周艷華,范安然,黃文竹
(1.貴州醫(yī)科大學(xué) 生物與工程學(xué)院;2.貴州醫(yī)科大學(xué) 組織工程與干細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中心,貴陽(yáng) 貴州 550004)
抗凍保護(hù)劑中蔗糖濃度決定卵母細(xì)胞脫除抗凍保護(hù)劑的方法
周艷華1,范安然1,黃文竹2
(1.貴州醫(yī)科大學(xué) 生物與工程學(xué)院;2.貴州醫(yī)科大學(xué) 組織工程與干細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中心,貴陽(yáng) 貴州 550004)
本研究實(shí)驗(yàn)一采用三種添加不同濃度蔗糖的預(yù)處理液(S1,S2,S3)分別處理小鼠卵母細(xì)胞20mim,以PBS溶液或0.5mol/L蔗糖溶液脫除抗凍保護(hù)劑,統(tǒng)計(jì)卵母細(xì)胞的存活率.S1液為含10%v/v的PBS溶液;S2液在S1液的基礎(chǔ)上蔗糖濃度添加至0.034mol/L;S3液在S1液的基礎(chǔ)上蔗糖濃度添加至0.38mol/L.結(jié)果顯示:以PBS液直接脫除抗凍保護(hù)劑,S1,S2,S3組卵母細(xì)胞的存活率分別為0,20%,54%.以0.5mol/L的蔗糖溶液脫除抗凍保護(hù)劑,S1,S2,S3組卵母細(xì)胞存活率分別為43%,50%,75%.實(shí)驗(yàn)二所有卵母細(xì)胞以 S1液預(yù)處理 3min,然后分別以 ES1,ES2,ES3液處理 30s,采用 PBS,0.25mol/L或 0.5 mol/L蔗糖溶液脫除抗凍保護(hù)劑.ES1液為40%v/v的EG溶液中添加了0.3mol/L的蔗糖;ES2液的蔗糖濃度為0.5mol/L;ES3液的蔗糖濃度為0.8mol/L.結(jié)果顯示,隨著蔗糖濃度的提高,卵母細(xì)胞以PBS脫除抗凍保護(hù)劑的存活率顯著提高(ES3組57%vs ES1組3%).該研究表明,預(yù)處理液或玻璃化液中添加蔗糖,均能影響卵母細(xì)胞脫除抗凍保護(hù)劑的方法.結(jié)論,在卵母細(xì)胞冷凍實(shí)驗(yàn)中,應(yīng)根據(jù)冷凍液的成分設(shè)計(jì)相應(yīng)的抗凍保護(hù)劑脫除方法.
卵母細(xì)胞;抗凍保護(hù)劑;蔗糖濃度;抗凍保護(hù)劑脫除
從1985年Rall等發(fā)明玻璃化冷凍以來(lái)[1],該技術(shù)已在小鼠,牛,人等卵母細(xì)胞和胚胎冷凍上廣泛應(yīng)用.隨著對(duì)玻璃化冷凍原理的研究,玻璃化液也有了較大的改進(jìn).其中的主要成分有滲透性抗凍保護(hù)劑和非滲透性抗凍保護(hù)劑.滲透性抗凍保護(hù)劑有二甲基亞砜,乙二醇,丙二醇,丙三醇等;非滲透性抗凍保護(hù)劑有聚蔗糖,聚乙二醇,聚乙烯吡咯烷酮,蔗糖等大分子物質(zhì).非滲透性抗凍保護(hù)劑中使用較多的是蔗糖,其不僅在冷凍液中有添加,在解凍液中也是非常必要的添加成分.解凍液中添加蔗糖的作用主要是利用蔗糖在細(xì)胞外產(chǎn)生較高的滲透壓,防止解凍時(shí)水分過(guò)度滲入細(xì)胞造成細(xì)胞崩解;冷凍液中添加蔗糖一是增加溶液的粘稠度,有利于溶液玻璃化的形成;二是使細(xì)胞保持收縮的狀態(tài),防止抗凍保護(hù)劑過(guò)多的滲入細(xì)胞.在諸多的研究中,冷凍方法多種多樣,解凍方法也多種多樣.多數(shù)研究者分開(kāi)來(lái)探討抗凍保護(hù)劑的添加和脫除方案對(duì)卵母細(xì)胞存活率的影響.作者認(rèn)為,抗凍保護(hù)劑的添加程序決定了其脫除程序.當(dāng)抗凍保護(hù)劑中含有不同濃度的蔗糖時(shí),溶液的滲透壓不同,進(jìn)而影響細(xì)胞的收縮程度,影響抗凍保護(hù)劑滲入胞內(nèi)的量.所以本研究設(shè)計(jì)了兩個(gè)實(shí)驗(yàn),分別在預(yù)處理液和玻璃化液中添加不同濃度的蔗糖,比較了蔗糖濃度對(duì)卵母細(xì)胞脫除抗凍保護(hù)劑后存活率的影響.由于抗凍保護(hù)劑具有一定的毒性,所以脫除抗凍保護(hù)劑又稱為脫毒.
小鼠卵母細(xì)胞的獲?。哼x擇4—6周齡雌性昆明白小鼠,腹腔注射PMSG(寧波激素廠生產(chǎn))10U/只,48h后腹腔注射hCG(寧波激素廠生產(chǎn))10U/只,14h后頸椎脫臼處死小鼠,暴露腹腔剪取輸卵管.用剝卵針剝開(kāi)輸卵管壺腹部,收取卵丘卵母細(xì)胞復(fù)合體,采用0.03%透明質(zhì)酸酶37℃消化2min,將脫去卵丘顆粒細(xì)胞的卵母細(xì)胞收集到PBS(Gibco,2012050)溶液中待用.
預(yù)處理液和玻璃化液均以PBS液為基礎(chǔ)液,在其中加入不同濃度的乙二醇(EG)和蔗糖(sucrose).
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實(shí)驗(yàn)一,選擇排出第一極體形狀規(guī)則的卵母細(xì)胞隨機(jī)分為6組,每組10枚,各組卵母細(xì)胞分別用S1,S2或S3液處理20min,然后分別用PBS或0.5mol/L的蔗糖溶液脫毒,統(tǒng)計(jì)各組脫除抗凍保護(hù)劑后卵母細(xì)胞存活率,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次.
實(shí)驗(yàn)二,卵母細(xì)胞隨機(jī)分為9組,每組卵母細(xì)胞經(jīng)S1液預(yù)處理 3min,分別以 ES1,ES2或 ES3液處理 30s,以PBS,0.25mol/L或0.50mol/L的蔗糖溶液脫毒,統(tǒng)計(jì)卵母細(xì)胞存活率,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次.
使用spss統(tǒng)計(jì)軟件(spss18)對(duì)卵母細(xì)胞存活率進(jìn)行ANOVA單因素方差分析和Duncan’s檢驗(yàn)方法判斷不同處理組之間的差異顯著性,P<0.05時(shí)即認(rèn)為差異顯著.
注:同一列上標(biāo)不同字母表示差異顯著(P<0.05).
注:同一列上標(biāo)不同字母表示差異顯著(P<0.05).
本實(shí)驗(yàn)所用到的S1液為含10%v/v EG的PBS溶液,是玻璃化冷凍中常用的預(yù)處理液,有研究表明,在該溶液中達(dá)到平衡時(shí)小鼠卵母細(xì)胞體積是初始體積的1.1倍[2].S2液是在S1液的基礎(chǔ)上添加了一定量的蔗糖,該濃度下達(dá)到平衡時(shí)卵母細(xì)胞體積等于初始體積;S3液在S1液的基礎(chǔ)上將蔗糖濃度提高至0.38mol/L,該濃度下達(dá)到平衡時(shí)卵母細(xì)胞體積約為初始體積的1/2.為了減少聚蔗糖(Ficoll)的干擾,ES1,ES2,ES3 液除未添加聚蔗糖(Ficoll)外,其組成與其他研究者常用的玻璃化液相同[3].Wang等采用EG作為抗凍保護(hù)劑,認(rèn)為4步添加法結(jié)合2步脫除法可以降低牛卵母細(xì)胞經(jīng)受的滲透壓損傷,與1步添加和1步脫除方法相比獲得了較高的存活率和囊胚率[4].Kobayashi等玻璃化冷凍豬胚胎,對(duì)2步法脫毒和1步法脫毒進(jìn)行比較,結(jié)果表明2步法脫毒后可以獲得85%的胚胎存活率,而1步脫毒組僅有40%的存活率[5].這些研究多數(shù)認(rèn)為分步脫毒法可以降低細(xì)胞脫毒時(shí)的滲透壓損傷,從而獲得較高的存活率.事實(shí)上,抗凍保護(hù)劑的脫除程序與抗凍保護(hù)劑的添加程序是密切相關(guān)的,針對(duì)特定的抗凍保護(hù)劑添加過(guò)程應(yīng)該采取對(duì)應(yīng)的脫毒步驟[6].實(shí)際應(yīng)用中遵循“越簡(jiǎn)單越實(shí)用”的原則.抗凍保護(hù)劑的脫除過(guò)程越簡(jiǎn)單,越易于實(shí)際操作.脫毒時(shí)需要多高濃度的蔗糖取決于抗凍保護(hù)劑添加過(guò)程中有多少抗凍保護(hù)劑滲入到胞內(nèi).冷凍液中添加蔗糖可以增加玻璃化液的粘稠度,有利于玻璃化的形成;同時(shí)蔗糖可以使細(xì)胞收縮,減少抗凍保護(hù)劑過(guò)度滲入胞內(nèi).但是抗凍保護(hù)劑中添加過(guò)高濃度的蔗糖會(huì)占據(jù)溶液較大的體積,導(dǎo)致溶液中滲透性抗凍保護(hù)劑的相對(duì)濃度升高,增加溶液毒性.本實(shí)驗(yàn)室前期實(shí)驗(yàn)表明,玻璃化液中添加0.8mol/L的蔗糖相對(duì)于0.5mol/L蔗糖添加組,牛囊胚冷凍存活率顯著降低,19%vs83%(數(shù)據(jù)未發(fā)表).本實(shí)驗(yàn)中,在設(shè)計(jì)的蔗糖濃度范圍內(nèi),隨著蔗糖濃度的增加,以PBS或蔗糖溶液脫毒后卵母細(xì)胞存活率均有所升高.理想情況下,最簡(jiǎn)單的脫毒方法是采用PBS直接脫毒.通過(guò)本實(shí)驗(yàn)證明,抗凍保護(hù)劑中添加一定濃度的蔗糖可以降低卵母細(xì)胞脫毒時(shí)的滲透壓損傷,增加卵母細(xì)胞存活率,預(yù)示采用PBS直接脫毒的解凍方法具有可行性.
〔1〕Rall,W.F.and G.M.Fahy,Ice-free cryopreservation of mouse embryos at-196 C by vitrification.1985.
〔2〕Pedro P B,Yokoyama E,Zhu S E,et al.Permeability of mouse oocytes and embryos at various developmental stages to five cryoprotectants[J].Journal of Reproduction&Development,2005,51(2):235.
〔3〕Jin B,Mochida K,Ogura A,et al.Equilibrium vitrification of mouse embryos at various developmental stages[J].Molecular Reproduction&Development,2012,79(11):785–794.
〔4〕Wang,X.,Al Naib,A.,Sun,DW.,et al.,Membrane permeability characteristics of bovine oocytes and development of a step-wise cryoprotectant adding and diluting protocol.Cryobiology,2010.61(1):58-65.
R714;S814.48
A
1673-260X(2017)10-0081-02
2017-07-12
貴州省科技計(jì)劃項(xiàng)目(2017-16)
黃文竹(1983-),女,博士,講師,貴州醫(yī)科大學(xué),研究方向:生物信息學(xué),E-mail:2008elite@163.com
赤峰學(xué)院學(xué)報(bào)·自然科學(xué)版2017年19期