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        結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白真核表達(dá)載體的構(gòu)建及其在HEK293T細(xì)胞中的分泌性表達(dá)

        2017-11-06 01:24:56白娜毛瑩瑩顏仁和林明陳興露李青青陳惠瑩劉軍李紅衛(wèi)
        生物技術(shù)通訊 2017年4期
        關(guān)鍵詞:真核結(jié)核結(jié)核病

        白娜,毛瑩瑩,顏仁和,林明,陳興露,李青青,陳惠瑩,劉軍,李紅衛(wèi)

        1.南方醫(yī)科大學(xué) 檢驗(yàn)與生物技術(shù)學(xué)院生物治療研究所,廣東 廣州 510515;2.云南省玉溪市人民醫(yī)院 核醫(yī)學(xué)科,云南 玉溪 653100;3.廣州伯尼茲生物科技有限公司,廣東 廣州 510663

        結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白真核表達(dá)載體的構(gòu)建及其在HEK293T細(xì)胞中的分泌性表達(dá)

        白娜1,2,毛瑩瑩1,顏仁和3,林明2,陳興露1,李青青1,陳惠瑩1,劉軍1,李紅衛(wèi)1

        1.南方醫(yī)科大學(xué) 檢驗(yàn)與生物技術(shù)學(xué)院生物治療研究所,廣東 廣州 510515;2.云南省玉溪市人民醫(yī)院 核醫(yī)學(xué)科,云南 玉溪 653100;3.廣州伯尼茲生物科技有限公司,廣東 廣州 510663

        目的:構(gòu)建含結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白基因的真核表達(dá)載體并轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞,高效表達(dá)分泌性38kD蛋白。方法:設(shè)計(jì)合成的結(jié)核分枝桿菌38kD基因被克隆到T載體,然后亞克隆到真核表達(dá)載體pcDNA3.0,經(jīng)酶切鑒定正確后,PEI轉(zhuǎn)染法導(dǎo)入293T細(xì)胞,換不含血清的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)3d后收集細(xì)胞及上清,采用Western印跡檢測(cè)38kD蛋白的表達(dá)。結(jié)果:酶切結(jié)果顯示,獲得正確的含38kD基因的重組表達(dá)載體;Western印跡結(jié)果顯示表達(dá)載體導(dǎo)入293T細(xì)胞中后能在細(xì)胞及上清中檢測(cè)到38kD蛋白表達(dá)。結(jié)論:構(gòu)建了含重組結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白基因的真核表達(dá)載體pcDNA3.0-38kD,該載體可在哺乳動(dòng)物細(xì)胞HEK293T中高效分泌性表達(dá)38kD蛋白,為結(jié)核病診斷試劑盒研發(fā)奠定了基礎(chǔ)。

        結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白;真核表達(dá)載體;分泌表達(dá);HEK293T細(xì)胞

        近年來由于人口劇增、移民增加、旅游業(yè)發(fā)展、耐藥性產(chǎn)生、人類免疫缺陷病毒感染流行、吸毒、酗酒與貧困等原因,結(jié)核病在全球范圍內(nèi)死灰復(fù)燃,呈回升趨勢(shì)[1-2]。我國(guó)結(jié)核病疫情目前依然很嚴(yán)重,是世界上結(jié)核病高負(fù)擔(dān)第二大國(guó),僅次于印度[3-4]。結(jié)核桿菌的檢測(cè)方法主要有細(xì)菌學(xué)、免疫學(xué)及分子生物學(xué)方法等,前者是結(jié)核病控制、流行病學(xué)調(diào)查和臨床醫(yī)生用于診斷及鑒別診斷結(jié)核的金標(biāo)準(zhǔn),但因其耗時(shí)長(zhǎng),陽性率低而受限;分子生物學(xué)技術(shù)雖然檢查快速、靈敏,但也存在對(duì)技術(shù)及人員素質(zhì)要求高、操作復(fù)雜等問題;免疫學(xué)診斷方法操作簡(jiǎn)便、快速,便于推廣,且有良好的特異性和敏感性,具有血清學(xué)診斷價(jià)值,成為結(jié)核病診斷的良好輔助方法[5-7]。研究表明,38kD抗原上具有結(jié)核復(fù)合體特異的T淋巴細(xì)胞抗原決定簇,可以誘導(dǎo)強(qiáng)烈的抗體和T淋巴細(xì)胞反應(yīng),部分對(duì)抗結(jié)核分枝桿菌感染作用[8]。在本研究中,我們利用基因工程技術(shù)構(gòu)建了含結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白基因的表達(dá)載體,并以PEI轉(zhuǎn)染法導(dǎo)入HEK293T細(xì)胞,高效分泌表達(dá)38kD蛋白,為結(jié)核病診斷試劑盒研發(fā)奠定了基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        人胚腎細(xì)胞系HEK293T、表達(dá)載體pcDNA3.0為本實(shí)驗(yàn)室保存;大腸桿菌DH5α、報(bào)告基因增強(qiáng)型綠色熒光蛋白(EGFP)購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司;pcDNA3.0-EGFP由本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建;限制性內(nèi)切酶NheⅠ、MluⅠ、EcoRⅤ和DL2000 DNA marker購(gòu)自 TaKaRa公司;Blunting酶、1mmol/L dNTP購(gòu)自New England Biolabs公司;限制性內(nèi)切酶ApaⅠ購(gòu)自Thermo scientific公司;T4DNA連接酶購(gòu)自Roche公司;蛋白marker、質(zhì)??焖傩√嵩噭┖匈?gòu)自GeneStar公司;瓊脂糖凝膠片段回收試劑盒購(gòu)自Magen生物公司;DNA清潔回收試劑盒購(gòu)自Axygen公司;脫脂奶粉、PVDF膜購(gòu)自Bio-Rad公司;抗6×His單克隆抗體購(gòu)自天根公司;羊抗小鼠IgG-HRP購(gòu)自Solarbio公司;細(xì)胞基礎(chǔ)培養(yǎng)基DMEM、胎牛血清(FBS)、胰酶、磷酸鹽緩沖液(PBS)粉末購(gòu)自Hyclone公司。

        1.2 重組表達(dá)載體pcDNA3.0-38kD的構(gòu)建及鑒定

        根據(jù)結(jié)核分枝桿菌國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)強(qiáng)毒株H37Rv(GenBank Accession:AL123456.3)的基因組序列,設(shè)計(jì)合成編碼38kD嵌合蛋白的cDNA片段,序列經(jīng)過優(yōu)化(http://www.jcat.de)以適于在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中表達(dá)(圖1)。

        合成的cDNA片段被克隆到T載體獲得重組質(zhì)粒pMD19T-38kD[通用生物系統(tǒng)(安徽)有限公司],用NheⅠ、MluⅠ雙酶切獲得38kD基因片段約1152bp,進(jìn)行補(bǔ)平、清潔處理;真核表達(dá)載體pcDNA3.0用EcoRⅤ單酶切后去磷酸化處理。將pcDNA3.0酶切回收產(chǎn)物與38kD基因片段用T4DNA連接酶連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)菌,挑過夜培養(yǎng)的LB平板上的單克隆接種到5mL含100μg/mL氨芐西林的LB液體培養(yǎng)基中,37℃搖床培養(yǎng)過夜,提取質(zhì)粒,得到重組載體質(zhì)粒pcDNA3.0-38kD。用ApaⅠ酶切pcDNA3.0和重組質(zhì)粒,瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

        圖1 結(jié)核分枝桿菌38kD嵌合蛋白cDNA編碼核苷酸序列

        1.3 重組載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞

        用含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基常規(guī)培養(yǎng)HEK293T細(xì)胞,轉(zhuǎn)染前1d胰酶消化、傳代細(xì)胞,鋪于6孔板中,細(xì)胞匯合度約80%時(shí)即可用PEI法將pcDNA3.0-EGFP及pcDNA3.0-38kD重組載體質(zhì)粒進(jìn)行轉(zhuǎn)染[9-10]。轉(zhuǎn)染24h后將培養(yǎng)基換成無血清的DMEM培養(yǎng)基,轉(zhuǎn)染48h后觀察細(xì)胞熒光,判斷轉(zhuǎn)染效率。

        1.4 Western印跡檢測(cè)38kD蛋白的表達(dá)

        換液后第3d收集細(xì)胞上清,4℃、13 000r/min離心5min;每孔細(xì)胞用PBS洗滌2次后加入含1%PMSF的RIPA裂解液200μL,冰上裂解30min,收集細(xì)胞黏液于滅菌EP管中,加入50μL 5×還原上樣緩沖液,金屬浴煮沸10min裂解細(xì)胞,4℃、13 000r/min離心 5min,取上清進(jìn)行SDS-PAGE,用濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,用10%脫脂奶粉液室溫?fù)u床溫和振蕩3h封閉,用1∶5000稀釋的His一抗于4℃孵育過夜;用1×TBST洗膜4次,每次 7min;用 1∶10 000稀釋的HRP標(biāo)記的山羊抗小鼠二抗室溫?fù)u床溫和振蕩孵育 50min,用 1×TBST洗膜4次,每次7min;每張膜加500μL發(fā)光液,暗室中用感光膠片顯色。

        2 結(jié)果

        2.1 結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白基因重組真核表達(dá)載體的鑒定

        pcDNA3.0和pcDNA3.0-38kD的ApaⅠ酶切鑒定結(jié)果見圖2。重組質(zhì)粒pcDNA3.0-38kD第2、10、12號(hào)酶切后獲的的小片段條帶位置與預(yù)期大小相符(正向連接小片段為984bp),表明38kD重組表達(dá)質(zhì)粒pcDNA3.0-38kD構(gòu)建成功。

        2.2 重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞

        分別用pcDNA3.0-EGFP和pcDNA3.0-38kD重組載體轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞,48h時(shí)在熒光顯微鏡下觀察,判斷轉(zhuǎn)染效率。pcDNA3.0-EGFP轉(zhuǎn)染的細(xì)胞有較強(qiáng)的熒光,pcDNA3.0-38kD轉(zhuǎn)染后細(xì)胞無熒光,與預(yù)期結(jié)果相符,說明轉(zhuǎn)染成功(圖3)。

        2.3 Western印跡檢測(cè)38kD蛋白在細(xì)胞中的表達(dá)

        重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞24h后,換為不含血清的DMEM培養(yǎng)基,換液后第3d收取細(xì)胞及上清蛋白,樣品處理后,用Western印跡在細(xì)胞及上清中均可檢測(cè)到38kD蛋白的表達(dá),而轉(zhuǎn)染pcDNA3.0-EGFP的對(duì)照組沒有相應(yīng)條帶(圖4)。

        圖2 重組質(zhì)粒pcDNA3.0-38kD的單酶切鑒定

        圖3 重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞48h的熒光情況

        圖4 Western印跡鑒定細(xì)胞及上清中38kD蛋白的表達(dá)

        3 討論

        結(jié)核病的快速準(zhǔn)確診斷是全球控制結(jié)核病的重要措施。1998年,Cole等分離和鑒定出一些極具輔助診斷潛力的特異性蛋白質(zhì)抗原[11],為結(jié)核病特異性診斷奠定了基礎(chǔ)。結(jié)核桿菌分泌蛋白38kD的免疫學(xué)活性最強(qiáng),其用于單項(xiàng)診斷結(jié)核病的效果優(yōu)于其他單一抗原[12-14]。38kD蛋白又名蛋白抗原b(Pab),是一種磷酸鹽轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,是結(jié)核桿菌分泌較多的抗原,日益成為研究熱點(diǎn)[15]。38kD蛋白屬于分泌蛋白,結(jié)核病患者體內(nèi)抗38kD蛋白的抗體水平較高,是結(jié)核桿菌最主要的免疫原[16],目前被證明是最有效的單個(gè)血清學(xué)診斷抗原。有關(guān)學(xué)者對(duì)CFP10-ESAT6、38kD、Ag85B和HspX等4種結(jié)核相關(guān)抗原的研究顯示,單一抗原中38kD的診斷性能最佳,特異度和靈敏度均較高[16]。38kD蛋白廣泛用于結(jié)核病的血清學(xué)診斷試驗(yàn),檢測(cè)的敏感性和特異性均較高[17]。

        哺乳動(dòng)物細(xì)胞能夠正確有效地識(shí)別真核蛋白的合成、加工和分泌信號(hào),識(shí)別并去除基因中的內(nèi)含子,再經(jīng)過剪切加工成為成熟的mRNA,并準(zhǔn)確地完成糖基化、磷酸化及蛋白水解等翻譯后加工過程,產(chǎn)生具有生物學(xué)活性,最接近天然蛋白的重組產(chǎn)物[18]。對(duì)比于胞質(zhì)內(nèi)表達(dá),分泌表達(dá)有眾多優(yōu)勢(shì):簡(jiǎn)化蛋白產(chǎn)物的檢測(cè)與純化,降低生物處理工藝的復(fù)雜性,減少細(xì)胞相關(guān)蛋白的降解,提高蛋白產(chǎn)物的產(chǎn)量與質(zhì)量等[19]。

        為了使重組結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中高水平、分泌性表達(dá),我們?cè)O(shè)計(jì)合成了含小鼠Igk信號(hào)肽38kD嵌合蛋白的cDNA片段,并將其克隆到真核表達(dá)載體pcDNA3.0中,通過PEI方法導(dǎo)入哺乳動(dòng)物細(xì)胞HEK293T,在轉(zhuǎn)染細(xì)胞及其培養(yǎng)上清中都能檢測(cè)到38kD蛋白,說明構(gòu)建了含結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白的重組真核表達(dá)載體,且能在哺乳動(dòng)物細(xì)胞293T中高效表達(dá)并分泌到細(xì)胞外。另外,由于嵌合蛋白C端含有6×His標(biāo)簽而可使用鎳柱進(jìn)行純化。總之,我們構(gòu)建了結(jié)核分枝桿菌38kD蛋白重組真核表達(dá)質(zhì)粒,可將其用于轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞大量生產(chǎn)純化38kD蛋白,從而為結(jié)核病診斷試劑盒研發(fā)奠定了基礎(chǔ)。

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        Construction of Eukaryotic Expression Vector of Mycobacte?rium tuberculosis38kD Protein and its Secretory Expres?sion in HEK293T Cells

        BAI Na1,2,MAO Ying-Ying1,YAN Ren-He3,LIN Ming2,CHEN Xing-Lu1,LI Qing-Qing1,CHEN Hui-Ying1,LIU Jun1,LI Hong-Wei1*
        1.School of Laboratory Medicine and Biotechnology,Southern Medical University,Guangzhou 510515;2.Department of Nuclear Medicine,Yuxi People's Hospital of Yunnan Province,Yuxi 653100;3.Guangzhou Bioneeds Biotechnology Co.,Ltd,Guangzhou 510663;China.

        Objective:To construct a robust expressing vector of Mycobacterium tuberculosis 38kD protein,which is able to induce high efficient and secretory expression of 38kD protein in transfected HEK293T cells.Methods:The 38kD gene of M.tuberculosis was synthesized and cloned to T-vector,and then subcoloned into the pcDNA3.0 vector.The recombinant pcDNA3.0-38kD was verified by enzyme digestion,and then transfected into HEK293T cells by polyethylenemine(PEI)-based transfection.The transfected cells and supernatants were collected separately for the detection of 38kD protein by Western blot after the media were changed to serum-free DMEM media for 3 days.Results:We have obtained a robust M.tuberculosis 38kD protein expressing vector,pcDNA3.0-38kD,which can elicit the expression of high level of 38kD protein in both cell supernatants and lysates in transfectedHEK293T cells.Conclusion:High level of secretory M.tuberculosis 38kD protein was expressed in mammalian cells,and it can be potentially used in the development of serological diagnostic kit for tuberculosis.

        Mycobacterium tuberculosis 38kD protein;eukaryotic expression system;secretory expression;HEK293T cells

        Q78

        A

        1009-0002(2017)04-0451-04

        2017-02-27

        白娜(1984- ),女,檢驗(yàn)技師,碩士研究生,(E-mail)bn_281525013@163.com;毛瑩瑩(1988- ),女,博士,(E-mail)maoyy2011@163.com;二者為并列第一作者

        李紅衛(wèi),(E-mail)hongweil@yahoo.com

        10.3969/j.issn.1009-0002.2017.04.009

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