王江鞠酒曹海龍郭衛(wèi)華尹恒
(1. 大連海洋大學(xué)水產(chǎn)與生命學(xué)院,大連 116023;2. 中國科學(xué)院大連化學(xué)物理研究所天然產(chǎn)物與糖工程課題組 遼寧省碳水化合物重點實驗室,大連 116023;3. 大連海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,大連 116023)
一株產(chǎn)鼠李糖脂菌株的篩選、鑒定及其產(chǎn)物特性分析
王江1,2鞠酒2,3曹海龍2郭衛(wèi)華1尹恒2
(1. 大連海洋大學(xué)水產(chǎn)與生命學(xué)院,大連 116023;2. 中國科學(xué)院大連化學(xué)物理研究所天然產(chǎn)物與糖工程課題組 遼寧省碳水化合物重點實驗室,大連 116023;3. 大連海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,大連 116023)
鼠李糖脂是最常見,研究最深入,應(yīng)用最廣泛的一類生物表面活性劑。從油田附近、沼氣池旁的土壤中分離得到了25株菌,通過硫酸-苯酚反應(yīng),乳化實驗,排油性實驗,薄層色譜實驗篩選產(chǎn)鼠李糖脂的菌株并表征產(chǎn)生的鼠李糖脂,通過16S rDNA 序列確定細(xì)菌的種屬。硫酸-苯酚反應(yīng)顯示有2株菌可能產(chǎn)鼠李糖脂;5株菌的發(fā)酵液具有明顯的乳化效果,命名為“其紅”這株菌的乳化指數(shù)可達(dá)58.97%;1株菌的發(fā)酵液上清稀釋10倍后排油圈直徑仍可達(dá)3.53 cm;薄層色譜實驗也顯示“其紅”菌產(chǎn)鼠李糖脂。在四個實驗中 “其紅”菌都檢測到了鼠李糖脂,故確認(rèn)“其紅”菌可以產(chǎn)鼠李糖脂。16S rDNA序列分析表明“其紅”菌屬于希瓦氏菌屬(Shewanella)并與腐敗希瓦菌(S.putrefaciens LMG 26268(T))相似度最高。
表面活性劑;鼠李糖脂;菌株篩選;產(chǎn)物特性;希瓦氏菌屬
表面活性劑是一類素有“工業(yè)味精”之稱的重要化工原料,在環(huán)境、石油、化妝品、紡織、食品等領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用。傳統(tǒng)的表面活性劑是以石油為原料合成的,有著原材料價格波動較大,易造成環(huán)境污染等缺陷。隨著生物技術(shù)的飛速發(fā)展,生物來源的表面活性劑逐漸引起人們的重視,它是由一些微生物分泌產(chǎn)生的,集親水基團(tuán)和疏水基團(tuán)于一身的兩親化合物[1]。
與傳統(tǒng)化學(xué)合成的表面活性劑相比,生物表面活性劑具有的特性和優(yōu)點有:(1)化學(xué)結(jié)構(gòu)較為復(fù)雜和龐大,在表面擁有更多的活性基團(tuán),因此表面張力和界面張力較低,乳化活性較高[2];(2)具有一些化學(xué)方法難以合成的基團(tuán),結(jié)構(gòu)更特殊,專一性更強(qiáng),賦予了其具有一些化學(xué)表面活性劑不具有的性質(zhì)和生理功能,如抗菌、抗病毒等[3];(3)穩(wěn)定性較強(qiáng),可以在較高的溫度、鹽度下保持特定的活性[4];(4)生物表面活性劑大多是以天然副產(chǎn)物為原料,產(chǎn)生的副產(chǎn)物毒性小,而且其性能較強(qiáng),用量少,具有生物可降解性,所以在生產(chǎn)、使用的過程對環(huán)境的污染和破壞較?。?];(5)生物表面活性劑的生產(chǎn)原料來源方便、價格便宜、可再生,工藝簡單,因此生產(chǎn)成本較低[6]。
生物表面活性劑依據(jù)其不同的化學(xué)結(jié)構(gòu)可以分為糖脂、脂膚、磷脂、脂蛋白、中性脂肪酸酸脂以及脂多糖聚合物等[7]。目前,糖脂是最重要且品種最多的一類生物表面活性劑[8],在該類生物表面活性劑中,糖是以共價鍵的形式結(jié)合在脂肪酸上,其脂肪酸的烷基部分是親油基團(tuán),糖環(huán)部分為親水基團(tuán)[7]。鼠李糖脂是最常見且應(yīng)用最廣泛的一類糖脂[8],其于1949年首次被報道由銅綠假單胞菌產(chǎn)生,是由一個或者兩個鼠李糖以共價鍵的形式與一個或者兩個β-羥基脂肪酸結(jié)合而成[9]。鼠李糖脂除了在石油、化工、環(huán)境等方面的用途外,還可以用來生產(chǎn)鼠李糖,生產(chǎn)的鼠李糖可以廣泛應(yīng)用到食品、醫(yī)藥工業(yè)中[10]。
石油是重要的能源物質(zhì),在世界的發(fā)展中有著不可替代的地位。我國石油的消耗量較大,儲量相對較少,現(xiàn)在超過一半的石油需要進(jìn)口,但是以目前的技術(shù),原油的開采率較低[11],造成開采收率低的主要原因有:(1)常規(guī)開采后高粘稠原油比例的提高使得原油的流動性降低;(2)某些地方的油質(zhì)本身的滲透性較低,難以流動;(3)油水間的表面張力很高使得毛細(xì)管力升高。正是由于這些原因,使得石油進(jìn)一步開采的難度增加了。為了克服這些問題,在原油的開采過程中,往往會向地層中注入一些表面活性劑以改變巖石表面的憎水性,降低表面和界面的張力,促進(jìn)原油的乳化,改善油水的流度比進(jìn)而提高石油的采收率。傳統(tǒng)的表面活性劑大多是化學(xué)合成品,如石油磺酸鹽等,但是生產(chǎn)石油磺酸鹽的原材料——石油在不同時期的價格、來源不穩(wěn)定,在使用的過程中還會產(chǎn)生嚴(yán)重的環(huán)境污染,而鼠李糖脂這類生物表面活性劑可以有效解決這些問題。鼠李糖脂除了在降低表面張力,改變巖石的憎水性,促進(jìn)原油的乳化方面的性能與磺酸鹽相似外,在熱穩(wěn)定方面比磺酸鹽更好,在地層水中的溶解性更強(qiáng),能夠更好的發(fā)揮作用。大慶油田將鼠李糖脂發(fā)酵液與磺酸鹽混合使用,可以產(chǎn)生明顯的協(xié)同效應(yīng),使得價格昂貴的磺酸鹽用量大幅減少,有效的降低了成本,減輕了環(huán)境污染[12]。鼠李糖脂還可以用來幫助治理被石油污染的環(huán)境,它聚集在油水的界面,降低界面張力,促進(jìn)乳化作用,從而增強(qiáng)油水的流動性,實現(xiàn)油相在水相的分散,使得石油可以快速的進(jìn)入微生物細(xì)胞體內(nèi)進(jìn)而被分解掉,快速修復(fù)被石油污染的環(huán)境[8,13]。
本研究從油田附近、沼氣池旁的土壤中分離得到了幾十株菌,經(jīng)過硫酸-苯酚反應(yīng)、乳化實驗、排油性實驗及薄層色譜實驗證實了“其紅”菌可以產(chǎn)生鼠李糖脂。通過分析其16S rDNA的序列,確定該菌屬于希瓦氏菌屬(Shewanella),與腐敗希瓦菌(S.putrefaciens LMG 26268(T))相似度最高,旨在為進(jìn)一步研究該類菌特性及其應(yīng)用提供借鑒參考。
1.1 材料
1.1.1 菌株 沼氣池旁、油田附近、排水溝處的土壤樣品共計9份。
1.1.2 培養(yǎng)基與溶液 液體富集培養(yǎng)液:蛋白胨10 g/L,牛肉浸膏3 g/L,NaCl 5 g/L,(固體培養(yǎng)基還加入20 g/L的瓊脂),調(diào)pH值7.0,121℃滅菌15 min,用于菌株的分離純化。
發(fā)酵培養(yǎng)液:甘油20 g/L,葡萄糖20 g/L,蛋 白 胨10 g/L、 酵 母 膏5 g/L、NaH2PO42 g/L、MgSO4·7H2O 0.5 g/L、調(diào)節(jié)pH 7.0,121℃滅菌15 min。用于發(fā)酵產(chǎn)鼠李糖脂。
硫酸苯酚溶液:1 mL 6%苯酚和5 mL濃硫酸后混勻。用于檢測鼠李糖脂。
展開劑:氯仿∶甲醇∶水比例為65∶15∶2,100 mL體積再滴加2滴乙酸。用作薄層色譜實驗。
染色劑組成:3 g苯酚和5 mL 98%的濃硫酸溶于95 mL無水乙醇中。用作薄層色譜后的染色。
1.2 方法
1.2.1 分離、純化菌株 將樣品用無菌水稀釋后取上清接于液體富集培養(yǎng)液中培養(yǎng)2 d,將菌液梯度稀釋后取200 μL涂布于固體的富集培養(yǎng)基上面,28℃培養(yǎng)3 d,挑取形態(tài)、顏色不同的單菌落在固體富集培養(yǎng)基上面劃線,分離純化細(xì)菌,菌長起來以后再劃五次確保獲得的菌株是純的。
1.2.2 乳化指數(shù)的測定[14]將分離的單菌落接入發(fā)酵培養(yǎng)液中培養(yǎng)48 h后,發(fā)酵液12 000 r/min離心10 min,留上清。取上清0.5 mL到一個密閉的小玻璃管中,再加入1 mL煤油,充分震蕩,靜置24 h,測量乳化層和整個混合物液面的高度,每個發(fā)酵液樣品測3個平行。計算乳化指數(shù)。計算公式為:E1%=100%×乳化層高度/混合物高度。
1.2.3 排油圈的測定[14]取30 mL去離子水至干凈的培養(yǎng)皿中,再添加200 μL柴油以形成油膜,將發(fā)酵液上清稀釋10倍后取5 μL加到油膜的中央,測定排油圈的直徑。每個發(fā)酵液上清樣品測3個平行。
1.2.4 硫酸-苯酚反應(yīng)[14]將發(fā)酵液上清和未接菌的發(fā)酵液稀釋10倍后取0.2 mL到密閉試管中,液態(tài)的鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品稀釋500倍后取0.2 mL至另外的密閉試管中,再加入0.6 mL 硫酸苯酚溶液至試管中,沸水浴中煮15 min,冷卻到室溫以后,取200 μL到96孔板中,使用酶標(biāo)儀在400 nm至700 nm間,以5 nm為間隔進(jìn)行全波長掃描。
1.2.5 薄層色譜實驗[14]根據(jù)前面測定的結(jié)果選擇了5株可能產(chǎn)鼠李糖脂的菌株再接入發(fā)酵培養(yǎng)液中培養(yǎng)2 d,發(fā)酵液離心,用濃鹽酸將上清的pH值調(diào)到2,4℃放置24 h后在4℃下12 000 r/min離心20 min,棄上清,沉淀用真空冷凍干燥機(jī)凍干。將制備的鼠李糖脂溶于0.05 mol/L的 NaHCO3溶液中配成終濃度5.93 g/L的鼠李糖脂溶液。用毛細(xì)管取鼠李糖脂溶液在距薄層色譜板一端約1 cm處進(jìn)行點樣,并同時在另一點樣處點上鼠李糖脂的標(biāo)準(zhǔn)品作為參照。將薄層色譜板置于盛有展開劑的展開槽中展開,待展開劑上升到距離色譜板頂端1 cm左右時取出色譜板,自然晾干后噴上染色劑100℃烘烤顯色直至出現(xiàn)棕色斑點為止。測量點樣點距離棕色斑點和展開劑邊緣處的距離以計算遷移率。遷移率(%)=100%×待測物質(zhì)遷移距離/溶劑展開距離。
1.2.6 菌種鑒定 經(jīng)過4個實驗確定了一株命名為“其紅”的菌株能產(chǎn)鼠李糖脂,挑取該菌的單菌落接入液體富集培養(yǎng)液中培養(yǎng)12 h,取菌液12 000 r/min離心10 min,用DNA提取試劑盒提取其全基因組。以提取的DNA為模板,以16S rDNA基因的通用引物[15]27F和1 492R擴(kuò)增該菌的16S rDNA序列。擴(kuò)增的片段經(jīng)過膠回收后送華大基因科技服務(wù)有限公司測定序列,測得的序列提交到細(xì)菌鑒定專用數(shù)據(jù)庫 ezbiocloud(http://www.ezbiocloud.net/eztaxon) 進(jìn)行同源性檢索,下載模式菌株的序列,利用MEGA6軟件以Neighbor-Joining(NJ)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹[16]。
2.1 菌株的分離與純化
依據(jù)菌落的形態(tài)、顏色等的不同,經(jīng)過5次以上的劃線最終分離得到了25株菌,它們被用作進(jìn)一步的實驗以篩選產(chǎn)鼠李糖脂的菌。
2.2 乳化指數(shù)的測定
分離出來25株菌的發(fā)酵液測完乳化指數(shù)后,5株有明顯乳化作用菌發(fā)酵液的乳化指數(shù),見圖1。“其紅”菌株乳化指數(shù)可達(dá)58.97%。
圖1 幾株菌的乳化指數(shù)
2.3 排油圈的測定
發(fā)酵液上清稀釋10倍取5 μL測定了排油圈直徑,具有明顯排油性菌株的排油圈直徑如圖2。編號為C-1-4-1菌的排油性最好,直徑可達(dá)3.53 cm。
圖2 幾株菌的排油圈直徑
2.4 硫酸-苯酚反應(yīng)
發(fā)酵液上清進(jìn)行硫酸-苯酚反應(yīng)并以5 nm為間隔進(jìn)行全波長掃描,結(jié)果(圖3)顯示鼠李糖脂的標(biāo)準(zhǔn)品在475 nm處有吸收峰,未接菌的發(fā)酵液在485 nm處有吸收峰,編號為“其紅”、1-1-A-1菌的吸收峰在475 nm處。
圖3 “其紅”、1-1-A-1發(fā)酵液與鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品和未接菌發(fā)酵液的全波長掃描吸收峰圖
2.5 薄層色譜進(jìn)一步確定產(chǎn)物特征
層析染色后發(fā)現(xiàn)與鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品一樣,“其紅”這株菌在相對應(yīng)的位置也有一個棕色斑點(圖4),其他菌未發(fā)現(xiàn)明顯的棕色斑點。據(jù)Zhang等[17]報道,有棕色斑點的可認(rèn)為是糖脂。測量了這2個圖譜中溶劑與樣品的遷移距離,“其紅”樣品的遷移距離是4.0 cm,溶劑的遷移距離是7.4 cm,所以“其紅”樣品的遷移率為4.0/7.4×100%=54%。鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品的遷移距離是3.9 cm,溶劑的遷移距離是7.4 cm,所以鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品的遷移率為3.9/7.4×100%=53%。
圖4 薄層色譜分析“其紅”菌株的鼠李糖脂產(chǎn)物
2.6 菌種鑒定
經(jīng)過前面一系列的實驗確定了“其紅”這株菌可以產(chǎn)鼠李糖脂。使用通用引物擴(kuò)增出1 500 bp左右的16S rDNA序列。該序列測序后共有1 430個有效堿基,將其提交到ezbiocloud數(shù)據(jù)庫后下載與之相近的模式菌株并建構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹后發(fā)現(xiàn)該菌屬于希瓦氏菌屬,與腐敗希瓦菌(S. putrefaciens LMG 26268(T))相似度最高,達(dá)到99.37%,與希瓦氏菌屬內(nèi)其他種以及相鄰屬的進(jìn)化距離,見圖5,分支節(jié)點上的數(shù)值表示1 000次重復(fù)的步長值。
表面活性劑是一類重要的化工原料,在很多領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用,而傳統(tǒng)的化學(xué)表面活性劑是以石油為原料合成的,有諸多缺陷,因此需要找一些其他的表面活性劑替代傳統(tǒng)的化學(xué)表面活性劑。隨著近幾十年生物技術(shù)的飛速發(fā)展,由微生物產(chǎn)生的一類生物表面活性劑具有很多優(yōu)良的性能。例如,表面張力和界面張力低,乳化活性高,專一性強(qiáng),具有特殊的生理功能,生產(chǎn)過程產(chǎn)生的有毒副產(chǎn)物少,具有生物可降解性,在生產(chǎn)、使用的過程對環(huán)境的污染和破壞很小等優(yōu)良特性。鼠李糖脂是一種典型的生物表面活性劑,篩選可以產(chǎn)鼠李糖脂的微生物是一個重要研究方面。
各菌的發(fā)酵液上清和鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品經(jīng)硫酸-苯酚反應(yīng)后全波長掃描,根據(jù)Zhang等[14]報道,若在480 nm處有吸收峰則表明有糖脂,掃描結(jié)果顯示鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品的吸收峰在475 nm處,未接菌發(fā)酵液在485 nm處有吸收峰,編號為“其紅”、1-1-A-1菌的吸收峰也在475 nm處,故可初步判斷這兩株菌產(chǎn)鼠李糖脂。
樣品和標(biāo)準(zhǔn)品薄層色譜實驗結(jié)束后可以發(fā)現(xiàn)“其紅”菌樣品與鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品在相同的位置都有一個棕色斑點,其他菌樣品沒有發(fā)現(xiàn)明顯的棕色斑點。據(jù)Zhang等報道[17],有棕色斑點的可認(rèn)為是糖脂。在薄層色譜分析過程中,硅膠板和展開劑對不同結(jié)構(gòu)物質(zhì)的吸附能力不同,最終體現(xiàn)在樣品遷移率的不同上,“其紅”菌樣品的遷移率為54%。鼠李糖脂標(biāo)準(zhǔn)品的遷移率為53%,兩者的遷移率接近,僅差1%,表明兩者的結(jié)構(gòu)相似。而且在乳化實驗和排油性實驗中,“其紅”這株菌均檢測到了相應(yīng)的特征。綜合起來可以認(rèn)為這兩者屬于同一類物質(zhì),即“其紅”菌的發(fā)酵液中含有鼠李糖脂。
圖5 “其紅”菌株16S rDNA序列NJ法構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹
自1949年Jarvis和Johnson[9]首次發(fā)現(xiàn)銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa)可以產(chǎn)鼠李糖脂以來,隨著生物技術(shù)的不斷發(fā)展,越來越多的微生物被報道可以產(chǎn)鼠李糖脂。在Pseudomonas屬中有:P.fluorescens[18]、P.chlororaphis[19]、P.nitroreducens[20]等;在Burkholderia屬中有B.pseudomallei[21]、B.plantarii[22]、B.thailandensis[23]等。除了在Pseudomonas和Burkholderia這兩大屬中有較多種類的微生物可以產(chǎn)鼠李糖脂外,Enterobacter asburiae、Enterobacter hormaechei、Acinetobacter calcoaceticus、Pantoea stewartii[24]以及革蘭氏陽性菌Renibacterium salmoninarum[25]、Tetragenococcus koreensis[26]和真菌Aspergillus sp MSF1[27]等微生物也可以產(chǎn)生鼠李糖脂。我們從沼氣池和油田附近的土壤中篩選得到了一株與腐敗希瓦菌[S. putrefaciens LMG 26268(T)]相似度最高的一株菌,該菌發(fā)酵液上清的乳化指數(shù)可以達(dá)到58.97%,與目前最典型、研究最深入銅綠假單胞菌的乳化指數(shù)(90%以上[28])還有一些差異,不過對碳源、溫度等培養(yǎng)條件進(jìn)行優(yōu)化,應(yīng)該能夠提高它的乳化效果。據(jù)我們了解希瓦氏屬中,幾乎沒有產(chǎn)鼠李糖脂菌的報道,所以本研究可能是首次報道希瓦氏菌屬可以產(chǎn)生鼠李糖脂,增加了一種可以產(chǎn)鼠李糖脂的新菌屬。
本研究從油田、沼氣池旁的土壤中分離純化出了25株菌,其中5株菌的發(fā)酵液具有明顯的乳化效果,“其紅”菌的乳化指數(shù)可達(dá)58.97%;6株菌具有明顯的排油性,1株菌排油圈直徑可達(dá)3.53 cm;硫酸-苯酚反應(yīng)發(fā)現(xiàn)有2株菌產(chǎn)鼠李糖脂;薄層色譜實驗證實了“其紅”菌產(chǎn)鼠李糖脂。在4個實驗中,“其紅”這株菌都檢測到了鼠李糖脂,故確認(rèn)這株菌產(chǎn)鼠李糖脂。16S rDNA序列分析后發(fā)現(xiàn)這株菌屬于希瓦氏菌屬,與腐敗希瓦菌相似性最高。
[1]Mulligan CN, Yong RN, Gibbs BF. Surfactant-enhanced remediation of contaminated soil:A review[J]. Engineering Geology, 2001, 60(1-4):371-380.
[2]Desai JD, Banat IM. Microbial production of surfactants and their commercial potential[J]. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 1997, 61(1):47-64.
[3]Chen J, Song X, Zhang H, et al. Sophorolipid produced from the new yeast strain wickerhamiella domercqiae induces apoptosis in h7402 human liver cancer cells[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2006, 72(1):52-59.
[4]Rocha C, San-Blas F, San-Blas G, et al. Biosurfactant production by two isolates of Pseudomonas aeruginosa[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 1992, 8(2):125-128.
[5]Edwards KR, Lepo JE, Lewis MA. Toxicity comparison of biosurfactants and synthetic surfactants used in oil spill remediation to two estuarine species[J]. Marine Pollution Bulletin, 2003, 46(10):1309-1316.
[6]Mukherjee S, Das P, Sen R. Towards commercial production of microbial surfactants[J]. TRENDS in Biotechnology, 2006, 24(11):509-515.
[7]Rodrigues L, Banat IM, Teixeira J, et al. Biosurfactants:Potential applications in medicine[J]. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 2006, 57(4):609-618.
[8]Maier RM, Soberon-Chavez G. Pseudomonas aeruginosa rhamnolipids:Biosynthesis and potential applications[J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2000, 54(5):625-33.
[9]Jarvis FG, Johnson MJ. A glyco-lipide produced by Pseudomonas aeruginosa[J]. Journal of the American Chemical Society, 1949, 71(12):4124-4126.
[10]范宗忠, 崔永星, 孫洪興. 高產(chǎn)鼠李糖菌株的篩選及發(fā)酵條件的研究[J]. 藥物生物技術(shù), 2003(1):22-24.
[11]張曉剛, 劉穎, 金亞杰, 等. 提高采收率的挑戰(zhàn)及策略[J].國外油田工程, 2007(1):4-9.
[12]李華斌, 楊振宇, 楊林, 等. 大慶油田鼠李糖脂生物表面活性劑提高采收率[J]. 西南石油學(xué)院學(xué)報, 2001(1):25-28.
[13] Potvin E, Sanschagrin F, Levesque RC. Sigma factors in Pseudomonas aeruginosa[J]. FEMS Microbiol Rev, 2008, 32(1):38-55.
[14]Zhang XS, Xu DJ, Yang GC, et al. Isolation and characterization of rhamnolipid producing Pseudomonas aeruginosa strains from waste edible oils[J]. African Journal of Microbiology Research, 2012, 6(7):1466-1471.
[15]Sawant SS, Salunke BK, Kim BS. A laboratory case study of efficient polyhydoxyalkonates production by Bacillus cereus, a contaminant in saccharophagus degradans atcc 43961 in minimal sea salt media[J]. Current Microbiology, 2014, 69(6):832-838.
[16] Yezza A, Fournier D, Halasz A, et al. Production of polyhydroxyalkanoates from methanol by a new methylotrophic bacterium Methylobacterium sp. gw2[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2006, 73(1):211-218.
[17]Zhang XS, Li M, Xiang TS. Genetic modification of meor bacterium Bacillus licheniformis h strain by low energy ion beam irradiation[J]. Open Biotechnology Journal, 2010, 4:14-17.
[18]Evgenia VT, Galabova D, Stoimenova E, et al. Production and properties of biosurfactants from a newly isolated Pseudomonas fluorescens hw-6 growing on hexadecane[J]. Zeitschrift Fur Naturforschung C-a Journal of Biosciences, 2006, 61(7-8):553-559.
[19]Gunther NW, Nunez A, Fett W, et al. Production of rhamnolipids by Pseudomonas chlororaphis, a nonpathogenic bacterium[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2005, 71(5):2288-2293.
[20]Onwosi CO, Odibo FJC. Effects of carbon and nitrogen sources on rhamnolipid biosurfactant production by Pseudomonas nitroreducens isolated from soil[J]. World Journal of Microbiology &Biotechnology, 2012, 28(3):937-942.
[21] Haussler S, Nimtz M, Domke T, et al. Purification and characterization of a cytotoxic exolipid of Burkholderia pseudomallei[J]. Infection and Immunity, 1998, 66(4):1588-1593.
[22] Hoermann B, Mueller MM, Syldatk Christoph, et al. Rhamnolipid production by Burkholderia plantarii dsm 9509(t)[J]. European Journal of Lipid Science and Technology, 2010, 112(6):674-680.
[23]Dubeau D, Deziel E, Woods DE, et al. Burkholderia thailandensis harbors two identical rhl gene clusters responsible for the biosynthesis of rhamnolipids[J]. Bmc Microbiology, 2009, 9:263.
[24]Rooney AP, Price NPJ, Ray KJ, et al. Isolation and characterization of rhamnolipid-producing bacterial strains from a biodiesel facility[J]. Fems Microbiology Letters, 2009, 295(1):82-87.
[25]Christova N, Tuleva B, Lalchev Z, et al. Rhamnolipid biosurfactants produced by renibacterium salmoninarum 27bn during growth on n-hexadecane[J]. Zeitschrift Fur Naturforschung C-a Journal of Biosciences, 2004, 59(1-2):70-74.
[26]Lee M, Kim MK, Vancanneyt M, et al. Tetragenococcus koreensis sp nov. , a novel rhamnolipid-producing bacterium[J]. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2005, 55:1409-1413.
[27]Kiran GS, Thajuddin N, Hema TA, et al. Optimization and characterization of rhamnolipid biosurfactant from sponge associated marine fungi Aspergillus sp msf1[J]. Desalination and Water Treatment, 2010, 24(1-3):257-265.
[28]張翠坤, 常冬妹, 楊洪江. 銅綠假單胞菌高產(chǎn)鼠李糖脂菌株的篩選[J]. 生物技術(shù)通報, 2015(10):177-183.
(責(zé)任編輯 狄艷紅)
Screening and Identification of Rhamnolipid-producing Strains and Characterization of the Product
WANG Jiang1,2JU Jiu2,3CAO Hai-long2GUO Wei-hua1YIN Heng2
(1. College of Fisheries and Life Science,Dalian Ocean University,Dalian 116023;2. Natural Products and Glyco-Biotechnology,Dalian Institute of Chemical Physics,Chinese Academy of Sciences,Dalian 116023;3. College of Food Science and Engineering,Dalian Ocean University,Dalian 116023)
Rhamnolipid is the most common biosurfactant that has been deepest studied and the most widely applied. Total 25 strains were isolated from soil of the near oil field and biogas plant. The strains that produced rhamnolipid were screened and characterized by sulfuric acid-phenol reaction,emulsification experiment,oil-spreading experiment,and thin layer chromatography experiment. The strains were identified by 16S rDNA sequence analysis. The sulfuric acid-phenol reaction showed that 2 strains might produce rhamnolipid;the fermentation supernatants of 5 strains showed emulsified effect and the emulsifying index of the strain was up to 58.97%. The oil-spreading diameter of the fermentation supernatant,diluted 10 times,of one strain reached 3.53 cm. The thin layer chromatography experiment verified that the strain“Qihong” did produce rhamnolipid. The rhamnolipid in the strain “Qihong” was detected by all four experiments,confirming that strain “Qihong”produced rhamnolipid. The 16S rDNA sequence analysis revealed that the strain “Qihong” belonged to Shewanella,and was the most similar to Shewanella putrefaciens LMG 26268(T).
surfactant;rhamnolipid;strain isolation;product characterization;Shewanella
10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2017.04.025
2016-10-28
中科院青年創(chuàng)新促進(jìn)會(2015144),大連市杰出青年科技人才(2015R010)
王江,男,碩士研究生,研究方向:微生物和酶;E-mail:jiangwang1024@126.com
尹恒,男,博士,研究員,研究方向:糖工程及糖生物學(xué),E-mail:yinheng@dicp.ac.cn;郭衛(wèi)華,女,博士,副教授,研究方向:殼寡糖促進(jìn)植物生長,E-mail:1601079113@qq.com