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        河內(nèi)白曲霉酸性α-淀粉酶高產(chǎn)菌株的誘變選育*

        2017-06-20 10:01:20張玉然張曉云郭蘭英張海林
        生物學(xué)通報(bào) 2017年7期
        關(guān)鍵詞:致死率初篩懸液

        張玉然 張曉云 郭蘭英 張海林

        (1濟(jì)寧醫(yī)學(xué)院生物科學(xué)學(xué)院 山東日照 276826 2山東徐旭酒曲有限公司 山東濟(jì)寧 272000)

        酸性α-淀粉酶屬于液化酶(α-淀粉酶)的一種,可在低pH值條件下隨機(jī)切斷淀粉分子內(nèi)的α-1,4糖苷鍵,迅速將其降解為糊精、寡糖等小分子[1-2]。 酸性 α-淀粉酶廣泛應(yīng)用于釀酒、制糖、紡織、飼料、造紙等行業(yè),具有良好的社會(huì)和經(jīng)濟(jì)效益[3]。

        在淀粉質(zhì)原料的水解制糖工藝中,由于α-淀粉酶和糖化酶最適反應(yīng)pH值的差異,淀粉質(zhì)原料液化后進(jìn)入糖化前需加入大量酸試劑調(diào)低pH值。開發(fā)耐酸性的α-淀粉酶,使其最適反應(yīng)pH值與糖化酶相近,可節(jié)省大量酸試劑的消耗,節(jié)約成本[4-5]。

        目前,研究者對(duì)黑曲霉和枯草芽孢桿菌液態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)酸性α-淀粉酶的研究較多,并通過(guò)多種方法選育獲得了高產(chǎn)菌株,廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、紡織和環(huán)境治理等領(lǐng)域[6-8]。 但在釀酒行業(yè),由于白酒香味和口感的特殊需求,常利用河內(nèi)白曲霉(Hanoiwhite starter)固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)酸性α-淀粉酶,并將生產(chǎn)出的含酸性α-淀粉酶的固態(tài)白曲直接應(yīng)用于白酒生產(chǎn)。目前研究者對(duì)該菌株的研究較少,固態(tài)發(fā)酵的酸性α-淀粉酶酶活力普遍較低,篩選具有高產(chǎn)酸性α-淀粉酶能力的河內(nèi)白曲霉勢(shì)在必行。

        本研究以河內(nèi)白曲霉為出發(fā)菌株,采用不同濃度的DES誘變處理萌發(fā)過(guò)夜的河內(nèi)白曲霉孢子,后根據(jù)透明圈法篩選高產(chǎn)突變株,進(jìn)一步搖瓶復(fù)篩,以期獲得產(chǎn)量高、穩(wěn)定性好的河內(nèi)白曲霉突變株。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1)菌種。河內(nèi)白曲霉為實(shí)驗(yàn)室保存。

        2)培養(yǎng)基。

        ①改良的PDA培養(yǎng)基:土豆浸出汁 30%,瓊脂 2%,自然pH值。②篩選培養(yǎng)基:玉米淀粉2%,酵母 0.5%,KCl 0.1%,KH2PO40.03%,MgSO4·7H2O 0.05%,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.0002%,瓊脂 2%,pH 6.5~7.0。③固體發(fā)酵培養(yǎng)基:麩皮12.5 g,自來(lái)水12.5 mL,置于500 mL三角燒瓶。

        1.2 菌株的誘變篩選

        1.2.1 孢子懸液的制備 于麥芽汁斜面培養(yǎng)基中刮取孢子,加入含25 mL 2 g/L葡萄糖的三角瓶中,混勻打散,稀釋至孢子數(shù)為107CFU/mL,于室溫下靜置萌發(fā)過(guò)夜。

        1.2.2 DES誘變及初篩 取5 mL過(guò)夜萌發(fā)的孢子懸液,分別加入DES至終濃度為0%、1%、3%、5%、6%、7%、9%、12%,混勻,30℃,220 r/min 振蕩處理20 min后,各組分別加入等體積的25%Na2S2O3溶液終止反應(yīng)。將誘變處理后的孢子懸液適當(dāng)稀釋,涂布于篩選培養(yǎng)基,35℃培養(yǎng)3~4 d,以未經(jīng)誘變處理的出發(fā)菌株為對(duì)照,計(jì)算致死率。挑選長(zhǎng)勢(shì)良好、透明圈與菌落直徑比值(HC)較大的單菌落進(jìn)行復(fù)篩。

        1.2.3 搖瓶復(fù)篩 挑取2環(huán)孢子,接種于固體發(fā)酵培養(yǎng)基,35℃培養(yǎng),分別于第 24 h、36 h、48 h各翻曲一次,測(cè)定不同突變株酸性α-淀粉酶的酶活力。

        1.2.4 傳代培養(yǎng) 將誘變篩選出的突變株連續(xù)傳代培養(yǎng),測(cè)定各批次酸性α-淀粉酶酶活力。

        1.3 酶活力測(cè)定 方法參照相關(guān)參考文獻(xiàn)[9]進(jìn)行。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 不同濃度DES的致死率 誘變育種是獲得高產(chǎn)菌株的常用方法[10-11],將誘變致死率控制在75%~85%時(shí)誘變效果較佳,易獲得高產(chǎn)突變菌。利用不同濃度DES處理河內(nèi)白曲霉孢子20 min后的致死率曲線如圖1所示。由圖1可知,使用1%DES誘變處理20 min時(shí),對(duì)河內(nèi)白曲霉的致死率為84.3%。

        圖1 不同濃度DES誘變河內(nèi)白曲霉的致死率

        2.2 高產(chǎn)酸性α-淀粉酶突變株的初篩 將1%DES誘變處理20 min的河內(nèi)白曲霉孢子懸液適當(dāng)稀釋涂布,培養(yǎng)觀察并計(jì)算HC比值。從502株突變株中挑選出HC比值較高的突變株列于表1,可知突變株Hanoi white starter 4的HC比值最大,且長(zhǎng)勢(shì)良好。

        表1 酸性α-淀粉酶高產(chǎn)突變株的初篩

        2.3 高產(chǎn)酸性α-淀粉酶突變株的搖瓶復(fù)篩 對(duì)表1中初篩獲得的突變株進(jìn)行搖瓶復(fù)篩,各突變株發(fā)酵產(chǎn)酸性α-淀粉酶的能力如表2所示??芍琀anoiwhite starter 4發(fā)酵酶活力最高,達(dá)20.8 U/g,較出發(fā)菌株提高了61.2%,這也與其HC比值最高相對(duì)應(yīng)。

        表2 高產(chǎn)酸性α-淀粉酶突變株的復(fù)篩

        2.4 突變株Hanoi white starter 4的遺傳穩(wěn)定性將高產(chǎn)酸性α-淀粉酶的突變株Hanoi white starter 4于麩皮固體發(fā)酵培養(yǎng)基中連續(xù)傳代培養(yǎng)6次,測(cè)定每批次的酸性α-淀粉酶酶活力,結(jié)果如圖2所示??芍摼戤a(chǎn)酸性α-淀粉酶的遺傳穩(wěn)定性良好,可用于后續(xù)工業(yè)放大生產(chǎn)。

        圖2 高產(chǎn)酸性α-淀粉酶突變株的遺傳穩(wěn)定性

        3 結(jié)論

        在釀酒行業(yè),鑒于酒品質(zhì)的高要求,該行業(yè)常使用河內(nèi)白曲霉固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)酸性α-淀粉酶,為使淀粉質(zhì)原料水解制糖工藝中α-淀粉酶和糖化酶最適反應(yīng)pH值相近,節(jié)省大量酸試劑的消耗,節(jié)約成本,篩選耐酸性的α-淀粉酶十分必要。本研究以河內(nèi)白曲霉為出發(fā)菌株,采用不同濃度DES誘變處理萌發(fā)的河內(nèi)白曲霉孢子,根據(jù)透明圈大小初篩、搖瓶復(fù)篩高產(chǎn)酸性α-淀粉酶的突變株。研究結(jié)果表明,將萌發(fā)的孢子于1%DES處理20 min后,對(duì)河內(nèi)白曲霉的致死率為84.3%,后經(jīng)涂布篩選獲得一株高產(chǎn)酸性α-淀粉酶的突變株Hanoi white starter 4,發(fā)酵后酶活力達(dá)20.8 U/g,較出發(fā)菌株提高61.2%。該突變株產(chǎn)酸性α-淀粉酶的遺傳穩(wěn)定性良好,可用于后續(xù)工業(yè)放大生產(chǎn)。

        [1]王建玲,陳志鑫,劉逸寒,等.產(chǎn)耐酸性α-淀粉酶菌株的分離、鑒定、酶學(xué)特性研究及發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化.生物技術(shù)通報(bào),2014,30(4):159.

        [2]Sharma A,Satyanarayana T.Microbial acid-stable α-amylases:characteristics,genetic engineering and applications.Process Biochemistry,2013,48(2):201.

        [3]Kalpana B J,Pandian S K.Halotolerant,acid-alkali stable,chelator resistant and raw starch digesting α-amylase from a marine bacterium Bacillus subtilis S8-18.Journal of Basic Microbiology,2014,54(8):802.

        [4]Liu JH,Xia W G,Abdullahi A Y,et al.Purification and partial characterization of an acidic α-amylase from a newly isolated Bacillus subtilis ZJ-1 that may be applied to feed enzyme.Preparative Biochemistry and Biotechnology,2015,45(3):259.

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        [6]錢萍.酸性淀粉酶菌株的誘變選育及酶學(xué)性質(zhì)研究.食品工業(yè) 科 技,2012,33(11):184.

        [7]王發(fā)祥,俞健,王建輝,等.1株產(chǎn)酸性α-淀粉酶黑曲霉原生質(zhì)體制備和再生條件優(yōu)化.食品科學(xué),2014,35(1):156.

        [8]Sharma A,Satyanarayana T.Production of acid-stable and high-maltose-forming α-amylase of Bacillus acidicola by solid-state fermentation and immobilized cells and its applicability in baking.Applied Biochemistry and Biotechnology,2012,168(5):1029.

        [9]賀勝英,楊云娟,許波,等.白曲霉Asp-amy1固體發(fā)酵生產(chǎn)酸性淀粉酶的初步研究.釀酒科技,2009(8):42.

        [10]田豐偉,程傳榮,袁維涵,等.原生質(zhì)體誘變選育ε-聚賴氨酸高產(chǎn)菌株.微生物學(xué)通報(bào),2010,37(10):1457.

        [11]劉俊梅,王慶,王丹,等.紫外線和硫酸二乙酯復(fù)合誘變選育PHB 高產(chǎn)菌株.微生物學(xué)通報(bào),2016,43(10):2242.

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