劉 佳,秦留安,席少枝,劉 軍,王緒云,李曉琪,楊 潔,尹 彤
(解放軍總醫(yī)院心內科,北京 100853)
維生素K循環(huán)是機體內維生素K依賴性凝血因子(Ⅱ、Ⅶ、Ⅸ、Ⅹ)活化的重要通路,環(huán)氧型維生素K經(jīng)維生素K環(huán)氧化物還原酶(vitamin K epoxide reductase,VKOR,編碼基因VKORC1)轉變?yōu)榫S生素K,然后在VKOR的作用下,轉化為還原型維生素K,參與維生素K依賴性凝血因子的羧化反應[1]。由于維生素K循環(huán)是通過少量維生素K的反復利用,實現(xiàn)維生素K的氧化還原和γ羧化,因此,肝臟維生素K循環(huán)中的維生素K含量的穩(wěn)態(tài)對凝血因子活化反應的影響更直接和顯著。近年研究表明,在維生素K循環(huán)中,細胞色素P450家族的成員CYP4F2具有氧化水解維生素K的功能[1],因此,CYP4F2有可能通過改變維生素K循環(huán)中維生素K含量的穩(wěn)態(tài)影響凝血因子的活化,從而發(fā)揮其對凝血功能的影響。我們前期針對維生素K拮抗劑華法林的藥物基因組學研究發(fā)現(xiàn),在維生素K代謝和循環(huán)通路上的候選基因(VKORC1、GGCX、CYP4F2、EPHX1、APOE、NQO1、CALU)中,只有CYP4F2基因變異型與華法林出血并發(fā)癥相關。經(jīng)校正維生素K攝取等臨床環(huán)境因素和已知相關基因變異因素(CYP2C9*3)后[2,3],其中攜帶CYP4F2rs3093168 CC基因型患者發(fā)生嚴重出血并發(fā)癥的風險是非攜帶者的7.61倍[4],提示CYP4F2基因是影響華法林出血并發(fā)癥的重要相關基因,其作用機制可能與CYP4F2參與影響凝血因子的活化密切相關。盡管如此,目前尚未見CYP4F2對維生素K依賴性凝血因子活性影響的相關文獻報道。鑒于此,本研究以維生素依賴性凝血因子FⅨ活性的改變?yōu)槔?,通過在人肝細胞系LO2細胞中過表達CYP4F2和凝血因子FⅨ,探討CYP4F2對維生素K依賴性凝血因子活化的影響,以期為基于藥物基因組學的維生素K拮抗劑個體化抗凝治療提供新的生物功能依據(jù)。
攜帶人CYP4F2-cDNA的pCR4Zero質粒[5]和攜帶人凝血因子FⅨ-cDNA的pIRES質粒[6]分別由美國密西西比大學醫(yī)學中心Stec教授和德國烏爾茨堡大學人遺傳學研究所Czogalla教授惠贈。人正常肝臟細胞系LO2細胞購自軍事醫(yī)學科學院細胞庫。質粒提取試劑盒、DNA凝膠回收試劑盒、1640細胞培養(yǎng)基、胎牛血清及Lipofectamine 2000 轉染試劑為 Invitrogen 公司產(chǎn)品。XbaⅠ與SalⅠ核酸限制性內切酶購自TAKARA公司。FⅨ抗體、CYP4F2抗體及FⅨa活性檢測試劑盒購自ABCAM公司。
通過攜帶人CYP4F2-cDNA的pCR4Zero質粒和攜帶人凝血因子FⅨ-cDNA的pIRES質粒,構建同時含有CYP4F2-cDNA片段與FⅨ-cDNA片段的pIRES質粒。步驟如下:根據(jù)NCBI的CYP4F2基因CDS序列設計擴增引物。上游引物 5’-tctagaatgtcccagctgagcctgtc-3’,下游引物5’-gtcgactcagctcaggggctccaccc-3’。以pCR4Zero-CYP4F2質粒作為模板,PCR 擴增CYP4F2基因 CDS 片段。反應體系:DNA模板1.5 μl、taq Master Mix 12.5 μl、上下游引物各0.8 μl、ddH2O 9.4 μl。用2.0% 瓊脂糖凝膠電泳分離并回收PCR產(chǎn)物,擴增后的CYP4F2-cDNA片段連接到T載體。取連接產(chǎn)物轉化TOP10感受態(tài)細胞,將轉化菌液涂布于含氨芐青霉素(100 mg/ml) 的LB固體培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)過夜。挑取生長狀態(tài)良好的菌落培養(yǎng),提取質粒后使用XbaⅠ與SalⅠ核酸限制性內切酶分別雙酶切pIRES-FⅨ-cDNA質粒和連接CYP4F2-cDNA片段的T載體。使用T4連接酶16℃條件下將CYP4F2-cDNA片段連接到pIRES質粒的MCS B區(qū)域 (此前pIRES質粒的MCS A區(qū)域已經(jīng)包含F(xiàn)Ⅸ-cDNA片段),構建pIRES-FⅨ-cDNA質粒。取連接產(chǎn)物轉化TOP10感受態(tài)細胞,將轉化菌液涂布于含氨芐青霉素(100 mg/ml) 的LB固體培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)過夜。挑取生長狀態(tài)良好的菌落培養(yǎng),提取質粒進行雙酶切并測序鑒定。
使用含10%胎牛血清及5%雙抗的1640培養(yǎng)基培養(yǎng)LO2細胞,常規(guī)換液、傳代。取生長狀態(tài)好的LO2細胞使用胰蛋白酶消化計數(shù),將6×105細胞種植于直徑為6 cm的平皿中。用含10%胎牛血清及3 nmol/L維生素K1(維生素K1使用10倍DMSO稀釋后加入培養(yǎng)基)的1640培養(yǎng)基在37℃,5%CO2的孵箱內培養(yǎng)過夜。待細胞融合面積達70%~80%后,更換無血清無雙抗的1640培養(yǎng)基。將8 μg pIRES-FⅨ質粒溶于500 μl Opti-mem無血清培養(yǎng)基中(A管)。另將20 μl Lipofectamine 2000 轉染試劑溶于500 μl Opti-mem無血清培養(yǎng)基中(B管),室溫靜置 5 min 后將兩管混合搖勻,室溫孵育20 min后將混合液緩慢加入LO2細胞中,混勻后置于37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。同樣方法轉染pIRES-FⅨ-CYP4F2 質粒以及pIRES空白對照質粒。每組質粒做復孔同步轉染。5 h后更換新的含10%胎牛血清及3 nmol/L維生素K1的1640培養(yǎng)基。48 h后收集培養(yǎng)上清于-80℃保存。
質粒轉染48 h后,分別刮取各組細胞,加入RIPA高效細胞裂解液。小心吸取上清提取細胞總蛋白,用BCA試劑盒 (Solarbio, 中國) 進行蛋白定量。分別將各組蛋白加入1/4體積的蛋白上樣緩沖液后置于沸水中煮5 min加樣,每組蛋白上樣30 μg。SDS-PAGE 凝膠電泳 100 V、 1.5 h、半干轉法將凝膠蛋白轉至PVDF膜。轉膜條件:恒流300 mA,2 h。使用5% 脫脂奶粉37℃封閉1 h。將目的蛋白條帶和內參條帶剪開,兩張含有目的蛋白的膜分別加入1∶1000稀釋的FⅨ 抗體以及1∶1000稀釋的CYP4F2 抗體,含有內參蛋白的膜加入1∶1000稀釋的GAPDH內參抗體(Solarbio,中國),置于4℃冰箱過夜。TBST 洗膜10 min,共3次。然后分別加入1∶5000稀釋的辣根過氧化物酶標記的羊抗兔IgG抗體 (Solarbio,中國),37℃孵育1 h。再次 TBST 洗膜10 min,共3次。用ECL化學發(fā)光檢測試劑 (Solarbio, 中國) 放射自顯影檢測FⅨ和CYP4F2蛋白表達。
根據(jù)FⅨa Assay檢測試劑盒說明書,將每組蛋白裂解液各取10 μg 分別加入96孔板中,然后分別加入10 μl 配制好的master mix溶液,加入FⅨa Assay Buffer 溶液至98 μl,混勻后37℃孵育15 min。每個孔中加入2 μl FⅨa substrate-AMC 溶液,混勻。避光37℃孵育30 min后放入熒光酶標儀(Ex/Em=360/450 nm)。將每組細胞培養(yǎng)上清各取10 μl加入96孔板中,同樣的方法對細胞培養(yǎng)上清中FⅨa活性進行檢測。以上檢測各組樣本均做復孔重復3次,結果取均值。
PCR擴增產(chǎn)物在2%瓊脂糖凝膠電泳30 min后可得到一條大小約1700 bp的擴增條帶(圖1A),與 NCBI 中CYP4F2基因 CDS 大小一致,提示成功克隆CYP4F2基因。pIRES-FⅨ-CYP4F2質粒經(jīng)XbaⅠ與SalⅠ核酸限制性內切酶雙酶切后瓊脂糖凝膠電泳50 min后可獲得1條大約1700 bp條帶(圖1B),與NCBI中CYP4F2基因CDS大小一致,測序后證實含有CYP4F2-cDNA片段,提示質粒構建成功。
轉染pIRES-FⅨ質粒以及pIRES-FⅨ-CYP4F2質粒后,F(xiàn)Ⅸ和CYP4F2的表達顯著增加 (P<0.05;圖2),提示質粒轉染成功并正常表達。
使用FⅨa活性檢測試劑盒以及熒光酶標儀對各組細胞裂解液及培養(yǎng)上清FⅨa進行定量分析。發(fā)現(xiàn)過表達FⅨ后LO2細胞FⅨa的活性較正常對照組明顯升高[培養(yǎng)上清:(2268.67±114.15)vs(1614.00±69.67),P=0.038;細胞裂解液:(1097.33±55.52)vs(778.67±36.01),P=0.041]。提示細胞中FⅨa的活性與FⅨ表達呈正相關。而同時過表達CYP4F2和FⅨ后LO2細胞FⅨa的活性較過表達FⅨ組明顯降低[培養(yǎng)上清:(1540.00±72.64)vs(2268.67±114.15),P=0.032;細胞裂解液:(1805.33±10.50)vs(1097.33±55.52),P=0.036]。提示維生素K代謝相關基因CYP4F2過表達對凝血因子的活化具有抑制作用,進一步對凝血產(chǎn)生影響。具體結果見圖3。
圖1 CYP4F2基因PCR擴增產(chǎn)物和pIRES-FⅨ-CYP4F2重組質粒酶切
Figure 1 Electrophoresis of CYP4F2 PCR product and enzyme cleave identification of recombinant plasmid
M1: D2000 DNA marker; 1: PCR product; M2: 1kb plus DNA marker; 2: pIRES-FⅨ-CYP4F2 plasmid cleaved byXbaⅠ/SalⅠ; 3: pIRES-FⅨ-CYP4F2 plasmid
圖2 各組LO2細胞FⅨ及CYP4F2蛋白表達Figure 2 FⅨ and CYP4F2 protein expression of different LO2 cells Control: empty plasmid (pIRES); FⅨ: recombinant plasmid (pIRES- FⅨ); CYP4F2+FⅨ: recombinant plasmid (pIRES-FⅨ-CYP4F2). Compared with control group, *P<0.05
圖3 各組LO2細胞裂解液和培養(yǎng)上清液中FⅨa定量分析Figure 3 Quantitative analysis of FⅨa in cell culture supernatant and lysis solution from different plasmids
A: cell supernatant; B: cell lysates. Control: empty plasmid (pIRES); FⅨ: recombinant plasmid (pIRES-FⅨ); CYP4F2+FⅨ: recombinant plasmid (pIRES-FⅨ-CYP4F2); RFU: relative fluorescence units. Compared with control group,*P<0.05
CYP4F2基因是CYP450超家族的成員之一,位于19號染色體短臂,全長約20 kb,由13個外顯子和12個內含子組成[7]。CYP4F2編碼的蛋白具有氧化水解維生素K的功能,通過羥基化維生素K苯基側鏈導致維生素K循環(huán)中還原型維生素K水平下降[1]。CYP4F2基因突變后對維生素K的代謝能力改變,造成維生素K蓄積或減少。多個研究表明CYP4F2*3基因型與華法林高劑量有關[8,9]。但CYP4F2與出血并發(fā)癥的相關性及作用機制研究相對較少。本研究通過在人肝細胞中過表達CYP4F2和FⅨ后發(fā)現(xiàn),CYP4F2對維生素K依賴性凝血因子的活化具有抑制作用。該研究表明,CYP4F2的過表達可能增強了對維生素K循環(huán)中維生素K的氧化水解,導致還原型維生素K含量降低,進而導致凝血因子γ羧化反應減弱,凝血因子活性降低。由于經(jīng)肝臟維生素K循環(huán)進行的凝血因子γ羧化反應的變化與維生素K拮抗劑華法林出血并發(fā)癥的發(fā)生直接相關,因此,本研究為前期發(fā)現(xiàn)的CYP4F2基因變異型與華法林出血并發(fā)癥的關聯(lián)性提供了生物功能依據(jù)[4,10]。
本研究通過補充外源性維生素K1使細胞培養(yǎng)液中維生素K1濃度達到3 nmol/L,該濃度與人血漿中維生素K濃度接近[11,12],因此,既能保證細胞完成正常的維生素K循環(huán),又能避免外源性維生素對實驗造成的干擾。由于FⅨ是分泌蛋白,因此本研究分別采用細胞裂解液和細胞培養(yǎng)上清液作為樣本檢測FⅨa的活性。結果顯示,無論是在細胞裂解液還是細胞培養(yǎng)上清液中,過表達CYP4F2后,F(xiàn)Ⅸa的活性均降低。另外,在肝細胞的維生素K循環(huán)中VKOR為關鍵酶[5],在維生素K的氧化還原過程中發(fā)揮重要作用。本研究在細胞培養(yǎng)過程中未額外轉染外源性VKOR,而是依靠細胞內源性VKOR完成維生素K循環(huán)及凝血因子羧化反應。這樣可能存在因細胞內源性VKOR活性不足而影響結果,但是通過對維生素K依賴性凝血因子活性的檢測發(fā)現(xiàn),依靠肝細胞內源性VKOR能夠實現(xiàn)維生素K循環(huán)催化的凝血因子羧化反應。
綜上所述,本研究證實在肝細胞中過表達CYP4F2可導致維生素K依賴性FⅨa的活性降低。該結果將有助于進一步揭示CYP4F2基因與維生素K拮抗劑華法林出血關聯(lián)性的相關功能機制。
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