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        大孔樹脂吸附純化黔產(chǎn)龍膽草多糖工藝優(yōu)化

        2017-07-05 13:24:47宮江寧
        食品與機(jī)械 2017年5期
        關(guān)鍵詞:龍膽草樣量龍膽

        宮江寧

        饒 玉

        楊義菊

        陳 飛

        (貴州師范大學(xué)化學(xué)與材料科學(xué)學(xué)院,貴州 貴陽 550001)

        大孔樹脂吸附純化黔產(chǎn)龍膽草多糖工藝優(yōu)化

        宮江寧

        饒 玉

        楊義菊

        陳 飛

        (貴州師范大學(xué)化學(xué)與材料科學(xué)學(xué)院,貴州 貴陽 550001)

        采用硫酸—苯酚法測定多糖的含量,研究FL-3樹脂對龍膽多糖的吸附和洗脫效果。以多糖的吸附率和解吸量為指標(biāo),對FL-3樹脂純化龍膽多糖的工藝條件進(jìn)行了研究。結(jié)果表明,F(xiàn)L-3樹脂對龍膽多糖的吸附和洗脫能力較好,最佳工藝條件為:上樣濃度5 mg/mL、上樣流速2 BV/h、上樣量4 BV、 洗脫流速2 BV/h、用30%乙醇溶液200 mL集中洗脫。經(jīng)過純化后多糖的顏色變淺,多糖的含量從26.42%提高到71.29%,多糖回收率為49.52%。

        龍膽草;多糖;純化;FL-3樹脂

        龍膽草(GentianascabraBge),又名地膽草﹑龍膽﹑草龍膽,藥用部分為龍膽科龍膽屬植物龍膽干燥的根和莖,是一種常用的中草藥。龍膽草在中國產(chǎn)地分布較廣,主要分布在貴州﹑云南﹑四川等地。黔產(chǎn)龍膽草主要分布在六枝,為黔西北道地藥材。龍膽草具有清熱燥濕﹑清肝瀉膽的作用[1],有著廣泛的用途,如中成藥“龍膽瀉肝丸”就是以龍膽草為主要原料制成的[2]。研究發(fā)現(xiàn)龍膽湯對病毒性腦炎[3]、肝膽濕熱型帶狀皰疹[4]、突發(fā)性耳聾[5]、濕熱型帶下病[6]、單純皰疹性角膜炎的系統(tǒng)評價(jià)[7]、面癱[8]、宮頸炎合并Hpv[9]感染等疾病均有一定的療效。多糖為龍膽的有效成分之一[10-11],試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)龍膽多糖有明顯的生理活性,具有抗腫瘤[12]﹑抗氧化[1]﹑抗凝血[13]﹑保肝﹑降血脂﹑調(diào)節(jié)免疫力[14]等作用,因此對龍膽草多糖的研究有一定的意義。

        目前對龍膽多糖的研究主要是提取工藝,對龍膽多糖純化的研究較少。常見的分離純化方法是DEAE瓊脂糖凝膠法[15]﹑DEAE-cellulose DE-52離子交換層析法等[16]。但這些方法成本較高,價(jià)格昂貴。大孔樹脂法作為一種常見的分離純化的方法,因其具有吸附量較大、吸附速率快、價(jià)格便宜、可再生等優(yōu)點(diǎn),而被廣泛地應(yīng)用于天然產(chǎn)物的分離和純化[17]。本試驗(yàn)擬以黔產(chǎn)龍膽草為原料,提取龍膽多糖,并研究FL-3樹脂對龍膽多糖的吸附和洗脫,確定最佳純化的工藝條件,以期為龍膽多糖的工業(yè)化生產(chǎn)和進(jìn)一步的開發(fā)利用提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        龍膽草:購于貴州濟(jì)仁堂,產(chǎn)地為貴州六枝;

        FL-3樹脂:鄭州勤實(shí)科技有限公司;

        試驗(yàn)所用試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.2 儀器

        干燥箱:101-1A型,天津泰斯特公司;

        電子天平:A 200S型,德國科恩公司;

        循環(huán)水式多用真空泵:SHB-IIIA型,鄭州長城科工貿(mào)公司;

        分光光度計(jì):U V 2300型,上海天美科學(xué)儀器公司;

        植物粉碎機(jī):FZ 102型,天津市泰斯特公司。

        1.3 方法

        1.3.1 龍膽粗多糖的提取 參照文獻(xiàn)[18],將龍膽草清洗﹑干燥并粉碎,按照料液比1∶30 (g/mL)加入蒸餾水,在80 ℃熱水中浸提2 h,離心(4 000 r/min)取上清液,將上清液80 ℃減壓濃縮至原體積的1/5,加入3倍體積的無水乙醇,靜置過夜,抽濾,依次用丙酮﹑無水乙醇洗滌沉淀,自然風(fēng)干,得到龍膽草粗多糖。

        1.3.2 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 參照文獻(xiàn)[19~20],將葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品在105 ℃干燥至恒重,準(zhǔn)確配制100 μg/mL的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。精確移取100 μg/mL葡萄糖溶液0.00,0.10,0.20,0.40,0.60,0.80,1.00 mL,分別置于7支比色管中,補(bǔ)水至1 mL,再加入5%的苯酚2.00 mL,混合均勻后迅速加入濃硫酸7.00 mL,搖勻后靜置10 min,放入沸水浴中20 min,冷至室溫,在490 nm下測吸光度,并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(見圖1)。葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程:y=0.050 2x+0.023 5,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 7,在0~10 μg/mL范圍內(nèi),濃度和吸光度呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系。

        圖1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線Figure 1 Standard curve of glucose

        1.3.3 FL-3樹脂的預(yù)處理 向FL-3樹脂中加入3倍體積的95%乙醇,浸泡24 h,再用蒸餾水洗滌樹脂至無乙醇味后,加入4%的NaOH浸泡2 h,用蒸餾水洗滌至中性,再用4%的HCl浸泡2 h,用蒸餾水洗滌至中性,并用蒸餾水浸泡以備用[21]。

        1.3.4 上樣濃度對FL-3樹脂動態(tài)吸附的影響 將已處理好的FL-3樹脂等體積(30 cm3)分別裝入5根規(guī)格一樣的層析柱中,配制濃度分別2.000 0,3.000 0,4.000 0,5.000 0,6.000 0 mg/mL的多糖溶液各50 mL,以2 BV/h的流速分別上樣。充分吸附后收集流出液,測定流出液中多糖的含量,按式(1)計(jì)算吸附率[22]。

        (1)

        式中:

        R1——吸附率,%;

        c0——進(jìn)樣液中多糖的濃度,mg/mL;

        V0——進(jìn)樣液的體積,mL;

        c1——流出液中多糖的濃度,mg/mL;

        V1——流出液的體積,mL。

        1.3.5 上樣流速對FL-3樹脂動態(tài)吸附的影響 取5份濃度為5.138 0 mg/mL的多糖溶液,上樣量均為2 BV,分別以1,2,3,4,5 BV/h的流速通過裝有30 cm3FL-3樹脂的層析柱,充分吸附后收集流出液,測定流出液中多糖的含量,并計(jì)算吸附率。

        1.3.6 上樣量對FL-3樹脂動態(tài)吸附的影響 配制5.445 0 mg/mL的多糖溶液,以2 BV/h的流速上樣,總上樣量為9 BV(270 mL),并分別在上樣量為1,2,3,4,5,6,7,8,9 BV時測流出液中多糖的含量,并計(jì)算吸附率。

        1.3.7 洗脫液濃度對洗脫效果的影響 將濃度為6.000 0 mg/mL的龍膽多糖溶液100 mL以2 BV/h的流速通過裝有30 cm3FL-3樹脂的層析柱,待吸附充分后,排凈樹脂間隙中的多糖溶液,再依次加入100 mL去離子水及10%,30%,50%,70%,90%的乙醇進(jìn)行梯度洗脫,洗脫流速為2 BV/h,且每25 mL收集一次洗脫液。測定每瓶洗脫液中多糖的含量,并以瓶子編號為橫坐標(biāo),多糖含量為縱坐標(biāo)做圖。按式(2)計(jì)算洗脫量。

        Q=c3×V3,

        (2)

        式中:

        Q——洗脫量,μg;

        c3——洗脫液中多糖的濃度,μg/mL;

        V3——洗脫液的體積,mL。

        1.3.8 洗脫液用量對洗脫效果的影響 將50 mL濃度為5.000 0 mg/mL的龍膽多糖溶液以2 BV/h的流速通過層析柱,吸附充分后,先用蒸餾水將樹脂顆粒之間的間隙液沖走,再用30%乙醇溶液對樹脂進(jìn)行洗脫,洗脫流速為2 BV/h,前100 mL流出液每隔5 mL檢測一次多糖含量,后400 mL每隔25 mL檢測一次流出液中多糖的含量,并以累積洗脫體積和多糖的含量為坐標(biāo)繪制曲線。

        1.3.9 洗脫流速對洗脫效果的影響 取5份濃度為5.340 0 mg/mL的多糖溶液,上樣量均為2 BV,均以1 BV/h的流速通過裝有30 cm3FL-3樹脂的層析柱,充分吸附后,用少量的蒸餾水洗滌樹脂,再用200 mL 30%的乙醇分別以1,2,3,4,5 BV/h的流速進(jìn)行洗脫,并測定流出液中多糖的含量。

        1.3.10 驗(yàn)證性實(shí)驗(yàn) 準(zhǔn)確配制0.01 g/mL的粗多糖溶液再從中移取2.5 mL定容至100 mL,取1 mL稀釋液按照1.3.2的方法測吸光度,并按式(3)計(jì)算粗多糖的純度。

        (3)

        式中:

        M——多糖純度,%;

        C——稀釋后溶液的多糖濃度,μg/mL;

        N——稀釋倍數(shù);

        V——多糖樣品液的總體積,mL;

        W——粗多糖質(zhì)量,g。

        準(zhǔn)確配制一定濃度的粗多糖溶液,以最佳的上樣流速通過樹脂柱,待充分吸附后,用200 mL的30%乙醇以2 BV/h的洗脫流速洗脫,并將洗脫液旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮,冷凍干燥,測凍干多糖的純度,并按式(4)計(jì)算多糖回收率。

        (4)

        式中:

        G——多糖回收率,%;

        m1——提純多糖的質(zhì)量,mg;

        m2——粗多糖的質(zhì)量,mg。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 多糖的提取

        按上述提取方法得到的龍膽草粗多糖為深棕色顆粒狀的固體,味道清香,在水中溶解效果較好,產(chǎn)率為4.5%。

        2.2 上樣濃度對動態(tài)吸附率的影響

        由圖2可知,上樣濃度對龍膽草多糖吸附率的影響較大,吸附率隨著上樣濃度的增大呈先升高后下降的趨勢,上樣濃度為5 mg/mL時吸附率最大。所以最佳上樣濃度為5 mg/mL,此時吸附率為85.57%。

        圖2 上樣濃度對多糖吸附率的影響Figure 2 The effect of the concentration of polysaccharides on the absorption rate

        2.3 上樣流速對動態(tài)吸附率的影響

        由圖3可知,上樣流速越大,多糖的吸附率越小。如果多糖溶液上樣流速過快,多糖還沒來得及被樹脂吸附,就已經(jīng)流出層析柱,會使吸附率減少;而如果流速較慢時,溶液中的多糖可以和樹脂充分接觸,吸附率較高,但如果流速過慢,會使過柱時間過長。由圖3可知,當(dāng)流速為1 BV/h時,多糖的吸附率最高,但速率過慢,而2 BV/h的吸附率與其相差不大,所以選擇2 BV/h的上樣流速較為合適。

        2.4 上樣量對動態(tài)吸附率的影響

        由圖4可知,隨著上樣量的增大,多糖吸附率隨之降低,當(dāng)上樣量>4 BV后,吸附率趨于穩(wěn)定。說明上樣量到了一定程度,樹脂對多糖的吸附會達(dá)到飽和。雖然當(dāng)上樣量為1 BV時,吸附率最高,但樹脂對多糖的吸附量較少(僅151.229 mg);而當(dāng)上樣量為4 BV時,吸附率較低,但樹脂對多糖的吸附量較高(326.700 mg)。所以選4 BV為上樣量較為合適。

        圖3 上樣流速對多糖吸附率的影響Figure 3 The effect of velocity on adsorption rate of polysaccharides

        圖4 上樣量對多糖吸附率的影響Figure 4 The effect of sample size on adsorption rate of polysaccharide

        2.5 洗脫液濃度的確定

        由圖5可知,龍膽多糖的洗脫量主要集中在蒸餾水﹑10%乙醇和30%乙醇洗脫部分,其中最大洗脫峰出現(xiàn)在30%乙醇洗脫部分,30%乙醇部分的總洗脫量也最大且乙醇濃度升高,洗脫量變小。因此選擇用30%乙醇做洗脫液。

        1~4號為水洗脫液;5~8號為10%乙醇洗脫液;9~12號為30%乙醇洗脫液;13~16號為50%乙醇洗脫液;17~20號為70%乙醇洗脫液;21~24為90%乙醇洗脫液

        圖5 乙醇濃度對多糖洗脫量的影響

        Figure 5 Different concentrations of ethanol elution volume

        curve of polysaccharide

        2.6 洗脫液用量的確定

        由圖6可知,多糖的洗脫量主要集中在前200 mL的洗脫液中,當(dāng)洗脫液的體積超過200 mL,再用30%乙醇繼續(xù)洗脫,多糖的量增加得很少,可以忽略,因此從經(jīng)濟(jì)的角度出發(fā),洗脫液的用量為200 mL時最佳。

        2.7 洗脫流速的確定

        由圖7可知,當(dāng)洗脫量相同時,洗脫流速對洗脫量有一定的影響,流速加快,洗脫量減少,當(dāng)流速為1 BV/h時,洗脫效果最好,但如果流速過慢,會使時間成本提高,考慮到洗脫流速為1 BV/h時,洗脫量與流速為2 BV/h時的洗脫量相差不大,所以選擇的合適的洗脫流速為2 BV/h。

        2.8 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)

        實(shí)驗(yàn)測得提取的粗多糖純度為26.42%,經(jīng)過樹脂純化后,多糖的純度提高到了71.29%,多糖回收率為49.52%。說明FL-3樹脂對龍膽多糖純化的效果較好。純化前的粗多糖顏色為深棕色,經(jīng)過樹脂純化后,顏色變淺,為淺黃色的粉末,說明FL-3樹脂對多糖中的色素也具有一定的吸附和脫色功能。

        圖6 洗脫液用量的考察曲線圖Figure 6 The dosage of eluent graph

        圖7 洗脫流速對多糖洗脫量的影響Figure 7 The effect of elution flow rate on the elution of polysaccharide

        3 結(jié)論

        (1) 本試驗(yàn)利用FL-3樹脂對龍膽草多糖進(jìn)行提純,該樹脂對龍膽草多糖具有較好的分離純化效果,提純后多糖的顏色變淺,純度也從26.42%提高到了71.29%,多糖回收率為49.52%。

        (2) 通過對FL-3樹脂進(jìn)行動態(tài)工藝參數(shù)研究,得出最佳的純化工藝條件為:上樣濃度5 mg/mL,上樣流速2 BV/h,上樣量4 BV,用200 mL 30%乙醇洗脫,洗脫流速2 BV/h。

        (3) 本試驗(yàn)僅對FL-3樹脂純化龍膽多糖的工藝進(jìn)行研究,今后還應(yīng)該進(jìn)一步深入研究如何提高龍膽的純度。此外,用該工藝純化后是否會影響其生物活性尚未可知,因此在后續(xù)的試驗(yàn)中可對提純前后多糖的抗氧化和抑菌活性進(jìn)行深入研究。

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        Optimization on adsorption and purification process for gentian polysaccharide in Guizhou by macroporous resin

        GONGJiang-ning

        RAOYu

        YANGYi-ju

        CHENFei

        (SchoolofChemistryandMaterialScience,GuizhouNormalUniversity,Guiyang,Guizhou550001,China)

        The content of polysaccharide was determined by phenol sulfuric acid method. The research investigated FL-3 resin on the adsorption and desorption effect ofGentianascabraBungepolysaccharide. FL-3 resin was used to purify the polysaccharide. Using the adsorption rate and desorption amount of polysaccharide as the index, the FL-3 resin purification process of polysaccharide was studied. The optimum conditions for the adsorption and resolution of polysaccharide by FL-3 resin were obtained. The experimental results showed that the polysaccharide can be effectively adsorbed and desorbed by the FL-3 resin. The optimum purification conditions were as follows: the sample concentration was 5 mg/mL, the sample flow rate was 2 BV/h, the sample volume was 4 BV, the elution flow rate was about 2 BV/h, and the concentration of ethanol solution was 30%,the elution volume was 200 mL. After purification, the color of polysaccharide become shallow, and the content of that was increased from 26.42% to 71.29%.The recovery rate of polysaccharide was 49.52%.

        GentianascabraBunge; Polysaccharide; Purification; FL-3 macroporous resin

        貴州省科技廳2012年度貴州省科技廳與貴州師范大學(xué)聯(lián)合基金計(jì)劃項(xiàng)目(編號:黔科合J字LKS[2012]17號)

        宮江寧(1979—),女,貴州師范大學(xué)副教授,碩士。 E-mail:9121555@qq.com

        2017—03—12

        10.13652/j.issn.1003-5788.2017.05.036

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