夏 陳，陳 建*，張盈嬌，朱永清，李華佳，鄧俊琳

（四川省農業(yè)科學院農產品加工研究所，四川 成都 610066）

紅陽獼猴桃多糖組分的分離純化、單糖組成及其抑制癌細胞活性

夏 陳，陳 建*，張盈嬌，朱永清，李華佳，鄧俊琳

（四川省農業(yè)科學院農產品加工研究所，四川 成都 610066）

研究紅陽獼猴桃果實多糖組分的分離純化、單糖組成及其對癌細胞增殖的抑制作用。用水提取總多糖，層析法分離純化多糖組分；高效凝膠滲透色譜測定組分的純度和分子質量；高效液相色譜法測定多糖純組分的單糖組成；傅里葉變換紅外（Fourier transform-infrared，F(xiàn)T-IR）光譜鑒定多糖純組分的特征官能團；用3-（4,5-二甲基噻唑-2）-2,5-二苯基四氮唑溴鹽法測定多糖純組分對肺癌、乳腺癌、肝癌、胃癌和結腸癌這5 種癌細胞的體外抑制活性?？偠嗵欠蛛x出ACP-1、ACP-2、ACP-3、ACP-4這4 種單組分多糖；其中ACP-3純度最高，分子質量為2 663 kD，主要含有L-鼠李糖（17.78%，物質的量分數(shù)，后同）、D-半乳糖醛酸（25.25%）、D-半乳糖（25.45%）、L-阿拉伯糖（20.51%）、D-葡萄糖（6.14%）、D-甘露糖（2.13%）、D-木糖（1.03%）、D-葡萄糖醛酸（0.97%）及少量D-巖藻糖（0.74%）；其FT-IR光譜圖有多糖特征官能團的吸收峰。ACP-3對5 種癌細胞增殖的半數(shù)最大抑制濃度依次為0.646、0.310、0.642、0.281、0.575 μmol/L，對癌細胞增殖有抑制活性。

紅陽獼猴桃果；多糖組分；提取分離；單糖組成；抑癌活性

紅陽獼猴桃（Actinidia chinensis）屬中華系獼猴桃品種，是1989年從四川省蒼溪縣的中華獼猴桃實生苗中選出的大果紅肉新品種，富含多種維生素、氨基酸、微量元素等營養(yǎng)成分且總糖含量高，其口感及品質佳且售價高，被列入國家保護資源，并形成一種世界性產業(yè)[1-5]。目前已有關于紅陽獼猴桃種植及果實貯藏保鮮的研究[6-8]，也有關于紅陽獼猴桃果實中活性物質總黃酮[9]、氨基酸[10]、花青素及多酚類等的研究[11-14]。獼猴桃果實多糖具有抗癌[15-16]、降血糖降血脂[17]、刺激皮膚膠原蛋白合成[18]、抗衰老[19]等生物活性。通常經提取純化的總多糖中包括各種組分，其中僅部分組分是活性多糖，因此有必要把總多糖分級純化并做活性篩選得到活性多糖。目前鮮見對紅陽獼猴桃果實多糖的研究報道。

本實驗研究紅陽獼猴桃果實總多糖的提取，通過二乙氨基乙基纖維素52（diethylaminoethyl cellulose 52，DEAE-52）和葡聚糖凝膠G200層析分離純化多糖組分，高效凝膠滲透色譜（high performance gel permeation chromatography，HPGPC）法測定多糖組分的純度和分子質量，1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮（1-phenyl-3-methyl-5-pyrazolone，PMP）柱前衍生-高效液相色譜（high performance liquid chromatography，HPLC）法[20]測定多糖純組分的單糖組成，傅里葉變換紅外（Fourier transform infrared，F(xiàn)T-IR）光譜測定特征官能團吸收峰，以及用3-（4,5-二甲基噻唑-2）-2,5-二苯基四氮唑溴鹽（3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide，MTT）法[21]測定純組分的抑制癌細胞活性，為紅陽獼猴桃營養(yǎng)健康價值的利用提供科學依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

紅陽獼猴桃果產于成都市都江堰。

胃癌細胞SGC7901、結腸癌細胞HT29、乳腺癌細胞MCF-7、肺癌細胞NCI-H460、肝癌細胞HepG2南京科佰公司；胎牛血清、胰蛋白酶 美國HyClone公司。

DEAE-52、葡聚糖凝膠G200、D-甘露糖、L-鼠李糖、D-葡萄糖醛酸、D-半乳糖醛酸、D-葡萄糖、D-木糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖、D-巖藻糖對照品、葡聚糖標準品 國藥集團化學試劑有限公司。甲醇、乙腈（均為色譜純） 美國Sigma公司；透析袋（截留分子質量大于3 000 D） 華美生物工程公司。

1.2 儀器與設備

UV-1750分光光度計 日本島津公司；Hei-VAP Advantage ML旋轉蒸發(fā)儀 德國Heidolph公司；FD-1A-50冷凍干燥機 北京比朗有限公司；H2050R-1高速離心機 湖南湘儀離心機儀器有限公司；1260型HPLC儀 美國安捷倫公司；MILLI-Q超純水儀 美國Millipore公司；IGO150二氧化碳培養(yǎng)箱、ST-360酶標儀上?？迫A生物工程股份有限公司；EclipseTS100倒置式生物顯微鏡 日本Nikon公司。

1.3 方法

1.3.1 紅陽獼猴桃總多糖的提取

稱取2.0 kg成熟的紅陽獼猴桃果，打漿，加入6 000 mL蒸餾水，于40 ℃攪拌提取2 h；然后6 000 r/min離心8 min，后續(xù)離心條件相同，取上清液， 60 ℃減壓濃縮至3 00 mL溶液，加入9 mL 2 mol/L三氯乙酸溶液沉降蛋白質；然后離心除蛋白質，取上清液加入2 倍體積無水乙醇，醇沉12 h；離心，取沉淀復溶于水，再加入2 倍體積無水乙醇，醇沉12 h；再離心，取沉降物經冷凍干燥得略帶色固體，稱質量。將所得固體物取樣配制成1 mg/mL水溶液，分別于280 nm和260 nm波長處做紫外掃描，檢測其蛋白質和核酸含量情況；用碘-碘化鉀試劑檢測其是否含有淀粉；咔唑-硫酸試劑檢測是否含有糖醛酸。用苯酚-硫酸法[22]檢測該固體的總多糖含量。根據(jù)公式（1）計算總多糖得率。

式中：m1為總多糖質量/g；m2為鮮果質量/g。

1.3.2 紅陽獼猴桃總多糖的分離純化

1.3.2.1 DEAE-52離子交換層析

將紅陽獼猴桃粗多糖配制成質量濃度3.8 mg/mL的溶液，用蒸餾水平衡DEAE-52（中等堿性陰離子交換劑）層析柱后，上樣10 mL溶液，控制洗脫流速為0.8 mL/min，先用60 mL超純水洗脫，再依次以0.1、0.2、0.3、1.0 mol/L的NaCl溶液各100 mL洗脫，每10 mL收集一管，并用苯酚-硫酸法[22]測定多糖含量，繪制曲線圖，合并同一洗脫峰的收集液，濃縮、透析、凍干。多次上樣分離粗多糖，用前述層析條件制備各單組分多糖樣品。以苯酚-硫酸法測定各單組分多糖含量。根據(jù)公式（2）計算各單組分多糖的得率。

式中：m1為各單組分多糖質量/g；m2為總多糖質量/g。

1.3.2.2 葡聚糖凝膠G200二次分離純化

取DEAE-52離子交換層析分離純化得到的單組分多糖各20 mg，分別配制成質量濃度5.0 mg/mL的溶液樣品，用蒸餾水平衡葡聚糖凝膠G200層析柱，上樣1 mL，用0.1 mol/L NaCl溶液洗脫，控制洗脫流速為0.8 mL/min，每3 mL收集于一管并測定單組分多糖含量，繪制曲線圖，并收集單一峰洗脫液。

1.3.3 單組分多糖純度及分子質量測定

采用HPGPC法，精確稱量葡聚糖標準品0.5 g，其分子質量分別為6、10、40、100、200、500、2 000、5 000 kD，用純凈水溶解并定容至100 mL，配制成5 mg/mL的葡聚糖標準溶液。色譜柱為PL aquagel-OH不銹鋼柱（300 mm×7.5 mm，8 μm）；柱溫30 ℃；流動相為純凈水；流速為1.0 mL/min；檢測器為示差折光檢測器，柱溫40 ℃；進樣量為10 μL。用標準葡聚糖分子質量的對數(shù)值（lg M）對洗脫時間做洗脫曲線，得到葡聚糖分子質量分布的標準曲線。用同樣操作方法和色譜條件測定獼猴桃果單組分多糖的洗脫曲線，測定其純度，并用標準曲線計算得到單組分多糖的分子質量。

1.3.4 單組分多糖的組成分析

1.3.4.1 單組分多糖的水解

取紅陽獼猴桃單組分多糖約20 mg，加入到5.0 mL的安瓿瓶中，向瓶中加入4.0 mL 2 mol/L H2SO4溶液，用酒精噴燈封管，然后將瓶置于烘箱中于l05 ℃水解8 h。冷卻后取反應瓶，用BaCO3調整H2SO4溶液至pH 7，然后于6 000 r/min離心6 min，取上清液；沉淀再用5 mL蒸餾水超聲洗滌，6 000 r/min離心，取上清液；將2 次的上清液合并，用0.25 μm微孔濾膜過濾后，于80 ℃濃縮至0.5 mL備用。

1.3.4.2 PMP柱前衍生-HPLC法分析單糖組成

單糖衍生：分別取1.3.4.1節(jié)的水解濃縮液和D-甘露糖、L-鼠李糖、D-葡萄糖醛酸、D-半乳糖醛酸、D-葡萄糖、D-木糖、D-半乳糖、L-阿拉伯糖、D-巖藻糖9 種單糖對照品溶液（3.0 mmol/L）各400 μL，依次加入200 μL 0.5 mol/L PMP甲醇溶液和400 μL 0.3 mol/L NaOH溶液，混勻；于70 ℃水浴反應40 min，取出，冷卻10 min后，用400 μL 0.3 mol/L HCl溶液中和；然后以2 mL氯仿萃?。ㄤ鰷u振蕩，6 000 r/min離心8 min），細針頭吸棄下層氯仿相，重復萃取3 次。取上層水相，過濾，以10 μL進樣。

色譜條件：色譜柱ZORBAX SB-C18柱（150 mm×4.6 mm，5.0 μm）；檢測波長為250 nm；柱溫為室溫；流速為1.0 mL/min；進樣體積為10 μL；流動相分別為：（A）0.05 mol/L磷酸鹽溶液（pH 6.9）-15%乙腈、（B）0.05 mol/L磷酸鹽溶液（pH 6.9）-40%乙腈，線性洗脫為0～10 min，0%～8% B，10～30 min，8%～20% B。

采用面積歸一化法按公式（3）計算各單糖組分的物質的量分數(shù)。

式中：S1為各單糖組分峰面積/（mAU·s）；S2為各單糖組分峰面積之和/（mAU·s）。

1.3.5 單組分多糖的FT-IR光譜檢測

取5.0 mg單組分多糖組分樣品，用溴化鉀（KBr）壓片法，以FT-IR光譜儀于4 000～600 cm-1掃描測試。

1.3.6 單組分多糖的癌細胞毒性實驗

1.3.6.1 癌細胞培養(yǎng)

分別取胃癌細胞SGC7901、結腸癌細胞HT29、乳腺癌細胞MCF-7、肺癌細胞NCI-H460、肝癌細胞HepG25 種癌細胞株，吸出舊培養(yǎng)液，再加入500 μL的新鮮胰酶，消化3～4 min。用顯微鏡觀察至細胞被完全消化，脫壁后，加入3 mL培養(yǎng)液終止消化，反復吹打混勻。將液體轉移到15 mL離心管中，于8 000 r/min離心4 min。取出離心管，吸出管內液體，加入新培養(yǎng)液1 mL，用無菌槍頭反復吹打使細胞充分混勻，然后將細胞放于37 ℃及含5% CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

1.3.6.2 對癌細胞增殖的抑制作用

采用MTT法進行測定。收集對數(shù)期的這5 種癌細胞，調節(jié)細胞懸液至密度約為5×104個/mL，每孔100 μL加入到96 孔板，置于37 ℃、5% CO2的細胞培養(yǎng)箱孵育24 h，倒置顯微鏡下觀察并加入紅陽獼猴桃單組分多糖樣品溶液。樣品溶液加入結束后，每孔加入100 μL質量濃度為5 mg/mL的MTT溶液，繼續(xù)培養(yǎng)4 h，在每孔加入150 μL二甲基亞砜，置搖床上低速振蕩10 min，使結晶物充分溶解。用酶聯(lián)免疫檢測儀于492 nm波長處測定吸光度，求抑制率和半數(shù)最大抑制濃度（half maximal inhibitory concentration，IC50）。

2 結果與分析

2.1 紅陽獼猴桃總多糖的提取

得到略帶色固體狀產物10.5 g，相對于鮮果質量得率為0.525%。該固體物溶液經紫外掃描，在280 nm和260 nm波長處吸收信號極低，表明其幾乎不含蛋白質和核酸。碘-碘化鉀試劑檢測結果顯示不含淀粉。咔唑-硫酸試劑檢測結果表明含有糖醛酸。該固體物經苯酚-硫酸法定性鑒定為多糖，定量計算得其質量分數(shù)為73%。通常不同的提取方法對多糖的純度、理化性質及生物活性會產生影響。文獻報道過不同提取方法對軟棗獼猴桃果多糖單糖組成及抗氧化活性的影響，有高溫、低溫、微波助提3 種方法[23]，其中采用100 ℃高溫水提多糖溶入了大量淀粉，而采用與本實驗相同的低溫（40 ℃）水提方法則不含淀粉。本實驗采用低溫水提法有利于保持總多糖的天然性狀及純度，也避免了高溫或微波助提方法導致多糖分子斷裂和理化性質的改變。

2.2 總多糖的分離純化及單組分多糖分子質量

2.2.1 DEAE-52離子交換層析分析

圖1 總多糖的DEAE-52離子交換層析Fig. 1 Chromatography of crude polysaccharides on DEAE-52 column

由圖1可知，紅陽獼猴桃總多糖經DEAE-52柱層析梯度洗脫分離后得到4 個洗脫峰：ACP-1、ACP-2、ACP-3和ACP-4。其中60～120 mL洗脫液為0.1 mol/L NaCl，洗脫得到第一個組分ACP-1；140～220 mL洗脫液為0.1、0.2 mol/L NaCl，洗脫得到組分ACP-2；230～290 mL洗脫液為0.2、0.3 mol/L NaCl，洗脫得到組分ACP-3；300～370 mL洗脫液為0.3 mol/L NaCl，洗脫得到組分ACP-4。色譜柱多次上樣分離，合并同一洗脫峰的收集液經處理后得到紅陽獼猴桃4 個組分多糖固體：ACP-1 250.2 mg，相對總多糖固體的得率（后同）為11.56%，多糖含量（后同）為82.5%；ACP-2 854.3 mg，得率39.50%，多糖含量83.7%；ACP-3 588.1 mg，得率27.20%，多糖含量84.3%；ACP-4 308.6 mg，得率14.25%，多糖含量87.2%；4 個組分的總得率為92.51%。為了確認這4 個組分為單組分多糖，以利于對其進行深入的理化和活性特性研究，又對這4 個組分分別用葡聚糖凝膠G200進行第二次分離實驗。

2.2.2 單組分多糖的葡聚糖凝膠G200二次分離

ACP-1、ACP-2、ACP-3、ACP-4經葡聚糖凝膠G200柱層析，結果如圖2所示。ACP-1經二次層析分離得4 個洗脫峰，表明該組分含有4 種分子質量范圍的多糖。由于在葡聚糖凝膠G200層析柱中，這4 個洗脫峰分離度低，不易收集，因此本研究不再對該組分進一步探討。而單組分多糖ACP-2、ACP-3、ACP-4經過葡聚糖凝膠G200柱層析時仍然得到單一洗脫峰，表明這3 種組分為均勻多糖組分，并以HPGPC測定其純度并計算分子質量。

圖2 4 種單組分多糖的葡聚糖凝膠G200層析Fig. 2 Chromatography of four polysaccharide fractions on Sephadex G200 column

2.2.3 單組分多糖的純度和分子質量

圖3 ACP-2（A）、ACP-3（B）和ACP-4（C）的HPGCP圖Fig. 3 HPGCP chromatograms of ACP-2 (A), ACP-3 (B) and ACP-4 (C)

HPGCP測定結果如圖3所示，ACP-2和ACP-4仍非純組分，DEAE-52離子交換層析和葡聚糖凝膠G200層析對單組分多糖的分離效率都不如HPGCP。HPGCP結果證明ACP-3是純度最高的一個單組分多糖，在6.744 min有峰型很好的主峰，僅在7.228 min有一小的洗脫峰。根據(jù)制備的葡聚糖分子質量分布標準曲線計算得ACP-3的分子質量為2 663 kD。鑒于ACP-3的純度最高，故采用ACP-3進一步研究其單糖組成和FT-IR光譜特征，及其抑制癌細胞增殖的生物活性。

2.3 ACP-3的單糖組成及結構分析

2.3.1 PMP柱前衍生-HPLC法分析單糖組成

圖4 ACP-3單糖組成的HPLC圖Fig. 4 HPLC chromatograms of monosaccharides from ACP-3

由圖4可知，ACP-3含有全部對照的9 種單糖；各種單糖的物質的量分數(shù)分別為：L-鼠李糖17.78%、D-半乳糖醛酸25.25%、D-半乳糖25.45%、L-阿拉伯糖20.51%、D-葡萄糖6.14%、D-甘露糖2.13%、D-木糖1.03%、D-葡萄糖醛酸0.97%、及少量D-巖藻糖0.74%；另外可能還有少量未被標識的單糖。與文獻報道的軟棗獼猴桃果多糖單糖組成[23]相比，同是低溫水提取方法，紅陽獼猴桃單組分多糖ACP-3的D-半乳糖醛酸和L-鼠李糖含量遠高于軟棗獼猴桃對應單糖含量（6.64%、4.16%）；而其含有的D-甘露糖和L-阿拉伯糖則遠低于軟棗獼猴桃多糖的這2種單糖（14.35%、38.37%）；紅陽獼猴桃ACP-3的D-半乳糖含量與軟棗獼猴桃的D-半乳糖含量（24.75%）接近。結果也說明紅陽獼猴桃果多糖與其他獼猴桃品種的多糖存在差異，有其自身特點。

2.3.2 FT-IR光譜分析

圖5 多糖組分ACP-3的FT-IR光譜圖Fig. 5 FT-IR spectrum of ACP-3

紅陽獼猴桃ACP-3的FT-IR光譜分析由圖5可知，ACP-3具有多糖的結構特征吸收[24-26]：在波數(shù)3 426 cm-1左右處出現(xiàn)的寬而強的吸收峰是羥基的O—H伸縮振動吸收峰；在波數(shù)2 940 cm-1處左右出現(xiàn)的弱的吸收峰是烷基的C—H伸縮振動吸收峰；1 614 cm-1和1 416 cm-1處的吸收峰正是含有的糖醛酸羰基（C＝O）伸縮振動峰，且糖醛酸可能以鈉鹽的形式存在，該紅外吸收特征峰印證了糖醛酸單糖成分的存在；1 200～1 000 cm-1是C—O—C和C—O—H伸縮振動。

2.4 ACP-3對癌細胞毒性的影響

圖6 ACP-3對5 種癌細胞抑制率的影響Fig. 6 Inhibitory effect of ACP-3 on the proliferation of five cancer cells

ACP-3含有多種成分的單糖，推測其生物活性可能具有多樣性，用MTT法體外實驗測定其對5 種癌細胞的生長抑制率及其IC50，結果如圖6所示。當ACP-3濃度小于等于0.375 5 μmol/L時，其對5 種癌細胞的抑制率均隨ACP-C濃度的增大而顯著增加（P＜0.05）；但超過0.375 5 μmol/L后，對不同癌細胞的抑制率有所不同，對肺癌細胞NCI-H460的抑制率呈顯著性增加（P＜0.05），對其余癌細胞的抑制率均未因濃度增大而產生顯著性差異；當ACP-3濃度從1.502 1 μmol/L上升至3.004 2 μmol/L時，對肺癌細胞NCI-H460和乳腺癌細胞MCF-7細胞的抑制率無顯著增加，但對其余癌細胞的抑制率均有顯著性增加（P＜0.05）。ACP-3對肺癌細胞NCI-H460、乳腺癌細胞MCF-7、肝癌細胞HepG2、胃癌細胞SGC7901、結腸癌細胞HT29的IC50，由計算得到分別為0.646、0.310、0.642、0.281、0.575 μmol/L。ACP-3對胃癌細胞SGC7901的IC50最小，因而對其抑制活性最大；其次是對乳腺癌細胞MCF-7的抑制作用；對其他3 種癌細胞的作用相對較弱。多糖的抗癌作用包括間接（免疫刺激）和直接（抑制細胞增殖和/或誘導細胞凋亡）兩種途徑[27-30]。ACP-3對胃癌和乳腺癌細胞的抑制活性相對強，值得探討其對癌細胞的抑制機制，并可作為合適的化學結構修飾以期顯著提高其抑癌活性。

3 結 論

紅陽獼猴桃果經提取的總多糖分離得ACP-1、ACP-2、ACP-3、ACP-4 4 種單組分多糖，其中純度最高的組分是ACP-3，其分子質量為2 663 kD；其含有的單糖種類多樣，包括L-鼠李糖、D-半乳糖醛酸、D-半乳糖、L-阿拉伯糖、D-葡萄糖、D-甘露糖、D-木糖、D-葡萄糖醛酸及少量D-巖藻糖等；單糖組成的多樣性是多糖組分生物活性的分子結構基礎；ACP-3組分的FT-IR光譜分析也確認有源于單糖結構中的C＝O、O—H、C—H、C—O—C官能團的特征吸收。ACP-3對體外實驗的肺癌細胞NCI-H460、乳腺癌細胞MCF-7、肝癌細胞HepG2、胃癌細胞SGC7901、結腸癌細胞HT29這5 種癌細胞增殖都有一定抑制活性，且對胃癌細胞增殖的抑制活性最大。研究結果提示了紅陽獼猴桃果多糖的保健功能，也為紅陽獼猴桃（特別是其殘次果）的精深加工及增值利用提供了理論依據(jù)。

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Isolation, Purification, Monosaccharide Composition and Anticancer Proliferation Activity of Polysaccharide Fraction from Hongyang Kiwi Fruits (Actinidia chinensis)

XIA Chen, CHEN Jian*, ZHANG Yingjiao, ZHU Yongqing, LI Huajia, DENG Junlin

(Institute of Agro-Products Processing Science and Technology, Sichuan Academy of Agricultural Sciences, Chengdu 610066, China)

The aim of this study was the isolation, purification, monosaccharide composition and anticancer activity of polysaccharide fractions from Hongyang kiwi fruits. Crude polysaccharides were obtained through water extraction.Column chromatography was applied to isolate and purify polysaccharide fractions. High performance gel permeation chromatography (HPGPC) was carried out to test the purity and molecular masses of the fractions. Monosaccharide composition of the purest polysaccharide fraction was tested by high performance liquid chromatography (HPLC), and its characteristic functional groups were identified by Fourier transform infrared (FT-IR) spectroscopy. The in vitro growth inhibitory effect of the pure polysaccharide fraction on lung cancer cell NCI-H460, breast cancer cell MCF-7, liver cancer cell HepG2, gastric cancer cell SGC7901, and colorectal cancer cell HT29 were determined by the 3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide (MTT) assay. Four fractions (ACP-1, ACP-2, ACP-3 and ACP-4)were isolated from the crude polysaccharides. ACP-3 was the purest fraction with a molecular mass of 2 663 kD. The monosaccharide composition analysis indicated that ACP-3 consisted of L-rhamnose (17.78%), D-galacturonic acid (25.25%),D-galactose (25.45%), L-arabinose (20.51%), D-glucose (6.14%), D-mannose (2.13%), D-xylose (1.03%), D-glucuronic acid(0.97%) and D-fucose (0.74%). The characteristic absorbance of functional groups was observed in the FT-IR spectrum of ACP-3 fraction. The half maximal inhibitory concentrations (IC50) of ACP-3 against NCI-H460, MCF-7, HepG2, SGC7901 and HT29 cell lines were 0.646, 0.310, 0.642, 0.281 and 0.575 μmol/L, respectively. ACP-3 showed a significant inhibitory effect on the proliferation of all tested cancer cell lines.

Hongyang kiwi fruit; polysaccharide fraction; extraction and isolation; monosaccharide composition; anticancer activity

10.7506/spkx1002-6630-201721020

TS255.1

A

1002-6630（2017）21-0126-06

2016-07-19

四川省財政創(chuàng)新能力提升工程優(yōu)秀論文基金專項（2014LWJJ-008）；四川省農科院條件建設專項-院人才項目

夏陳（1983—），男，助理研究員，碩士，研究方向為功能食（藥）品。E-mail：xiachen3722496@163.com

*通信作者：陳建（1969—），男，研究員，博士，研究方向為功能食（藥）品。E-mail：jc_saas@yahoo.com

夏陳, 陳建, 張盈嬌, 等. 紅陽獼猴桃多糖組分的分離純化、單糖組成及其抑制癌細胞活性[J]. 食品科學, 2017, 38(21):126-131.

10.7506/spkx1002-6630-201721020. http://www.spkx.net.cn

XIA Chen, CHEN Jian, ZHANG Yingjiao, et al. Isolation, purification, monosaccharide composition and anticancer proliferation activity of polysaccharide fraction from Hongyang kiwi fruits (Actinidia chinensis)[J]. Food Science, 2017,38(21): 126-131. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201721020. http://www.spkx.net.cn