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        菠蘿蜜種子中總黃酮的提取工藝及其抗氧化性研究

        2017-03-30 05:38:10張錦東王小玉游淑珠趙國鋒余以剛
        廣東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2017年12期
        關(guān)鍵詞:菠蘿蜜中總靜置

        張錦東,王小玉,游淑珠,趙國鋒,余以剛

        (1.華南理工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東 廣州 510641;2.珠海出入境檢驗(yàn)檢疫局技術(shù)中心,廣東 珠海 519000;3.珠海市禾協(xié)農(nóng)產(chǎn)品有限公司,廣東 珠海 519100)

        菠蘿蜜又稱樹菠蘿、木菠蘿,主要分布于熱帶亞熱帶地區(qū),是常見的熱帶水果。我國種植菠蘿蜜的記載可追溯至1 000多年前,廣泛分布于廣東、海南、云南、四川等地,近年來種植面積和產(chǎn)量日益增長。菠蘿蜜在實(shí)際生產(chǎn)中以果肉銷售為主,而生產(chǎn)過程中產(chǎn)生約70%的副產(chǎn)物,如種子、果瓤等鮮少被開發(fā)利用,產(chǎn)生的廢棄物造成了環(huán)境污染。菠蘿蜜種子在整果中的含量約為12%,菠蘿蜜種子含有豐富的淀粉和蛋白質(zhì),其主要組成成分與小麥粉類似;同時(shí)菠蘿蜜種子還含有各種礦物質(zhì)和總黃酮等功能性成分[1-3],有益氣養(yǎng)血和消炎止痛的功效,營養(yǎng)價(jià)值較高。目前,國內(nèi)外對(duì)菠蘿蜜種子的研究利用主要集中在對(duì)菠蘿蜜種子的化學(xué)組成、淀粉提取工藝及理化性質(zhì)方面[4-10],對(duì)菠蘿蜜種子中黃酮等功能性成分的相關(guān)研究較少,為此,我們采用四因素三水平的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化了菠蘿蜜種子中總黃酮的提取工藝,并采用DPPH法和水楊酸法測(cè)定了總黃酮粗提液的抗氧化性,為菠蘿蜜種子的深加工及綜合利用提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        菠蘿蜜種子由珠海禾協(xié)農(nóng)產(chǎn)品有限公司提供,蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品(純度95%)為國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品。主要試劑:抗壞血酸、二苯代苦味?;杂苫?,1-pheny-2-picrylhydrazyl,DPPH)、水楊酸、無水乙醇、FeSO4、H2O2、NaNO2、Al(NO2)3、NaOH 等,實(shí)驗(yàn)所用試劑均為分析純。

        主要儀器:752S型紫外可見分光光度計(jì)(上海棱光技術(shù)公司)、JJ200型電子天平(常熟雙杰測(cè)試儀器廠)、冷凍干燥機(jī)(廣東永利機(jī)械設(shè)備有限公司)、數(shù)顯恒溫水浴鍋(金壇市白塔金昌實(shí)驗(yàn)儀器廠)、DFY-500型搖擺式高速粉碎機(jī)(溫嶺市林大機(jī)械有限公司)、JW-3021HR型高速冷凍離心機(jī)(安徽嘉文儀器設(shè)備有限公司)等。

        1.2 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制[11-13]

        準(zhǔn)確稱取0.0100 g蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,置于50 mL容量瓶中,用60%乙醇溶液經(jīng)超聲波溶解后定容至刻度,即配制成0.2 g/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別準(zhǔn)確移取標(biāo)準(zhǔn)溶液0.00、2.00、4.00、6.00、8.00、10.00 mL(相當(dāng)于 0.00、0.40、0.80、1.20、1.60、2.00 mg無水蘆?。┯?支25 mL容量瓶中,分別加入蒸餾水至約10.0 mL。依次加入配置好的7.25×10-1mol/L的NaNO2溶液1.0 mL,搖勻并靜置6 min;依次加入配置好的1.59 mol/L Al(NO3)3溶液 1.0 mL,搖勻并靜置 6 min;依次加入配置好的5 mol/L NaOH溶液4.0 mL,分別用蒸餾水定容至刻度,搖勻并靜置15 min。以試劑空白調(diào)節(jié)零點(diǎn),在λ= 510 nm處測(cè)定吸光度值A(chǔ)。每個(gè)處理3次重復(fù)。

        1.3 總黃酮提取工藝的優(yōu)化

        1.3.1 單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì) (1)樣品預(yù)處理:菠蘿蜜種子經(jīng)真空冷凍干燥處理后,用粉碎機(jī)粉碎成粉末,過孔徑0.250 mm篩,裝入錫箔袋密封避光保存。

        (2)總黃酮粗提液的配制:準(zhǔn)確稱取一定質(zhì)量的菠蘿蜜種子粉樣品,在文獻(xiàn)[14-17]的基礎(chǔ)上,以乙醇濃度、料液比、提取溫度、提取時(shí)間作為實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)參數(shù),以乙醇溶液為溶劑,把樣品加入一定量溶劑中,加熱提取、抽濾,4 000 r/min離心15 min,取上清液;將濾渣按上述方法處理1次,抽濾、離心,合并提取液,將所得到的提取液定容于50 mL容量瓶中;從上述50 mL溶液中準(zhǔn)確移取5.0 mL置于比色皿中,加入7.25×10-1mol/L的NaNO2溶液1.0 mL,搖勻并靜置6 min;加入1.59 mol/L的Al(NO3)3溶液1.0 mL,搖勻并靜置6 min;加入5 mol/L的NaOH溶液4.0 mL,搖勻并加入0.4 mL蒸餾水,搖勻并靜置15 min,在510 nm處測(cè)其吸光度值A(chǔ)。根據(jù)線性回歸方程y = 0.4174x + 0.0001,計(jì)算菠蘿蜜種子中總黃酮含量。菠蘿蜜種子中總黃酮提取率計(jì)算公式為:

        (3)乙醇濃度的確定:固定提取時(shí)間40 min、提取溫度60℃、料液比1∶5 g/mL,選擇乙醇濃度為40%、50%、60%、70%、80%分別提取菠蘿蜜種子中黃酮化合物。

        (4)料液比的確定:固定乙醇濃度60%、提取時(shí)間40 min、提取溫度60℃,選擇料液比為 1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25 g/mL 分別提取菠蘿蜜種子中黃酮化合物。

        (5)提取溫度的確定:固定乙醇濃度60%、提取時(shí)間40 min、料液比1∶15 g/mL,選擇提取溫度為40、50、60、70、80℃分別提取菠蘿蜜種子中黃酮化合物。

        (6)提取時(shí)間的確定:固定乙醇濃度60%、提取溫度70℃、料液比1∶15 g/mL,選擇提取時(shí)間為30、40、50、60、70 min分別提取菠蘿蜜種子中黃酮化合物。

        1.3.2 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì) 在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,根據(jù)組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,對(duì)乙醇濃度(A)、提取溫度(B)、料液比(C)、提取時(shí)間(D)4個(gè)變化因素,采用L9(34)即四因素三水平的分析方法,分析4種因素對(duì)菠蘿蜜種子中總黃酮提取率的影響。根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,確定正交試驗(yàn)因素水平(表1)。

        表1 正交試驗(yàn)因素水平

        1.4 總黃酮抗氧化活性的測(cè)定

        1.4.1 DPPH法 DPPH法可以快速、簡(jiǎn)便、靈敏地檢測(cè)出天然抗氧化劑的抗氧化活性。其氧化活性用清除率來表示,清除率越大,抗氧化性越強(qiáng)。在文獻(xiàn)[18-22]的基礎(chǔ)上,按如下測(cè)定步驟操作:(1)取0.25 mL 1.26×10-4mol/L的DPPH溶液與1.0 mL無水乙醇混合并搖勻,在37℃下靜置30 min,以無水乙醇為空白在517 nm波長處測(cè)定其吸光度值,記為A0。(2)分別取1 mL提取液與0.25 mL無水乙醇混合并搖勻,在37℃下靜置30 min,以無水乙醇為空白在517 nm測(cè)定其吸光度值,記為Aj。(3)分別取1 mL提取液與0.25 mL 1.26×10-4mol/L的DPPH溶液混合并搖勻,在37℃下靜置30 min,以無水乙醇為空白在517 nm測(cè)定其吸光度值,記為Ai。計(jì)算總黃酮提取液對(duì)DPPH的清除率:

        式中,A0為樣品空白在517 nm波長下測(cè)得的吸光度值,Aj為提取液不加DPPH時(shí)在517 nm波長下測(cè)得的吸光度值,Ai為提取液加DPPH后在517 nm波長下測(cè)得的吸光度值。

        以同樣方法測(cè)定Vc對(duì)DPPH的清除能力,作為對(duì)照。3次重復(fù)。

        1.4.2 水楊酸法 Fenton反應(yīng)會(huì)產(chǎn)生羥自由基(·OH),水楊酸與羥自由基反應(yīng)產(chǎn)生2,3-二羥基苯甲酸,該物質(zhì)在510 nm處的吸光值與·OH的含量成正比。因此可通過紫外分光光度法測(cè)定·OH的含量并描述待測(cè)物質(zhì)對(duì)·OH的清除能力。在文獻(xiàn) [23-27]的基礎(chǔ)上,按如下測(cè)定步驟操作:(1)取1.0 mL 9.0×10-3mol/L的FeSO4溶液與1.0 mL 9.0×10-3mol/L的水楊酸、1.0 mL 8.8×10-3mol/L的 H2O2、1.0 mL蒸餾水混合并搖勻,在37℃下靜置1 h,以蒸餾水為空白在510 nm波長處測(cè)定其吸光度值,記為A0。(2)取 1.0 mL 9.0×10-3mol/L 的 FeSO4溶液與1.0 mL 9.0×10-3mol/L的水楊酸、1.0 mL 8.8×10-3mol/L的H2O2、1.0 mL粗提液混合并搖勻,在37℃下靜置1 h,以蒸餾水為空白在510 nm波長處測(cè)定其吸光度值,記為Ai。(3)取1.0 mL 9.0×10-3mol/L的FeSO4溶液與1.0 mL 9.0×10-3mol/L的水楊酸、1.0 mL粗提液、1.0 mL蒸餾水混合并搖勻,在37℃下靜置1 h,以蒸餾水為空白在510 nm波長處測(cè)定其吸光度值,記為Aj。計(jì)算總黃酮粗提取液對(duì)·OH的清除率:

        式中,A0為樣品空白在510 nm波長下測(cè)得的吸光度值,Ai為粗提液加H2O2后在510 nm波長下測(cè)得的吸光度值,Aj為粗提液不加H2O2時(shí)在510 nm波長下測(cè)得的吸光度值。

        試驗(yàn)數(shù)據(jù)通過Excel處理,以鄧肯新復(fù)極差檢驗(yàn)法進(jìn)行多重比較。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 總黃酮的檢測(cè)

        以吸光度值A(chǔ)為縱坐標(biāo),蘆丁含量為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。通過線性擬合得到回歸方程y = 0.4174x + 0.0001,相關(guān)系數(shù)R2= 0.9993。根據(jù)樣品吸光度值和標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品中總黃酮含量,結(jié)果表明,黃酮含量在0~2.0mg范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

        圖1 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線

        2.2 總黃酮的提取工藝

        2.2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果及分析 (1)乙醇濃度對(duì)總黃酮提取率的影響:由圖2可知,當(dāng)乙醇濃度低于60%時(shí),隨著乙醇濃度的提高,總黃酮含量增加趨勢(shì)顯著,總黃酮提取率遞增,其中,乙醇濃度60%時(shí)的總黃酮提取率為1.82%,比乙醇濃度40%時(shí)高了75.7%;當(dāng)乙醇濃度高于60%時(shí),總黃酮提取率遞增速率明顯降低,乙醇濃度80%時(shí)的總黃酮提取率只比60%時(shí)高3.3%,說明此時(shí)菠蘿蜜種子中總黃酮提取已經(jīng)較充分。考慮綜合成本等實(shí)際因數(shù),選取60%為合適的乙醇濃度。

        圖2 乙醇濃度對(duì)黃酮提取率的影響

        (2)料液比對(duì)總黃酮提取率的影響:由圖3可知,隨著料液比的降低,總黃酮提取量逐漸遞減;當(dāng)料液比高于1∶15 g/mL時(shí),總黃酮提取率隨料液比的降低而逐漸遞增,料液比為1∶15 g/mL時(shí)總黃酮提取率達(dá)到峰值2.73%,比1∶5 g/mL時(shí)高了50.0%;當(dāng)料液比小于1∶15 g/mL時(shí),總黃酮提取率隨料液比的降低而無明顯變化。因此當(dāng)料液比為1∶15 g/mL時(shí),認(rèn)為總黃酮的提取已經(jīng)比較充分。綜上所述,選取1∶15 g/mL為提取的合適料液比。

        圖3 料液比對(duì)黃酮提取率的影響

        (3)提取溫度對(duì)總黃酮提取率的影響:由圖4可知,當(dāng)提取溫度在40~70℃時(shí),隨著提取溫度的提高,總黃酮含量逐漸遞增,總黃酮提取率也隨之逐漸遞增,提取溫度在70℃時(shí)出現(xiàn)峰值2.84%,其中提取溫度為70℃時(shí)的總黃酮提取率比40℃時(shí)提高了78.6%。當(dāng)提取溫度超過70℃時(shí)總黃酮提取量與提取率均呈現(xiàn)遞減趨勢(shì),提取溫度為80℃時(shí)的總黃酮提取率比70℃時(shí)降低了6.4%,說明溫度過高破壞了黃酮的提取體系,不利于提取。綜上所述,選取70℃為合適的提取溫度。

        圖4 提取溫度對(duì)黃酮提取率的影響

        圖5 提取時(shí)間對(duì)黃酮提取率的影響

        表2 正交試驗(yàn)結(jié)果

        (4)提取時(shí)間對(duì)總黃酮提取率的影響:由圖5可知,當(dāng)提取時(shí)間在30~50 min時(shí),隨著提取時(shí)間的延長,總黃酮含量逐漸遞增,總黃酮提取率也隨之逐漸遞增,提取時(shí)間在50 min時(shí)出現(xiàn)總黃酮提取率峰值(2.89%),其中提取時(shí)間為50 min時(shí)的總黃酮提取率比30 min時(shí)提高了16.7%。當(dāng)提取溫度超過50 min時(shí)總黃酮提取量與提取率均呈現(xiàn)遞減趨勢(shì),提取溫度為70 min時(shí)的總黃酮提取率比50 min時(shí)降低了5.9%,表明提取時(shí)間過長不利于總黃酮的提取,這可能是由于在高溫下提取時(shí)間過長對(duì)部分黃酮造成了影響所致。綜上所述,選取50 min為提取的合適時(shí)間。

        2.2.2 正交試驗(yàn)結(jié)果及分析 由表2可知,在水浴提取條件下,乙醇濃度為極顯著影響因素,提取溫度、料液比、提取時(shí)間為顯著因素,從實(shí)際生產(chǎn)情況考慮,最終確定生產(chǎn)的最優(yōu)工藝為A3B1C3D2,即70%乙醇、60℃水浴提取50 min、料液比為1∶20。最優(yōu)條件下,菠蘿蜜種子中總黃酮提取率達(dá)到3.30%。

        2.3 總黃酮粗提液的抗氧化活性

        2.3.1 DPPH法 從圖6可以看出,菠蘿蜜種子中總黃酮提取液和Vc溶液對(duì)DPPH的清除能力均隨濃度的提高而增強(qiáng),在濃度小于0.1 mg/mL時(shí),總黃酮提取液對(duì)DPPH的清除能力強(qiáng)于Vc,當(dāng)濃度大于0.10 mg/mL后,Vc對(duì)DPPH的清除能力稍強(qiáng)。菠蘿蜜種子中總黃酮提取液的IC50>Vc的IC50值,表明低濃度下菠蘿蜜種子中總黃酮提取液的對(duì)DPPH的清除能力較強(qiáng),抗氧化活性較強(qiáng)。

        圖6 不同濃度下反應(yīng)液對(duì)DPPH的清除率

        2.3.2 水楊酸法 從圖7可以看出,隨濃度的提高,總黃酮粗提液和Vc溶液對(duì)·OH的清除能力逐漸增強(qiáng),在濃度小于0.38 mg/mL時(shí),總黃酮提取液對(duì)DPPH的清除能力強(qiáng)于Vc,黃酮提取液的IC50>Vc的IC50。當(dāng)濃度大于0.380 mg/mL后,Vc對(duì)·OH的清除能力稍強(qiáng)。在最優(yōu)提取工藝條件下,濃度為0.6 mg/mL的菠蘿蜜種子中總黃酮粗提液對(duì)·OH清除達(dá)到95.3%,表明其總黃酮粗提液對(duì)·OH有較高的清除能力,具有較高的開發(fā)利用價(jià)值。

        圖7 不同濃度下反應(yīng)液對(duì)·OH的清除率

        3 結(jié)論與討論

        (1)在水浴條件下,4個(gè)因素對(duì)菠蘿蜜種子粉總黃酮提取率的影響大小為:乙醇濃度>料液比>提取溫度>提取時(shí)間。其中,乙醇濃度對(duì)總黃酮提取率影響極顯著,料液比、提取溫度、提取時(shí)間對(duì)總黃酮提取率影響顯著;菠蘿蜜種子中總黃酮的提取最優(yōu)工藝為乙醇體積分?jǐn)?shù)70%,料液比1:20 g/mL,60℃水浴提取50 min,提取率達(dá)到3.30%。

        (2)菠蘿蜜種子中總黃酮粗提液對(duì)DPPH及·OH的清除能力隨濃度的提高而增強(qiáng),濃度在0.3 mg/mL時(shí)對(duì)DPPH及·OH的清除率分別達(dá)到90.2%和94.1%,說明菠蘿蜜種子中的總黃酮具有較強(qiáng)的抗氧化能力,可作為天然健康食品原料。

        (3)菠蘿蜜品種眾多,按肉質(zhì)和水分含量可分為干苞和濕苞兩種類型;按花期可分為單造和雙造兩種類型等。由于各品種營養(yǎng)品質(zhì)差異較大,且各營養(yǎng)成分間的相關(guān)性尚有待研究,本試驗(yàn)未對(duì)多品種菠蘿蜜種子的提取工藝及抗氧化性作進(jìn)一步分析,因此仍需進(jìn)一步研究完善。

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