樊 彪,趙江哲
(浙江師范大學(xué) 化學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,浙江 金華 321004)
細(xì)胞分裂素研究進(jìn)展及其在作物生產(chǎn)中的應(yīng)用
樊 彪,趙江哲*
(浙江師范大學(xué) 化學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,浙江 金華 321004)
細(xì)胞分裂素是植物的生長(zhǎng)調(diào)節(jié)因子,參與植物生長(zhǎng)發(fā)育的各個(gè)過程,對(duì)植物的形態(tài)建成和農(nóng)作物產(chǎn)量有著重要作用。隨著對(duì)細(xì)胞分裂素合成、運(yùn)輸、降解、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)等過程研究的逐漸深入,其在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中應(yīng)用的研究也變得尤為重要。本文綜述了細(xì)胞分裂素的代謝和運(yùn)輸過程,總結(jié)了其在作物生產(chǎn)過程中的作用,并對(duì)未來研究方向提出了展望,旨在為作物育種和激素的充分利用提供參考。
生長(zhǎng)素; 細(xì)胞分裂素; 互作; 生長(zhǎng)發(fā)育; 產(chǎn)量
植物生長(zhǎng)發(fā)育過程中需要各種激素的協(xié)同作用,作為植物自身合成的生長(zhǎng)調(diào)節(jié)分子,植物激素化學(xué)結(jié)構(gòu)相對(duì)簡(jiǎn)單且微量,但是有十分重要的生理功能。作為主要的植物激素,細(xì)胞分裂素參與植物生長(zhǎng)發(fā)育的調(diào)控過程,同時(shí)與其他激素又存在著各種聯(lián)系,既相互制約,又相互促進(jìn),維持著激素水平的動(dòng)態(tài)平衡,調(diào)控植物的生長(zhǎng)發(fā)育。細(xì)胞分裂素不僅可以提高農(nóng)作物的產(chǎn)量,也可提高農(nóng)作物的抗逆性。本文根據(jù)細(xì)胞分裂素在不同組織的調(diào)控作用,對(duì)目前關(guān)于細(xì)胞分裂素的研究結(jié)果做簡(jiǎn)要介紹。
1955年,Miller等[1]在鯡魚精子DNA熱壓水解產(chǎn)物中發(fā)現(xiàn)了一種可以促進(jìn)植物細(xì)胞分裂與分化的物質(zhì),并將其命名為激動(dòng)素。隨著研究的不斷深入,人們將這一類含有腺嘌呤結(jié)構(gòu)的激素稱為細(xì)胞分裂素(cytokinin,CK)。根據(jù)取代基團(tuán)的不同,細(xì)胞分裂素可以分為類異戊二烯細(xì)胞分裂素和芳香環(huán)細(xì)胞分裂素。在植物體內(nèi),細(xì)胞分裂素主要以類異戊二烯形式存在,包括反式玉米素(trans-zeatin,tZ)、二氫玉米素(dihydrozeatin,DHZ)、順式玉米素(cis-zeatin,cZ)和異戊烯腺嘌呤(isopentenyladenine)[2]。
1.1 細(xì)胞分裂素的合成
絕大多數(shù)內(nèi)源細(xì)胞分裂素通過從頭合成途徑合成[3]。細(xì)胞分裂素合成途徑中的限速酶是異戊烯基轉(zhuǎn)移酶(isopentenyltransferase,IPT)。在擬南芥中共鑒定出9個(gè)IPT基因,依次為IPT1~I(xiàn)PT9[4]。在楊樹中過量表達(dá)AtIPT7,莖的生物量與野生植株相比增加了80%[5]。不同AtIPT基因的表達(dá)存在著時(shí)空特異性,其中,IPT1基因主要在根尖、葉腋、胚珠及未成熟的種子中表達(dá),IPT3基因則主要在韌皮部組織中表達(dá),IPT5基因在根原形成層以及其他一些未完全成熟的組織中有較強(qiáng)的表達(dá)[6]。
1.2 細(xì)胞分裂素的降解
細(xì)胞分裂素氧化酶(cytokinin oxidase/dehydrogenase,CKX)能夠不可逆地降解細(xì)胞分裂素側(cè)鏈的不飽和鍵,從而使細(xì)胞分裂素失去活性[7]。水稻產(chǎn)量的增加與分蘗數(shù)有著密不可分的關(guān)系,在水稻中特異性降低OsCKX2的表達(dá)量后,分蘗數(shù)及籽粒數(shù)較野生型均明顯增加[8-9],這與外源施加細(xì)胞分裂素的表型相一致。CKX基因的表達(dá)也受到其他激素的調(diào)控,尤其是生長(zhǎng)素,其可以通過影響CKX在根部的表達(dá)來調(diào)控根部組織的發(fā)育[10]。
1.3 細(xì)胞分裂素的轉(zhuǎn)運(yùn)
細(xì)胞分裂素主要通過擴(kuò)散或者主動(dòng)運(yùn)輸?shù)男问睫D(zhuǎn)運(yùn)到靶細(xì)胞或靶組織發(fā)揮作用,已有研究表明幾種蛋白可能參與細(xì)胞分裂素的運(yùn)輸。Zhang等[11]鑒定出第1個(gè)長(zhǎng)距離轉(zhuǎn)運(yùn)tZ類細(xì)胞分裂素的蛋白——AtABCG14。在atabcg14突變體中,由于tZ類細(xì)胞分裂素?zé)o法正常轉(zhuǎn)運(yùn),突變體表現(xiàn)出細(xì)胞分裂素缺乏的表型,包括初生根變短,蓮座葉減小,花序減少等,同位素示蹤實(shí)驗(yàn)同樣證明了AtABCG14可以向細(xì)胞外轉(zhuǎn)運(yùn)細(xì)胞分裂素。Ko等[12]發(fā)現(xiàn)AtABCG14可以轉(zhuǎn)運(yùn)細(xì)胞分裂素。擬南芥嘌呤透性酶AtPUP14(ArabidopsisthalianaPurine Permease14)定位在質(zhì)膜上,其突變體對(duì)細(xì)胞分裂素的響應(yīng)減弱,這也造成了初生根縮短、胚胎發(fā)育異常等表型,原生質(zhì)體中的PUP14具有向細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)運(yùn)細(xì)胞分裂素的活性,且高于PUP1。這些證據(jù)表明了PUP14參與細(xì)胞分裂素的轉(zhuǎn)運(yùn)[13]。
1.4 細(xì)胞分裂素的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)
隨著研究的不斷深入,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞分裂素信號(hào)傳遞利用了一種類似于細(xì)菌的雙元組分系統(tǒng),主要包括3個(gè)部分:首先,細(xì)胞分裂素受體與細(xì)胞分裂素結(jié)合后自磷酸化,隨后通過跨膜運(yùn)輸將磷酸基團(tuán)轉(zhuǎn)移到胞質(zhì)中的磷酸轉(zhuǎn)移蛋白(Arabidopsishistidine-phosphotransfer protein,AHPs),磷酸化的AHPs可以進(jìn)入細(xì)胞核并將磷酸基團(tuán)轉(zhuǎn)移到反應(yīng)調(diào)節(jié)因子(Arabidopsisresponse regulators,ARRs),從而誘導(dǎo)基因表達(dá),調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)發(fā)育[14]。
2.1 根尖分生組織形成的調(diào)控
分生組織的生長(zhǎng)是一個(gè)動(dòng)態(tài)平衡過程,細(xì)胞分裂素可促進(jìn)細(xì)胞的分裂、抑制分生組織的生長(zhǎng)[15]。研究表明,擬南芥中SHY2編碼Aux/IAA家族基因IAA3,其在生長(zhǎng)素和細(xì)胞分裂素的動(dòng)態(tài)平衡中發(fā)揮重要作用。生長(zhǎng)素可以通過促進(jìn)SCFTIR1復(fù)合體的降解,抑制SHY2的表達(dá),從而維持信號(hào)響應(yīng)及PIN蛋白的活性,促進(jìn)細(xì)胞分化;細(xì)胞分裂素則可以通過激活A(yù)RR1及ARR12的表達(dá),促進(jìn)SHY2表達(dá)[16],抑制生長(zhǎng)素的向外運(yùn)輸,阻止細(xì)胞分化。另外,SHY2可以促進(jìn)IPT5的表達(dá),參與細(xì)胞分裂素的從頭合成過程。
靜止中心有絲分裂活性的維持需要一個(gè)高生長(zhǎng)素/低細(xì)胞分裂素的環(huán)境,2種激素的比率會(huì)影響到靜止中心的形態(tài)建成。細(xì)胞分裂素可以抑制靜止中心細(xì)胞活性相關(guān)的基因,包括WOX5、SCR、AUX1和LAX2等基因,WOX5的表達(dá)依賴于SCR的調(diào)控,而SCR作為生長(zhǎng)素的響應(yīng)基因參與形態(tài)建成過程,可以通過生長(zhǎng)素極性運(yùn)輸對(duì)過渡區(qū)細(xì)胞ARR1的表達(dá)進(jìn)行調(diào)控[17]。同時(shí),細(xì)胞分裂素響應(yīng)基因ARR1和ARR12抑制生長(zhǎng)素向內(nèi)運(yùn)輸載體基因LAX2的表達(dá),lax2突變體靜止中心的細(xì)胞分裂素與野生型相比也有所增加。這些證據(jù)證明,LAX2作為一個(gè)關(guān)鍵因子維持著靜止中心區(qū)域細(xì)胞分裂素的平衡[18]。
2.2 根部形態(tài)建成的調(diào)控
植物側(cè)根的形成是一個(gè)非常復(fù)雜的過程,在中柱鞘細(xì)胞分化為原生木質(zhì)部細(xì)胞的過程中,會(huì)出現(xiàn)大量細(xì)胞分裂與細(xì)胞分化[19]。細(xì)胞分裂素在側(cè)根形成過程中起負(fù)調(diào)控作用,包括影響中柱鞘細(xì)胞的細(xì)胞分化,以及抑制側(cè)根原基的形態(tài)建成。在外源細(xì)胞分裂素影響下,arr3、arr4、arr5、arr6突變體的側(cè)根明顯減少[20];與之相反,在35S:CKX1過表達(dá)材料中,側(cè)根較野生型相比明顯增加,而在細(xì)胞分裂素受體基因ahk2、ahk3突變體中,側(cè)根對(duì)于生長(zhǎng)素的敏感性較野生型增加[21]。在側(cè)根形成初期,如果外源施加細(xì)胞分裂素,PIN的表達(dá)會(huì)因此受到抑制,生長(zhǎng)素?zé)o法正常運(yùn)輸?shù)絺?cè)根原基部位,使得側(cè)根無法正常生成[22]。側(cè)根的不同部位對(duì)于細(xì)胞分裂素的敏感度不同,導(dǎo)致PIN1蛋白的定位也隨之發(fā)生變化,更多生長(zhǎng)素聚集在原基頂端,從而促進(jìn)側(cè)根發(fā)育[23]。由此可見,細(xì)胞分裂素不僅能夠控制生長(zhǎng)素的向外運(yùn)輸,同時(shí),其在植物組織形成過程中作為生長(zhǎng)素極性運(yùn)輸?shù)拈_關(guān),控制生長(zhǎng)素流動(dòng)的方向。
2.3 細(xì)胞分裂素調(diào)控花器官起始
植物地上部組織存在著1個(gè)與根部分生組織(root apical meristem,RAM)相似的結(jié)構(gòu)——頂端分生組織(shoot apical meristem,SAM)。SAM的組織中心與RAM的靜止中心相類似,也是由一部分有絲分裂不活躍的細(xì)胞包裹原始干細(xì)胞形成的,SAM的細(xì)胞由細(xì)胞分裂不活躍的中心區(qū)域移入到細(xì)胞分裂活躍的外圍區(qū)域,促進(jìn)地上組織的形成[24]。水稻細(xì)胞分裂素活化酶基因LOG能夠調(diào)控水稻細(xì)胞分裂素的合成,維持分生組織的活性,其突變體的枝梗數(shù)和小穗數(shù)均明顯減少,花器官也無法正常發(fā)育[25]。此外,水稻OSH1基因能夠調(diào)控IPT的表達(dá)來增加頂端分生組織細(xì)胞分裂素的含量[26],細(xì)胞分裂素響應(yīng)因子OsRRs在水稻花序形成過程中發(fā)揮重要作用[27]。由此可見,細(xì)胞分裂素在水稻花器官形成過程中有著不可替代的作用。
3.1 細(xì)胞分裂素在提高作物產(chǎn)量中的應(yīng)用
作為植物體內(nèi)重要的調(diào)控因子,細(xì)胞分裂素在提高作物產(chǎn)量中有重要作用。OsCKX2基因突變后,水稻花序組織中的細(xì)胞分裂素會(huì)積累,激活分裂活性,從而增加其可育性,增加單位產(chǎn)量[9]。不同時(shí)期施加細(xì)胞分裂素可提高大麥產(chǎn)量,灌漿期施加細(xì)胞分裂素的效果最顯著[28]。作為玉米籽粒發(fā)育的關(guān)鍵時(shí)期,生殖生長(zhǎng)時(shí)期直接決定著淀粉的積累狀況,外源添加細(xì)胞分裂素能夠增加玉米胚乳細(xì)胞數(shù)目,促進(jìn)碳水化合物的積累,從而達(dá)到增產(chǎn)的目的[29]。此外,蘋果樹外源施加細(xì)胞分裂素后,蘋果體積會(huì)增大,但并不影響果實(shí)的形狀及下一年的產(chǎn)量,在梨樹中也得到類似的結(jié)果,表明細(xì)胞分裂素對(duì)果實(shí)發(fā)育有重要作用[30]。
3.2 細(xì)胞分裂素在作物抗逆性中的應(yīng)用
細(xì)胞分裂素不僅能夠調(diào)控作物的器官形成,同時(shí)還能夠提高作物的抗逆性,延緩植物的衰老。細(xì)胞分裂素能夠直接或間接地清除氧自由基,減少脂質(zhì)的過氧化作用,改變細(xì)胞膜中脂肪酸的比例[31]。與此同時(shí),細(xì)胞分裂素還能夠增加植物葉片中葉綠素和可溶性蛋白的含量,在一定程度上延緩了植物衰老。對(duì)葉面噴施6-BA可以提高玉米幼苗的抗旱性,保持膜保護(hù)酶在干旱條件下的活性,從而維持玉米的產(chǎn)量[32]。
逆境條件下,作物的細(xì)胞分裂素水平會(huì)發(fā)生變化,進(jìn)而影響其他激素的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過程,導(dǎo)致其他代謝過程的變化[33]。植物在經(jīng)受干旱脅迫時(shí),作為植物自身保護(hù)機(jī)制的途徑之一,細(xì)胞分裂素會(huì)明顯下降,脫落酸含量會(huì)明顯升高,而脫落酸能夠調(diào)控氣孔的開閉運(yùn)動(dòng),從而激活植物體內(nèi)的應(yīng)激反應(yīng)[34]。
3.3 細(xì)胞分裂素在組織培養(yǎng)中的應(yīng)用
細(xì)胞分裂素在植物組織培養(yǎng)過程中發(fā)揮了重要作用,將其和生長(zhǎng)素按一定比例添加到培養(yǎng)基中,會(huì)誘導(dǎo)愈傷組織的分化和再生。例如棉花、松樹等的組織培養(yǎng)中,外植體必須培養(yǎng)在細(xì)胞分裂素/生長(zhǎng)素比例較高的培養(yǎng)基中,才能誘導(dǎo)芽的分化[35]。香蕉的組織培養(yǎng)中,細(xì)胞分裂素MT能夠提高愈傷組織的增殖效率,并且在組織內(nèi)不易積累。在梅花的離體培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),細(xì)胞分裂素有利于不定芽的形成[36]。知母分蘗的組織培養(yǎng)中,當(dāng)培養(yǎng)基中含有合適的細(xì)胞分裂素KT時(shí),分蘗的不定芽和不定根均有所增加,其營養(yǎng)物質(zhì)的積累量也明顯增多[37]。
近年來,細(xì)胞分裂素的相關(guān)研究取得了重大進(jìn)展。隨著細(xì)胞分裂素代謝、運(yùn)輸?shù)冗^程的逐漸清晰,人們對(duì)細(xì)胞分裂素在作物中的作用展現(xiàn)出更為濃厚的興趣:細(xì)胞分裂素是如何在整體上調(diào)控植物的形態(tài)建成?在不同的脅迫環(huán)境下,細(xì)胞分裂素又是通過哪種信號(hào)通路來實(shí)現(xiàn)相互調(diào)控?在不同的物種中其調(diào)控機(jī)制是否相同?隨著正向遺傳學(xué)、反向遺傳學(xué)的不斷成熟,相應(yīng)突變體材料日漸豐富,相應(yīng)實(shí)驗(yàn)技術(shù)的不斷完善及廣泛應(yīng)用,相信這些問題都會(huì)一一得到解答。
細(xì)胞分裂素作為參與植物生長(zhǎng)發(fā)育的主要激素,在胚胎發(fā)育、根發(fā)育、分生組織發(fā)育、衰老等過程中具有重要的調(diào)控作用,上述過程均是影響產(chǎn)量性狀的主要決定因素。當(dāng)激素水平發(fā)生變化時(shí),植物的產(chǎn)量肯定會(huì)相應(yīng)發(fā)生改變,如何調(diào)控相關(guān)激素的含量,以此來最大限度地提高作物產(chǎn)量會(huì)是下一步研究的重點(diǎn)。單子葉植物與雙子葉植物中細(xì)胞分裂素的作用有所差異,現(xiàn)在的互作研究主要集中在雙子葉植物擬南芥上,而糧食作物主要為單子葉植物,加強(qiáng)對(duì)水稻等農(nóng)作物細(xì)胞分裂素的研究對(duì)于促進(jìn)農(nóng)業(yè)發(fā)展有著重要的作用。
[1] MILLER C O, SKOOG F, OKUMURA F S, et al. Isolation, structure and synthesis of kinetin, a substance promoting cell division 1, 2 [J]. Journal of the American Chemical Society, 1956 (7): 1375-1380.
[2] SAKAKIBARA H. Cytokinins: activity, biosynthesis, and translocation [J]. Annual Review of Plant Biology, 2006, 57(57): 431-449.
[3] HABERER G, KIEBER J J. Cytokinins. New insights into a classic phytohormone [J]. Plant Physiology, 2002, 128(2): 354-362.
[4] TAKEI K, SAKAKIBARA H, SUGIYAMA T. Identification of genes encoding adenylate isopentenyltransferase, a cytokinin biosynthesis enzyme, inArabidopsisthaliana[J]. Journal of Biological Chemistry, 2001, 276(28): 26405-26410.
[5] IMMANEN J, NIEMINEN K, SMOLANDER O P, et al. Cytokinin and auxin display distinct but interconnected distribution and signaling profiles to stimulate cambial activity [J]. Current Biology, 2016, 26(15): 1990-1997.
[6] MIYAWAKI K, MATSUMOTO-KITANO M, KAKIMOTO T. Expression of cytokinin biosynthetic isopentenyltransferase genes inArabidopsis: tissue specificity and regulation by auxin, cytokinin, and nitrate [J]. Plant Journal, 2004, 37(1): 128-138.
[7] SCHMüLLING T, WERNER T, RIEFLER M, et al. Structure and function of cytokinin oxidase/dehydrogenase genes of maize, rice,Arabidopsisand other species [J]. Journal of Plant Research, 2003, 116(3): 241-252.
[8] YEH S Y, CHEN H W, NG C Y, et al. Down-regulation of cytokinin oxidase 2 expression increases tiller number and improves rice yield [J]. Rice, 2015, 8(1): 36.
[9] ASHIKARI M, SAKAKIBARA H, LIN S, et al. Cytokinin oxidase regulates rice grain production [J]. Science, 2005, 309(5735): 741-745.
[10] GAO S, FANG J, XU F, et al. CYTOKININ OXIDASE/DEHYDROGENASE4 integrates cytokinin and auxin signaling to control rice crown root formation [J]. Plant Physiology, 2014, 165(3): 1035-1046.
[11] ZHANG K, NOVAK O, WEI Z, et al.ArabidopsisABCG14 protein controls the acropetal translocation of root-synthesized cytokinins [J]. Nature Communications, 2014, 5(2): 3274.
[12] KO D, KANG J, KIBA T, et al.ArabidopsisABCG14 is essential for the root-to-shoot translocation of cytokinin [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2014, 111(19): 7150-7155.
[13] ZüRCHER E, LIU J, DI D M, et al. Plant development regulated by cytokinin sinks [J]. Science, 2016, 353(6303): 1027-1030.
[14] HWANG I, SHEEN J, MüLLER B. Cytokinin signaling networks [J]. Annual Review of Plant Biology, 2012, 63(1): 353-380.
[15] BASKIN T I. Stunted plant 1 mediates effects of cytokinin, but not of auxin, on cell division and expansion in the root ofArabidopsis[J]. Plant Physiology, 2000, 124(4): 1718-1727.
[16] MOUBAYIDIN L, PERILLI S, DELLO I R, et al. The rate of cell differentiation controls theArabidopsisroot meristem growth phase [J]. Current Biology, 2010, 20(12): 1138-1143.
[17] MOUBAYIDIN L, DI M R, SOZZANI R, et al. Spatial coordination between stem cell activity and cell differentiation in the root meristem [J]. Developmental Cell, 2013, 26(4): 405-415.
[18] ZHANG W, SWARUP R, BENNETT M, et al. Cytokinin induces cell division in the quiescent center of theArabidopsisroot apical meristem [J]. Current Biology, 2013, 23(20): 1979-1989.
[19] MALAMY J E, BENFEY P N. Organization and cell differentiation in lateral roots ofArabidopsisthaliana[J]. Development, 1997, 124(1): 33.
[20] TO J P C, HABERER G, FERREIRA F J, et al. Type-AArabidopsisresponse regulators are partially redundant negative regulators of cytokinin signaling [J]. Plant Cell, 2004, 16(3): 658-671.
[21] CHANG L, RAMIREDDY E, SCHMüLLING T. Lateral root formation and growth ofArabidopsisis redundantly regulated by cytokinin metabolism and signalling genes [J]. Journal of Experimental Botany, 2013, 64(16): 5021-2032.
[22] LAPLAZE L, BENKOVA E, CASIMIRO I, et al. Cytokinins act directly on lateral root founder cells to inhibit root initiation [J]. Plant Cell, 2008, 19(12): 3889-3900.
[24] KURAKAWA T, UEDA N, MAEKAWA M, et al. Direct control of shoot meristem activity by a cytokinin-activating enzyme [J]. Nature, 2007, 445(7128): 652-655.
[25] TSUDA K, ITO Y, SATO Y, et al. Positive autoregulation of a KNOX gene is essential for shoot apical meristem maintenance in rice [J]. Plant Cell, 2011, 23(12): 4368-4381.
[26] HIROSE N, MAKITA N, KOJIMA M, et al. Overexpression of a type-A response regulator alters rice morphology and cytokinin metabolism [J]. Plant & Cell Physiology, 2007, 48(3): 523.
[27] KERSTETTER R A, HAKE S. Shoot meristem formation in vegetative development [J]. Plant Cell, 1997, 9(7): 1001-1010.
[28] POWELL A F, PALECZNY A R, OLECHOWSKI H, et al. Changes in cytokinin form and concentration in developing kernels correspond with variation in yield among field-grown barley cultivars [J]. Plant Physiology & Biochemistry, 2013, 64(5): 33-40.
[29] 李小艷, 許晅, 朱同生, 等. 細(xì)胞分裂素對(duì)玉米產(chǎn)量性狀的影響[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào), 2013, 29(36): 219-223.
[30] 陳潔. 細(xì)胞分裂素對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育的影響[J]. 現(xiàn)代園藝, 2012 (14): 14.
[31] 王三根, 梁穎. 6-BA對(duì)低溫下水稻幼苗細(xì)胞膜系統(tǒng)保護(hù)作用的研究[J]. 中國水稻科學(xué), 1995, 9(4): 223-229.
[32] 周洑生, 楊明祥, 陳正福, 等. 施用5406對(duì)玉米、水稻、高粱等作物抗性和產(chǎn)量的影響[J]. 耕作與栽培, 1989(3): 45-47.
[33] 王三根. 細(xì)胞分裂素在植物抗逆和延衰中的作用[J]. 植物學(xué)通報(bào), 2000, 17(2): 121-126.
[34] 李躍強(qiáng). 植物體內(nèi)的信息傳遞——細(xì)胞分裂素在植物水分脅迫中的信息作用[J]. 自然雜志, 1997(2): 104-108.
[35] 王冬梅, 黃學(xué)林. 細(xì)胞分裂素類物質(zhì)在植物組織培養(yǎng)中的作用機(jī)制[J]. 植物生理學(xué)報(bào), 1996 (5): 373-377.
[36] 房順達(dá), 李志良, 羅萬業(yè). 梅花的離體培養(yǎng)研究[J]. 安徽農(nóng)學(xué)通報(bào), 2010, 16(23): 66-67.
[37] 袁鳳英, 李秀芹, 朱孔杰. 激動(dòng)素應(yīng)用研究進(jìn)展[J]. 廣州化工, 2015 (23): 45-46.
(責(zé)任編輯:侯春曉)
2017-03-20
浙江省自然科學(xué)基金(LQ17C020001)
樊 彪(1991—),男,山東淄博人,碩士研究生,研究方向?yàn)橹参锛に匦盘?hào),E-mail: fbshandong@163.com。
趙江哲(1986—),男,山東聊城人,講師,博士,研究方向?yàn)橹参锛に嘏c衰老,E-mail: jzzhao@zjnu.cn。
10.16178/j.issn.0528-9017.20170836
S184
A
0528-9017(2017)08-1411-04
文獻(xiàn)著錄格式:樊彪,趙江哲. 細(xì)胞分裂素研究進(jìn)展及其在作物生產(chǎn)中的應(yīng)用[J].浙江農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,58(8):1411-1414.