胞裂解液收集細胞。二喹啉甲酸(BCA)蛋白定量檢測試劑盒測定總蛋白濃度,將樣品調(diào)整至等濃度后分裝,-80℃保存。以β-actin為內(nèi)參進行十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE),并轉(zhuǎn)移至聚偏二氟乙烯膜(PVDF)上。用50 g/L的脫脂奶粉溶液室溫封閉1 h后,分別加入1∶1 000稀釋的一抗(Bcl-2、Bax、Mcl-1、PUMA、PARP、β-actin),4℃孵育過夜,用緩沖液TBST洗膜3次,每次10 min。然后加入HRP標記的二抗(1∶5 000),于室溫條件下培養(yǎng)2 h,再用緩沖液TBST洗膜3次,每次10 min。用超敏化學發(fā)光試劑顯影檢測,應用化學發(fā)光成像儀進行圖像采集,以目標蛋白條帶的灰度值與內(nèi)參β-actin條帶灰度值的比值表示目標蛋白的相對表達量。試驗重復3次。

        2.8 統(tǒng)計學方法

        3 結(jié)果

        3.1 IHE對Capan-2細胞體外增殖的影響

        IHE對細胞的增殖抑制率呈明顯的濃度依賴性增加。與0μg/mL比較,2、4、8 μg/mL的IHE作用48 h后細胞的增殖抑制率均明顯升高(P<0.05或P<0.01),其中8 μg/mL的IHE對Capan-2的抑制率超過了80%。1、2、4、8 μg/mL的IHE作用48 h后,細胞的增殖抑制率分別為(7.01±1.84)%、(12.39±3.84)%、(38.23±3.30)%、(80.83±1.37)%(n=3),IC50為6.6 μg/mL。

        3.2 IHE對Capan-2細胞克隆形成的影響

        克隆形成試驗也表明,不同質(zhì)量濃度IHE對Capan-2細胞的增殖有不同程度的抑制作用。經(jīng)Giemsa染色后可看出,IHE作用于細胞1周后,隨著其質(zhì)量濃度的增加,細胞集落形成數(shù)逐漸減少。與0 μg/mL比較,2 μg/mL的IHE作用1周后細胞集落形成數(shù)明顯減少(P<0.01)。0、1、2 μg/mL的IHE作用1周后細胞集落形成數(shù)分別為(362.67±17.90)、(234.67±17.79)、(74.33±6.11)個(n=3)。

        3.3 IHE對Capan-2細胞核的影響

        以2、4 μg/mL的IHE作用于細胞48 h后,細胞核固縮,熒光強度顯著增加,且4 μg/mL的IHE作用較2 μg/mL明顯。這一結(jié)果也證實了IHE能抑制Capan-2細胞的增殖,染色后熒光顯微圖見圖1。

        圖1 不同質(zhì)量濃度IHE作用48 h后細胞核的熒光顯微圖(Hoechst 33342染色,×40)Fig1 Fluorescence micrographs of nuclear morphology after 48 h with different mass concentrations of IHE(Hoechst 33342 staining,×40)

        3.4 IHE對Capan-2細胞凋亡的影響

        4、8、16 μg/mL的IHE作用于細胞48 h后,細胞凋亡率均不同程度升高,且呈明顯的濃度依賴性。與0 μg/mL比較,8、16 μg/mL的IHE作用后細胞凋亡率均明顯升高(P<0.01)。0、4、8、16 μg/mL的IHE作用48 h后細胞的凋亡率依次為(8.43±2.47)%、(12.87±4.52)%、(23.97±3.24)%、(40.60±8.27)%(n=3),流式圖見圖2。

        圖2 不同質(zhì)量濃度IHE作用48 h后細胞凋亡的流式圖Fig2 Flow cytometry charts of cell apoptosis after 48 h with different mass concentrations of IHE

        3.5 IHE對細胞線粒體膜電位的影響

        4、8、16 μg/mL的IHE作用于細胞24 h后,均可不同程度地降低細胞線粒體膜電位,且呈明顯的濃度依賴性。與0 μg/mL比較,16 μg/mL的IHE作用后線粒體膜電位下降細胞比例為(82.47±1.25)%(P<0.01)。0、4、8、16 μg/mL的IHE作用24 h后線粒體膜電位下降的細胞比例依次為(3.8±0.61)%、(10.87±0.83)%、(19.2±1.01)%、(82.47±1.25)%,結(jié)果見圖3。

        圖3 不同質(zhì)量濃度IHE作用24 h后細胞線粒體膜電位的流式圖Fig3 Flow cytometry charts of mitochondria membrane potential after 24 h with different mass concentrations of IHE

        3.6 IHE對細胞線粒體凋亡相關蛋白表達的影響

        與0 μg/mL比較,8 μg/mL的IHE作用于細胞48 h后,細胞中Bcl-2、Mcl-1、PUMA、PARP蛋白表達明顯減弱(P<0.05或P<0.01);16 μg/mL的IHE作用于細胞48 h后,細胞中PUMA、Mcl-1蛋白表達明顯減弱(P<0.01)。蛋白表達電泳結(jié)果見圖4、測定結(jié)果見表2。

        圖4 不同質(zhì)量濃度IHE作用48 h后細胞線粒體凋亡相關蛋白的電泳圖Fig4 Electrophoresis charts of mitochondrial apoptosis-related proteins after 48 h with different mass concentrations of IHE

        4 討論

        在本研究中,筆者采用了不同方法來驗證IHE對胰腺癌Capan-2細胞有增殖抑制作用,包括MTT試驗、克隆形成試驗和細胞核熒光染色試驗。在進行克隆形成試驗時,因作用時間較長,藥物濃度應低于IC50,故筆者采用了0、1、2 μg/mL的IHE進行試驗。在MTT預試驗中,筆者設置了0、0.5、1、2、4、8、16、32 μg/mL的等濃度梯度,結(jié)果當IHE質(zhì)量濃度為8 μg/mL時細胞的增殖抑制作用已經(jīng)達到峰值,故正式試驗時IHE的質(zhì)量濃度設置為0、0.5、1、2、4、8 μg/mL。

        表2 不同質(zhì)量濃度IHE作用48 h后細胞線粒體凋亡相關蛋白的測定結(jié)果(±s,n=3)Tab2 Determination results of mitochondrial apoptosis-related proteins after 48 h with different mass concentrations of IHE(±s,n=3)

        表2 不同質(zhì)量濃度IHE作用48 h后細胞線粒體凋亡相關蛋白的測定結(jié)果(±s,n=3)Tab2 Determination results of mitochondrial apoptosis-related proteins after 48 h with different mass concentrations of IHE(±s,n=3)

        注:與0 μg/mL比較,*P<0.05,**P<0.01Note:vs.0 μg/mL,*P<0.05,**P<0.01

        PARP/β-actin 0.77±0.01 0.66±0.01 0.31±0.02*0.78±0.01 IHE質(zhì)量濃度,μg/mL 0481 6 Bax/β-actin 1.41±0.02 1.27±0.01 1.26±0.02 1.28±0.03 Bcl-2/β-actin 0.82±0.03 0.58±0.01 0.41±0.02*0.98±0.03 Mcl-1/β-actin 1.48±0.08 0.51±0.02 0.17±0.01**0.08±0.01**PUMA/β-actin 1.01±0.03 0.63±0.01 0.23±0.01**0.28±0.03**

        JC-1是一種陽離子染料,可以檢測細胞線粒體膜電位的變化。當細胞線粒體膜電位較高時,JC-1能聚集在線粒體基質(zhì)中,形成聚合物,產(chǎn)生紅色熒光;當線粒體膜電位較低時,JC-1不能聚集,以單體存在,此時產(chǎn)生綠色熒光[7]。當JC-1從紅色熒光到綠色熒光轉(zhuǎn)變時可以反映出線粒體膜電位的下降,而線粒體膜電位下降則是細胞早期凋亡的一個重要標志。線粒體膜電位下降后可以促使線粒體釋放細胞色素C[8],細胞色素C與凋亡酶激活因子(Apaf-1)結(jié)合后能夠催化半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶9(Caspase-9)的活化,最終使下游Caspase-3活化而誘導細胞凋亡[9]。PARP作為細胞凋亡核心成員Caspase水解的切割底物,其在DNA損傷修復和細胞凋亡中發(fā)揮著重要作用。PARP在體內(nèi)是Caspase-3的主要切割對象,被剪切后PARP的羧基端的催化結(jié)構(gòu)域(89 kD)和氨基端的DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域(24 kD)分離,使其失去酶活力,其裂解片段的出現(xiàn)被認為是細胞凋亡的重要信號[7]。Bcl-2家族蛋白成員是線粒體凋亡通路的重要調(diào)節(jié)因子,如Bak、Bax等可以促進細胞凋亡,Bcl-2、Mcl-1等可以抑制細胞凋亡,另外還有一些BH3-only蛋白(如NOXA、PUMA等)也可促進細胞凋亡。

        本研究結(jié)果顯示,Capan-2細胞經(jīng)IHE處理后,隨著IHE質(zhì)量濃度的增加細胞線粒體膜電位明顯下降,細胞凋亡率明顯升高。此外,從Western blot的結(jié)果也可以看到,抑凋亡蛋白Mcl-1的表達隨著IHE質(zhì)量濃度的增加而減弱;而Bcl-2的表達也隨著IHE質(zhì)量濃度的增加而減弱,但在高質(zhì)量濃度(16 μg/mL)IHE的作用下則有反饋性的上調(diào);而促凋亡蛋白Bax則無明顯變化。BH3-only蛋白PUMA的表達也隨著IHE質(zhì)量濃度的增加而減弱。PARP在高質(zhì)量濃度IHE處理后出現(xiàn)裂解片段。本研究結(jié)果表明,IHE可能是通過引起線粒體膜電位的下降,從而引起胰腺癌Capan-2細胞的凋亡。

        綜上所述,IHE對人胰腺癌Capan-2細胞具有較強的體外增殖抑制作用。其作用機制可能是通過引起線粒體膜電位的下降,下調(diào)細胞中Mcl-1、PUMA蛋白的表達,從而引起胰腺癌細胞的凋亡。

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        Study on the Inhibitory Effect and Mechanism of Inula helenium Ethyl Acetate Extract on Proliferation of Human Pancreatic Cancer Capan-2 Cells

        WANG Linling1,ZENG Jianmei1,YAN Youyou2,ZHANG Bo2,LIN Nengming1,2(1.Transformational Medicine Research Center,Hangzhou First Hospital Affiliated to Zhejiang University of TCM,Hangzhou 310006,China;2.Transformational Medicine Research Center,Hangzhou First People’s Hospital/Hangzhou Hospital Affiliated to Nanjing Medical University,Hangzhou,310006,China)

        OBJECTIVE:To study the inhibitory effect and mechanism of Inula helenium ethyl acetate extract(IHE)on proliferation of human pancreatic cancer Capan-2 cells.METHODS:MTT was used to determine the cell proliferation inhibition rate after treated by 0,0.5,1,2,4,8 μg/mL IHE;clone formation test was used to observe the effects of 0,1,2 μg/mL IHE treating for 1 week on cell clone formation;Hoechest 33342 staining was used to observe the changes of nuclear morphology after treated by 0,2,4 μg/mL IHE for 48 h;flow cytometry was used to detect the cell apoptosis rate after treated by 0,4,8,16 μg/mL IHE for 48 h;JC-1 staining was used to observe the changes of intracellular mitochondrial membrane potential after treated by 0,4,8,16 μg/mL IHE for 24 h;Western blot was used to detect the expressions of mitochondrial apoptosis-related proteins Bcl-2,Bax,Mcl-1,p53 upregulated modulator of apoptosis(PUMA),and polymerase(PARP)after treated by 0,4,8,16 μg/mL IHE for 48 h.RESULTS:2,4,8 μg/mL IHE had obvious inhibitory effect on cell proliferation,showing concentration-dependent relationship,with IC50of 6.6 μg/mL;1,2 μg/mL IHE can obviously inhibit the clone formation of cells;4 μg/mL IHE can obviously cause cell nuclear condensation;8,16 μg/mL IHE can obviously promote the cell apoptosis,and the cell apoptosis rate reached 45.53%after treated by 16 μg/mL IHE for 48 h;16 μg/mL IHE treating for 24 h can cause the decrease of 82.47%cells’mitochondrial membrane potential;8 μg/mL IHE can obviously down-regulate the protein expressions of Bcl-2,Mcl-1,PUMA and PARP,and 16 μg/mL IHE can obviously down-regulate the expressions of Mcl-1 and PUMA.CONCLUSIONS:IHE may show its inhibitory effect on proliferation of human pancreatic cancer Capan-2 cells by causing the decrease of mitochondrial membrane potential in cells and down-regulating the protein expressions of Mcl-1 and PUMA to cause cell apoptosis.KEYWORDSInula helenium;Ethyl acetate extract;Human pancreatic cancer Capan-2 cells;Mitochondrion;Cell apoptosis

        R285.5

        A

        1001-0408(2017)31-4384-05

        DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2017.31.17

        浙江省衛(wèi)生高層次創(chuàng)新人才培養(yǎng)工程項目(No.2010-190-4)

        *碩士研究生。研究方向:腫瘤藥理學。電話:0571-56007664。E-mail:sweetyling@126.com

        #通信作者:教授,主任藥師,博士生導師。研究方向:臨床藥理學、臨床毒理學。電話:0571-56007809。E-mail:lnm1013@163.com

        2017-02-09

        2017-08-10)

        (編輯:林靜)

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