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(1.山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西太原 030006; 2.山西林業(yè)職業(yè)技術(shù)學(xué)院,山西太原 030009)

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Osborne分級(jí)法提取藜麥糠清蛋白及功能性質(zhì)研究

田旭靜1,段鵬慧2,陳文超1,張婧婷1,范三紅1,*

(1.山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西太原 030006; 2.山西林業(yè)職業(yè)技術(shù)學(xué)院,山西太原 030009)

以藜麥糠為研究對(duì)象,采取超聲輔助Osborne分級(jí)法對(duì)藜麥糠中清蛋白進(jìn)行提取。在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上,應(yīng)用Box-Behnken方法選取料液比、提取溫度、提取時(shí)間3個(gè)因素,以清蛋白提取率為響應(yīng)值進(jìn)行優(yōu)化,確定藜麥糠清蛋白的最優(yōu)提取條件為:料液比1∶37 (g/mL)、提取溫度46 ℃、提取時(shí)間25 min，在此條件下藜麥糠清蛋白提取率為43.21%，與理論預(yù)測(cè)值43.76%相比,其相對(duì)誤差約為1.25%。說(shuō)明通過(guò)響應(yīng)面分析優(yōu)化后得到的回歸方程在實(shí)踐指導(dǎo)方面具有一定的意義。對(duì)藜麥糠清蛋白功能(溶解性、持水力、乳化性、起泡性)特性進(jìn)行了測(cè)定,結(jié)果表明pH為2.5即等電點(diǎn)時(shí),清蛋白的溶解度最低,持水力最小達(dá)到1.33 g/g,乳化性最低,乳化穩(wěn)定性反而最好,而起泡性和起泡穩(wěn)定性在等電點(diǎn)附近均最差。

藜麥糠,清蛋白,Osborne 分級(jí)法,響應(yīng)面分析法,功能特性

藜麥(Chenopodiumquinoa)是一種藜科假谷物,原產(chǎn)地在南美洲安第斯山脈地區(qū),栽植歷史已有5000～7000年。古代印加人稱(chēng)之為“mother of all grains”[1-2]。藜麥具有抗寒、抗旱、耐貧瘠和高鹽堿土壤等特征[3-4]。藜麥有增強(qiáng)機(jī)體功能、均衡營(yíng)養(yǎng)、抗癌和減肥等功效,適于一系列慢性病的輔助治療[5]。因此被推薦為最適宜人類(lèi)的完美“全營(yíng)養(yǎng)食品”[6]。自1987年以來(lái),我國(guó)在西藏地區(qū)試種藜麥[7],目前在山西、湖南和吉林等實(shí)現(xiàn)規(guī)?；N植[5]。藜麥優(yōu)質(zhì)蛋白含量高[8],容易被人體吸收[9]。Lamacchia[10]等的研究認(rèn)為,藜麥中可利用的蛋白質(zhì)含量比其他普通谷物要高。藜麥主要貯藏蛋白是清蛋白和球蛋白,谷蛋白和醇溶蛋白含量較低。由于二硫鍵的作用藜麥清蛋白具有較好的穩(wěn)定性[11]。

目前國(guó)內(nèi)對(duì)于藜麥產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)仍然處在初級(jí)階段,藜麥糠作為副產(chǎn)品經(jīng)常被視為工業(yè)生產(chǎn)的廢料被遺棄,沒(méi)有得到綜合利用導(dǎo)致嚴(yán)重的資源浪費(fèi),因此對(duì)藜麥糠的開(kāi)發(fā)仍有很大的研究空間。本研究以藜麥糠為原料,通過(guò)響應(yīng)面分析對(duì)超聲輔助Osborne分級(jí)法提取藜麥糠清蛋白的最佳工藝條件進(jìn)行優(yōu)化,并對(duì)蛋白功能特性進(jìn)行了研究,為進(jìn)一步開(kāi)發(fā)藜麥糠提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1材料與儀器

藜麥糠 山西華青藜麥產(chǎn)品開(kāi)發(fā)有限公司提供;大豆色拉油 由市場(chǎng)購(gòu)得;所用其他試劑 均為分析純。

AL204電子分析天平 梅特勒-托利儀器上海有限公司;101-2AB型電熱鼓風(fēng)干燥箱 天津市泰斯特儀器有限公司;SP-200OUV型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海光譜儀器有限公司;TDL-5離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器制造;868型pH測(cè)試儀 美國(guó)奧立龍公司;其他儀器 均為常規(guī)。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 藜麥糠預(yù)處理 篩選藜麥糠,粉碎過(guò)0.35 mm篩,置35 ℃鼓風(fēng)干燥箱烘4 h,使其水分含量在5%以下,冷卻后密封干燥備用。

1.2.2 蛋白質(zhì)含量測(cè)定 采用考馬斯亮藍(lán)法[12]測(cè)定蛋白質(zhì)含量。以牛血清白蛋白濃度為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo),得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程Y=0.0073X+0.0109(R2=0.9981)。依據(jù)所測(cè)吸光度值可計(jì)算蛋白的含量。此方程具有良好的線性相關(guān)性[12]。

1.2.3 原料成分含量測(cè)定 水分含量測(cè)定:105 ℃烘箱恒重法(GB/T 20264-2006);脂肪含量測(cè)定:索氏抽提法(GB/T 5009.6-2003);蛋白質(zhì)含量測(cè)定:微量凱氏定氮法(GB 5009.5-2010),考馬斯亮藍(lán)比色法;灰分含量測(cè)定:600 ℃灰化法(GB 5009.4-2010)。

1.2.4 藜麥糠分級(jí)蛋白提取工藝 藜麥糠中加入一定比例的蒸餾水,攪拌均勻,在40 ℃超聲輔助提取15 min,4000 r/min 離心20 min得到上清液A和殘?jiān)麬;上清液A經(jīng)過(guò)沉淀、洗滌、干燥等處理步驟得到清蛋白。殘?jiān)麬繼續(xù)做下一步處理[13]。

表2 藜麥糠基本成分分析Table 2 Quinoa chaff basic composition analysis

向上一步操作所得的殘?jiān)麬中加入同比例2% NaCl溶液,提取過(guò)程同清蛋白,離心后得到上清液B和殘?jiān)麭;上清液B經(jīng)過(guò)同上處理得到球蛋白。

向上一步操作所得殘?jiān)麭中加入同比例70%乙醇溶液,提取過(guò)程同清蛋白,離心后得到上清液C和殘?jiān)麮;上清液C經(jīng)過(guò)同上處理得到醇溶蛋白。

向上一步操作所得殘?jiān)麮中加入同比例0.05 mol/L NaOH溶液,提取過(guò)程同清蛋白,離心后得到上清液D和殘?jiān)麯。上清液D經(jīng)過(guò)同上處理得到谷蛋白。

測(cè)定上清液中各蛋白含量,分別求得藜麥糠中各蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

1.2.5 清蛋白等電點(diǎn)的測(cè)定 取藜麥糠清蛋白提取液7份,用磷酸鹽緩沖溶液調(diào)節(jié)pH分別為1.9、2.2、2.5、2.8、3.1、3.4、3.7,靜置后,蛋白質(zhì)發(fā)生沉淀,離心后取上清液測(cè)定吸光度值,吸光度值最小的點(diǎn)對(duì)應(yīng)的為蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)[14]。

1.2.6 單因素實(shí)驗(yàn) 采用控制變量法[15]對(duì)藜麥糠中提取清蛋白的工藝進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)。稱(chēng)取藜麥糠粉2.0 g,以蒸餾水為提取溶劑,分別考查提取時(shí)間、料液比、提取溫度對(duì)清蛋白提取率的影響。固定料液比為1∶35,提取時(shí)間為25 min,在提取溫度為20、30、40、50、60 ℃條件下測(cè)定清蛋白提取率。固定料液比為1∶35,提取溫度40 ℃,在提取時(shí)間為15、20、25、30、35 min條件下測(cè)定清蛋白提取率。固定提取時(shí)間25 min,提取溫度40 ℃,在料液比1∶25、1∶30、1∶35、1∶40、1∶45 (g/mL)條件下測(cè)定清蛋白提取率。

1.2.7 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn) 根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,設(shè)計(jì)Box-Behnken中心組合實(shí)驗(yàn)[16],其因素水平列于表1。

表1 Box-Behnken實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平表Table 1 Factors and levels of Box-Behnken design

1.2.8 提取率計(jì)算 用考馬斯亮藍(lán)法[17]測(cè)定上清液中蛋白質(zhì)的濃度。

蛋白質(zhì)提取率(%)

1.2.9 藜麥糠清蛋白功能特性測(cè)定 對(duì)實(shí)驗(yàn)室自制的藜麥糠清蛋白進(jìn)行溶解性的測(cè)定[18],乳化性和起泡性[19]的測(cè)定,以及持水力的測(cè)定[18]。

1.3 數(shù)據(jù)處理

以O(shè)rigin 7.0軟件繪制單因素實(shí)驗(yàn)圖表,采用Design Expert 8.0.6軟件進(jìn)行Box-Behnken設(shè)計(jì)及分析。

2 結(jié)果與分析

2.1原料成分分析

根據(jù)表2顯示的測(cè)定結(jié)果,該藜麥糠中蛋白質(zhì)含量最多,其次是水分和脂肪,灰分含量相對(duì)較少。此測(cè)定結(jié)果為研究藜麥糠蛋白的理化性質(zhì)打下了良好的基礎(chǔ)。

2.2藜麥糠中4種蛋白的含量

采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定藜麥糠中4種蛋白質(zhì)組分質(zhì)量分?jǐn)?shù)如圖1所示。

Osborne分級(jí)提取法將藜麥糠蛋白分為清蛋白、球蛋白、醇溶蛋白、谷蛋白。結(jié)果如圖1顯示,藜麥糠中清蛋白占蛋白總量的40.86%,4種蛋白中含量最多。藜麥糠球蛋白次之,占28.15%,藜麥糠谷蛋白和醇溶蛋白含量較少,分別占6.23%和4.45%。

圖1 藜麥糠4種蛋白的百分含量Fig.1 The percentage of quinoa chaff 4 kinds of protein

2.3清蛋白等電點(diǎn)的測(cè)定

由圖2可知,當(dāng)pH在2.5左右時(shí),藜麥糠清蛋白提取的上清液吸光度最小,蛋白沉淀最多,所以確定了藜麥糠清蛋白的等電點(diǎn)為pH=2.5。

圖2 吸光度值隨pH的變化曲線Fig.2 The absorbance value along with the change of pH curve

2.4單因素實(shí)驗(yàn)

2.4.1 提取溫度對(duì)清蛋白提取率的影響 如圖3結(jié)果表明,清蛋白提取率隨提取溫度的增加呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),溫度在40 ℃達(dá)到最大值,可能是因?yàn)殚_(kāi)始隨著提取溫度的升高,使分子擴(kuò)散速率增加,有利于蛋白質(zhì)溶出,提取率上升。溫度繼續(xù)升高提取率開(kāi)始有所下降,原因可能是清蛋白是熱敏性較強(qiáng)的蛋白質(zhì),溫度繼續(xù)上升,部分蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)可能被破壞而無(wú)法溶出,使得溶出量下降,導(dǎo)致提取率降低[20]。因此根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,確定最佳提取溫度為40 ℃。

圖3 提取溫度對(duì)清蛋白提取率的影響Fig.3 The influence of temperature on albumin extraction yield

2.4.2 超聲提取時(shí)間對(duì)清蛋白提取率的影響 通過(guò)圖4可知,藜麥糠清蛋白提取率隨提取時(shí)間增加先增大后減小,且當(dāng)提取時(shí)間是25 min時(shí)達(dá)到最大值34.09%。這可能是因?yàn)樘崛r(shí)間較短時(shí),超聲波的作用強(qiáng)度不夠,而清蛋白的溶出需要一定的時(shí)間,清蛋白隨時(shí)間的增加能被充分提取,但當(dāng)時(shí)間過(guò)長(zhǎng),清蛋白可能會(huì)被超聲波產(chǎn)生的巨大機(jī)械能所破壞[21],而發(fā)生蛋白質(zhì)部分分解和變性,從而使得提取率降低,因此確定最適提取時(shí)間是25 min。

圖4 提取時(shí)間對(duì)清蛋白提取率的影響Fig.4 The influence of time on the albumin extraction yield

圖5 料液比對(duì)清蛋白提取率的影響Fig.5 The influence of solid-liquid ratio on the albumin extraction yield

2.4.3 料液比對(duì)清蛋白提取率的影響 通過(guò)圖5可知,藜麥糠清蛋白提取率隨料液比的減小先增大后減小。這可能是由于溶劑和樣品比例越大,濃度差則越大,增加了藜麥糠分子與溶液的接觸面積,進(jìn)而加快了傳質(zhì)的過(guò)程,但當(dāng)料液比在1∶35～1∶45 g/mL之間時(shí),清蛋白提取率不增加甚至降低[22],這是因?yàn)榧铀坷^續(xù)增加,蛋白的溶解已經(jīng)達(dá)到飽和,加水過(guò)多導(dǎo)致酸沉?xí)r上清液中清蛋白的溶解量增加,造成蛋白損失量的增高,提取率反而下降[23]。因此確定料液比1∶35 g/mL為宜。

表3 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 3 The response surface design of experimental results

表4 回歸方程方差分析Table 4 The variance analysis of regression equation

注:*差異顯著,p<0.05;**差異極顯著,p<0.01。2.5響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)

在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,設(shè)計(jì)響應(yīng)面實(shí)驗(yàn),響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)方案及結(jié)果見(jiàn)表3。

2.5.1 回歸方程的建立與方差分析 利用Design Expert 8.0.6軟件對(duì)表3數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸擬合,建立提取工藝參數(shù)回歸模型。回歸方程為:Y=42.43+3.93A-0.21B+0.64C+0.27AB+0.79AC+1.06BC-3.50A2-2.67B2-1.39C2。該方程中各項(xiàng)系數(shù)絕對(duì)值的大小可以反映各因素對(duì)響應(yīng)值的影響程度,系數(shù)的正、負(fù)反映了影響的方向[24]。由方程的一次項(xiàng)系數(shù)可以得出影響藜麥糠清蛋白提取率的因素的主次順序?yàn)锳提取溫度>C料液比>B提取時(shí)間。對(duì)該模型進(jìn)行方差分析,結(jié)果見(jiàn)表4。

2.5.2 響應(yīng)面分析 根據(jù)表4結(jié)果,利用Design Expert 8.0.6繪制響應(yīng)面三維圖形,固定其中一個(gè)因素在0水平不變,考慮其他2個(gè)因素的交互作用對(duì)藜麥糠清蛋白提取率的影響,分析AB、AC、BC這3組交互作用對(duì)清蛋白提取率的影響[26]。其響應(yīng)面圖如圖6。由3組圖可知,提取溫度(A)曲線最陡,說(shuō)明該因素對(duì)清蛋白提取率影響最大;料液比(C)和提取時(shí)間(B)曲線相對(duì)較平緩,響應(yīng)值變化隨其數(shù)值的變化不大,說(shuō)明這兩個(gè)因素對(duì)清蛋白提取率的影響程度相對(duì)于提取溫度(A)較弱,這與方差分析的結(jié)果一致。等高線的形狀也可以反映交互效應(yīng)的強(qiáng)弱,越接近橢圓形交互作用越顯著,越接近圓形交互作用不顯著。分析可知,提取時(shí)間(B)和料液比(C)交互作用最顯著,其后是提取溫度(A)和料液比(C)交互作用較顯著,而提取溫度(A)和提取時(shí)間(B)的交互作用最不顯著。

圖6 各因素交互作用對(duì)清蛋白提取率的等高線和響應(yīng)面圖Fig.6 The contour and response surface figure of various factors interaction albumin extraction yield

圖6(a)響應(yīng)面圖顯示,提取溫度30～45 ℃,提取時(shí)間20～26 min范圍內(nèi)時(shí),藜麥糠清蛋白提取率隨著溫度和時(shí)間的增加而升高;而當(dāng)提取溫度在45～50 ℃范圍內(nèi),提取時(shí)間26～30 min,藜麥糠清蛋白提取率隨著兩者的增加開(kāi)始降低。由圖6(a)還可知,在提取溫度的42～46 ℃水平和提取時(shí)間的24～26 min水平之間有最大值。圖6(b)顯示,提取溫度30～45 ℃,料液比1∶30～1∶35范圍內(nèi)時(shí),兩者存在較顯著的增效作用,藜麥糠清蛋白提取率隨著溫度和料液比水平的增加而升高;而當(dāng)提取溫度在45～50 ℃,料液比1∶35～1∶40范圍內(nèi)時(shí),藜麥糠清蛋白提取率反而開(kāi)始降低。圖6(c)可知,提取時(shí)間20～26 min,料液比1∶30～1∶35范圍內(nèi)時(shí),兩者的增效作用最顯著,藜麥糠清蛋白提取率隨著時(shí)間和料液比水平的增加而升高,而當(dāng)在提取時(shí)間26～30 min,料液比1∶35～1∶40范圍內(nèi)時(shí),藜麥糠清蛋白提取率隨著兩因素的增加開(kāi)始降低,并且在提取時(shí)間的25～27 min和料液比的1∶35～1∶40之間有最大值。

由Design Expert 8.0.6軟件得出的清蛋白的最佳提取條件為:提取溫度46.13 ℃、提取時(shí)間25.39 min、料液比1∶37。此條件下模型預(yù)測(cè)的最大提取率為43.7636%?？紤]到實(shí)際操作的局限性,將理論值修正為提取溫度46 ℃、提取時(shí)間25 min、料液比1∶37。此條件下做驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),所得的清蛋白提取率為43.21%,與理論值43.7636%接近,說(shuō)明該模型能較好地預(yù)測(cè)實(shí)際提取量。

2.6藜麥糠清蛋白功能特性測(cè)定

2.6.1 溶解性的測(cè)定 由圖7可以看出,藜麥糠清蛋白的溶解度呈現(xiàn)先下降后上升的趨勢(shì)。當(dāng)pH為2.5時(shí),清蛋白的溶解度最低,是因?yàn)樵诘入婞c(diǎn)處,蛋白質(zhì)表面所帶的總電荷為零,蛋白質(zhì)分子之間的靜電排斥力較小,由于疏水相互作用使導(dǎo)致蛋白質(zhì)分子之間聚集沉淀。pH離清蛋白的等電點(diǎn)越遠(yuǎn),其水化作用越弱,水分子對(duì)清蛋白的分散作用提升明顯,表現(xiàn)為清蛋白的溶解度增加。

圖7 pH對(duì)清蛋白溶解度的影響Fig.7 The influence of pH value on albumin solubility

2.6.2 持水力的測(cè)定 圖8可知,藜麥糠清蛋白的持水力隨pH的變化大致呈V型曲線,當(dāng)pH逐漸靠近等電點(diǎn)時(shí),清蛋白的持水力逐漸降低,當(dāng)pH偏離等電點(diǎn)時(shí),清蛋白的持水力顯著提升。很明顯可以發(fā)現(xiàn),pH對(duì)清蛋白持水能力的影響與pH對(duì)其溶解度的影響基本一致。當(dāng)pH在等電點(diǎn)(pH2.5)附近時(shí),清蛋白質(zhì)分子本身呈現(xiàn)電中性,蛋白質(zhì)分子之間的相互作用達(dá)到最強(qiáng),相互締合收縮,蛋白質(zhì)呈現(xiàn)最低的水合作用,所以持水力最小達(dá)到1.33 g/g。高于或低于等電點(diǎn),由于凈電荷和排斥力的增加使蛋白質(zhì)持水力增強(qiáng)。

圖8 pH對(duì)清蛋白持水力的影響Fig.8 The influence of pH value on albumin hold water

2.6.3 乳化性的測(cè)定 如圖9所示,藜麥糠清蛋白的乳化性在等電點(diǎn)附近最低,乳化穩(wěn)定性反而最好。當(dāng)pH偏離等電點(diǎn)時(shí),清蛋白的溶解度增大,從而乳化性增大,pH對(duì)藜麥糠清蛋白乳化性的影響與pH對(duì)其溶解度的影響基本一致,這表明蛋白質(zhì)乳化性與溶解度有密切關(guān)系。

圖9 pH對(duì)清蛋白乳化性的影響Fig.9 The influence of pH value on albumin emulsification

2.6.4 起泡性的測(cè)定 由圖10可知,pH對(duì)藜麥糠清蛋白起泡性的影響與pH對(duì)其溶解度的影響趨勢(shì)都呈“V”字型,在等電點(diǎn)處蛋白質(zhì)聚集沉淀從而導(dǎo)致起泡性降低。所以清蛋白的起泡性和起泡穩(wěn)定性在等電點(diǎn)附近均最差,且泡沫大小不均勻,消失很快。而在遠(yuǎn)離等電點(diǎn)時(shí),清蛋白溶解度和表面活性增加,從而使清蛋白的起泡性和起泡穩(wěn)定性均得到改善[18]。

圖10 pH對(duì)清蛋白起泡性的影響Fig.10 The influence of pH value on albumin foaming

3 結(jié)論

通過(guò)超聲輔助Osborne分級(jí)法對(duì)藜麥糠進(jìn)行蛋白提取,得到的4種蛋白,其中清蛋白含量最多,占蛋白總量的40.86%。藜麥糠球蛋白次之,占28.15%,藜麥糠谷蛋白和醇溶蛋白含量較少,分別占6.23%和4.45%。進(jìn)而對(duì)藜麥糠中清蛋白采用超聲輔助水提的方法進(jìn)行優(yōu)化,在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,將Box-Behnken實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理和響應(yīng)面分析法相結(jié)合,擬合了料液比、提取溫度、提取時(shí)間這3個(gè)因素對(duì)清蛋白提取率的回歸模型,經(jīng)檢驗(yàn)證明該模型合理可靠,最優(yōu)工藝條件為提取溫度46 ℃、提取時(shí)間25 min、料液比1∶37。在此條件下,得到藜麥糠清蛋白提取率為43.21%。通過(guò)模型系數(shù)顯著性檢驗(yàn),得到因素的主效應(yīng)關(guān)系為:提取溫度>料液比>提取時(shí)間。通過(guò)對(duì)藜麥糠清蛋白功能(溶解性、持水力、乳化性、起泡性)特性的測(cè)定發(fā)現(xiàn),在等電點(diǎn)附近時(shí),清蛋白的溶解度最低,持水力最小達(dá)到1.33 g/g,乳化性最低,乳化穩(wěn)定性反而最好,而起泡性和起泡穩(wěn)定性在等電點(diǎn)附近均最差。偏離等電點(diǎn),清蛋白功能性質(zhì)得到改善。它可以作為一種頗具開(kāi)發(fā)前景的功能性食品配料應(yīng)用于食品工業(yè)中。

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ExtractofalbuminfromquinoachaffbyOsborneclassificationmethodandfunctionalproperties

TIANXu-jing1,DUANPeng-hui2,CHENWen-chao1,ZHANGJing-ting1,FANSan-hong1,*

(1.College of Life Science,Shanxi University,Taiyuan 030006,China; 2.Shanxi Forestry Vocational and Technical College,Taiyuan 030009,China)

Quinoa chaff is the research object,albumin from quinoa chaff was extracted by using ultrasonic auxiliary Osborne classification method. Three extraction parameters including solid-liquid ratio,extraction temperature and extraction time were optimized using Box-Behnken method and response surface methodology with protein extraction ratio as the response value. The research was based on single factor experiments for achieving maximum the protein extraction ratio. The optimal extraction conditions were determined as a solid/liquid ratio of 1∶37 (g/mL),an extraction temperature of 46 ℃,and an extraction time of 25 min. Under these optimized conditions,quinoa chaff albumin extraction yield was 43.21%,compared to the theoretical value 43.76%,the relative error of 1.25%. Optimized by response surface regression equation derived some practical significance. Experiment of quinoa chaff albumin functional properties(solubility and hold water,emulsification,foaming)were determined. The results showed that pH2.5 isoelectric point,namely the solubility of albumin was the lowest,a hold water minimum was 1.33 g/g,emulsification was lowest,but emulsifying stability was best,and the foaming ability and foam stability in isoelectric point nearby were worst.

quinoa chaff;albumin;Osborne classification method;response surface analysis;functional properties

2016-11-28

田旭靜(1992-)，女，碩士研究生，研究方向：農(nóng)產(chǎn)品綜合利用開(kāi)發(fā)，E-mail：497792954@qq.com。

*通訊作者:范三紅(1963-)，男，大學(xué)本科，教授，研究方向:食品科學(xué)，E-mail：fsh729@sxu.edu.cn。

山西省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2012011031-4)；2016年山西省高等學(xué)校教學(xué)改革創(chuàng)新項(xiàng)目 (J2016003)；2016年山西省研究生教育改革研究課題(2016JG26)；山西省重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(一般項(xiàng)目)(201603D221004-4)。

TS201.1

:B

:1002-0306(2017)12-0264-07

10.13386/j.issn1002-0306.2017.12.048