王 芬 謝成穎 曲 瑩 魏 丹 索元震吳夢瑤 袁 燕 魏勛斌 陳 彤△

(1復(fù)旦大學(xué)附屬華山醫(yī)院血液科 上海 200040; 2上海交通大學(xué)生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)院Med-X研究院 上海 200030)

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一種骨髓單個核細(xì)胞新型示蹤方法
——細(xì)胞膜染料DiD標(biāo)記法

王 芬1謝成穎2曲 瑩1魏 丹2索元震2吳夢瑤1袁 燕1魏勛斌2陳 彤1△

(1復(fù)旦大學(xué)附屬華山醫(yī)院血液科 上海 200040;2上海交通大學(xué)生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)院Med-X研究院 上海 200030)

目的 檢測細(xì)胞膜染料DiD對骨髓單個核細(xì)胞(bone marrow mononuclear cells,BM-MNC)的染色效率和造血功能的影響,并用DiD示蹤BM-MNC活體直觀觀察DiD標(biāo)記的BM-MNC在小鼠顱骨骨髓內(nèi)的順利歸巢。 方法 體外流式細(xì)胞術(shù)分析方法和激光共聚焦掃描顯微鏡成像方法檢測BM-MNC的DiD染色效率;CCK-8細(xì)胞活性-增殖實(shí)驗(yàn)和造血集落形成實(shí)驗(yàn),檢測DiD染料對BM-MNC的造血功能的影響;單/雙光子共聚焦顯微鏡下活體直觀觀察DiD標(biāo)記的BM-MNC在小鼠顱骨骨髓內(nèi)的歸巢。結(jié)果 BM-MNC的DiD染色效率高達(dá)90%以上,且DiD對BM-MNC的細(xì)胞活性-增殖和造血能力均無明顯的毒性影響(P>0.05);單/雙光子共聚焦顯微鏡下,在活體小鼠顱骨骨髓內(nèi)可直觀觀察到DiD標(biāo)記的BM-MNC的順利歸巢。結(jié)論 細(xì)胞膜染料DiD對BM-MNC的染色效率高、均一,無明顯細(xì)胞毒性,熒光不易被淬滅,且受機(jī)體自身組織的背景干擾少,用于活體示蹤時DiD標(biāo)記的BM-MNC可順利歸巢到骨髓。

細(xì)胞膜染料; 骨髓單個核細(xì)胞; 造血干細(xì)胞移植

骨髓單個核細(xì)胞(bone marrow mononuclear cell ,BM-MNC)作為造血干細(xì)胞(hematopoietic stem cell ,HSC)的主要來源之一,具有多種臨床治療潛能,且短時間易獲取、不需要體外培養(yǎng),目前已成功應(yīng)用于臨床上的造血干細(xì)胞移植(hematopoietic stem cell transplantation ,HSCT)[1-4]。BM-MNC的活體示蹤研究,對臨床調(diào)控HSCT后的HSC歸巢及拓寬骨髓HSC在其他再生治療領(lǐng)域的應(yīng)用具有重要意義。 在以往的BM-MNC示蹤研究中[5-8],BM-MNC的示蹤方法主要有放射性核素標(biāo)記探針如111Indium和technetium-99 (99Tc)、報告基因標(biāo)記如PAI-1、細(xì)胞膜染料標(biāo)記如CFSE和PKH等。然而,這些體內(nèi)示蹤方法都存在一定的缺點(diǎn)和局限性。放射性核素的半衰期短,不宜用于長時間觀察,且具有細(xì)胞毒性[9];報告基因標(biāo)記需要長期穩(wěn)定轉(zhuǎn)染[10]。目前所用到的CFSE和PKH所發(fā)出的熒光波段和機(jī)體組織的自身熒光波段有所重疊(均在510 nm左右),使得移植細(xì)胞的熒光易受自身熒光的背景干擾[11]。

DiD為一種新型的親脂性細(xì)胞膜染料(屬于一個親脂性示蹤染料家族,該家族還包括 DiO,DiI,DiR 等),其化學(xué)名稱為1,1′-雙十八烷基-3,3,3′,3′-四甲基吲哚菁,分子式為C61H99ClN2O4,相對分子質(zhì)量為959.91,基本無細(xì)胞毒性,可用來染細(xì)胞膜和其他脂溶性生物結(jié)構(gòu)。當(dāng)與細(xì)胞膜結(jié)合后其熒光強(qiáng)度迅速增強(qiáng),染料迅速均勻分布在整個細(xì)胞膜上。該族染料均有著很高的淬滅常數(shù)和激發(fā)態(tài)壽命,高熒光強(qiáng)度至少維持在30天,甚至長達(dá)2年以上[12-13]。DiD可被He-Ne 激光器發(fā)出的633 nm 波長激發(fā)光激發(fā),發(fā)射光峰值在 665 nm,與機(jī)體組織自發(fā)熒光譜窗基本不重疊。DiD的染色效率高、均一,不易猝滅,無明顯細(xì)胞毒性,且受自身熒光背景干擾小。目前DiD已成功應(yīng)用于多種細(xì)胞的體內(nèi)示蹤研究,如Treg細(xì)胞、間充質(zhì)干細(xì)胞、腫瘤細(xì)胞、造血干祖細(xì)胞等[12,14-16]。

本研究目的在于檢測細(xì)胞膜染料DiD對BM-MNC的染色效率和造血功能的影響,并用DiD示蹤BM-MNC,活體直觀觀察DiD標(biāo)記的BM-MNC在小鼠顱骨骨髓內(nèi)的順利歸巢。

材 料 和 方 法

實(shí)驗(yàn)動物 本實(shí)驗(yàn)所使用的8～10周齡 BALB/c雄性 SPF級小鼠,體質(zhì)量為 (23±2) g,由上海市斯萊克實(shí)驗(yàn)動物有限公司提供,飼養(yǎng)于復(fù)旦大學(xué)藥學(xué)院張江動物房 SPF 級環(huán)境。

主要試劑和儀器 細(xì)胞膜染料DiD(貨號 D307;規(guī)格25 mg;品牌Invitrogen Molecular Probes);小鼠骨髓單個核細(xì)胞分離液(貨號TBD2013LM;規(guī)格2×100 mL/kit;品牌天津?yàn)骉BD);紅細(xì)胞裂解液(貨號9-140331-4;規(guī)格500 mL;品牌GENMED);類胎牛血清FBS(貨號SV30184.02;規(guī)格500 mL;品牌HyClone);小鼠集落形成試劑盒MethoCultTMGFM 3434(貨號EXP.MM/YYYY;規(guī)格100 mL;品牌Stem Cell);CCK8(貨號CK04;規(guī)格500孔;品牌DOJINDO)。體外流式細(xì)胞儀(型號FACSAriaTMIII;品牌BD);激光共聚焦顯微鏡(型號LEICA TCS SP5;品牌LEICA);雙光子共聚焦顯微鏡(型號A1RMP;品牌尼康)。

實(shí)驗(yàn)方法

密度梯度離心法提取BM-MNC 8～12周齡 BALB/c 雄性SPF級小鼠過量麻醉處死,置于75%酒精中浸泡5 min后,無菌條件下剝離股骨和脛骨,用F 液沖洗出全部骨髓液,200目篩網(wǎng)過濾后,500×g,離心20 min,棄上清。沉淀重復(fù)用F液洗滌1次后用全血及組織稀釋液懸起(細(xì)胞濃度為2×108～1×109/mL)。將懸液小心疊加在C 液液面上(重懸骨髓液與C液比例為1∶1),400×g,離心20 min,最小加速度。然后收集第二層乳白色細(xì)胞,將其放入含4～5 mL細(xì)胞洗滌液的離心管中,充分混勻后,500×g,離心20 min。離心后的沉淀經(jīng)PBS反復(fù)洗滌2 次即為所需的BM-MNC。

DiD標(biāo)記BM-MNC 將BM-MNC重懸于PBS內(nèi)[細(xì)胞濃度約在(2～3)×106/mL]。避光環(huán)境中,向每mL細(xì)胞懸液中加入 5 μL 濃度為1 mmol/L的DiD 儲存子液,輕輕吹打,使染料和細(xì)胞懸液充分混勻,置于 37 ℃電熱恒溫水浴箱內(nèi)搖晃染色 40 min。加入PBS沖洗懸液,400×g,離心5 min,棄上清,沉淀再經(jīng)PBS反復(fù)洗滌2次即為DiD標(biāo)記的BM-MNC。

DiD對BM-MNC造血功能的毒性檢測 主要采用骨髓單個核細(xì)胞的CCK-8細(xì)胞活性-增殖實(shí)驗(yàn)和造血集落形成實(shí)驗(yàn),來檢測DiD染料對BM-MNC造血功能的毒性影響。

CCK-8細(xì)胞活性-增殖實(shí)驗(yàn) DiD標(biāo)記的BM-MNC和未標(biāo)記的BM-MNC分別作為實(shí)驗(yàn)組和陰性對照組,兩組均用10% FBS/IMDM重懸至1×106/mL細(xì)胞濃度,分別接種在同一96孔板上,每組接種3孔,每孔接種100 μL細(xì)胞懸液,并以100 μL無細(xì)胞的10% FBS/IMDM作為空白對照。接種后,將96孔板置于37 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)2 h,待細(xì)胞狀態(tài)穩(wěn)定后,向每組每孔內(nèi)加入CCK-8試劑10 μL,混勻后再置于上述培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)培養(yǎng)。24 h后拿出孔板,置于酶聯(lián)免疫檢測儀中,于450 nm波長處測定孔板上各孔的光吸收值。

造血集落形成實(shí)驗(yàn) DiD標(biāo)記的BM-MNC和未標(biāo)記的BM-MNC分別作為實(shí)驗(yàn)組和陰性對照組,兩組均用10% FBS/IMDM重懸至2.5×105/mL細(xì)胞濃度,然后與集落形成培養(yǎng)基充分混勻,分別接種在中培養(yǎng)皿內(nèi),每組接種3皿,每皿接種300 μL,密度為2.5×105/mL細(xì)胞。接種后,將培養(yǎng)皿靜置于4 ℃冰箱中5 min,排除液體內(nèi)的氣泡,再將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)移到37 ℃培養(yǎng)箱,12天后計(jì)算兩組的各種集落及總集落的形成情況。重復(fù)3次試驗(yàn)后,統(tǒng)計(jì)結(jié)果。小鼠BM-MNC培養(yǎng)后形成的造血集落主要有3種:BFU-E(爆式紅系集落形成單位)、CFU-GM(粒單核系集落形成單位)、CFU-GEMM(粒單核系-巨核細(xì)胞-紅系集落形成單位)。本實(shí)驗(yàn)計(jì)數(shù)各種集落的標(biāo)準(zhǔn)為:BFU-E約在孵育后10～14天計(jì)數(shù),其特點(diǎn)是集落邊緣雜細(xì)胞少,形態(tài)不規(guī)則,集落呈紅色或者黑褐色,里面由多個獨(dú)立的、不規(guī)則的小集落組成;CFU-GM約在孵育后10～14天計(jì)數(shù),其特點(diǎn)是邊緣細(xì)胞多,呈輻射狀,細(xì)胞集落總形態(tài)呈圓形或者橢圓形,非常規(guī)則,集落可呈灰色或者深灰色(高密度),其中CFU-G細(xì)胞偏小、發(fā)亮、更規(guī)則,CFU-M細(xì)胞偏大、呈灰色團(tuán);CFU-GEMM約在孵育后10～14天計(jì)數(shù),其特點(diǎn)是細(xì)胞集落多于500個細(xì)胞,在CFU-GM的基礎(chǔ)上,可發(fā)現(xiàn)不規(guī)則的紅系E分布在CFU-GEMM集落的周圍。

活體觀察DiD標(biāo)記的BM-MNC在顱骨骨髓內(nèi)的歸巢 移植后24 h ,深度麻醉小鼠,尾靜脈注射100 μL 濃度為10 mg/mL的 FITC-Dextran來標(biāo)記顱骨骨髓內(nèi)的血管。對顱骨骨髓觀察區(qū)進(jìn)行備皮,頭皮縱行切口,去除覆蓋在骨質(zhì)表面的骨膜,暴露顱骨,并滴少量無菌PBS于骨表面(以防骨表面水分蒸發(fā)變干而降低成像效果)。將小鼠放在單/雙光子共聚焦顯微鏡下觀察,主要觀察中央靜脈和冠狀靜脈交叉形成的十字形血管周邊的顱骨骨髓區(qū)。掃描結(jié)束后,對小鼠傷口進(jìn)行消毒、縫合處理,隨后將小鼠單獨(dú)放在一個飼養(yǎng)籠子里面,待其蘇醒。整個實(shí)驗(yàn)過程注意維持小鼠體溫的穩(wěn)定。

統(tǒng)計(jì)方法 采用Stata 10.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。若總體分布服從正態(tài)分布且方差齊性,則行單因素方差分析(One way ANOVA)和t檢驗(yàn);若總體分布不服從正態(tài)分布或方差不齊,則行秩和檢驗(yàn)(包括Kruskal-Wallis H)。α=0.05為檢驗(yàn)水平,P< 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

結(jié) 果

BM-MNC的DiD染色效率 本實(shí)驗(yàn)主要采用體外流式細(xì)胞術(shù)分析方法和激光共聚焦掃描顯微鏡成像方法檢測 BM-MNC的DiD染色效率。圖 1和圖2分別為體外流式細(xì)胞術(shù)分析圖和激光共聚焦掃描顯微鏡成像圖。這兩種方法的結(jié)果均顯示,BM-MNC的DiD染色效率可達(dá)90%上,可滿足體內(nèi)示蹤移植細(xì)胞的實(shí)驗(yàn)要求[11]。

DiD對BM-MNC造血功能的毒性檢測 本實(shí)驗(yàn)主要采用BM-MNC的CCK-8細(xì)胞活性-增殖實(shí)驗(yàn)和造血集落形成實(shí)驗(yàn),來檢測DiD染料對BM-MNC造血功能的毒性影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)果采用t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。圖3為DiD染料對BM-MNC活性-增殖能力的影響圖,結(jié)果顯示,DiD+標(biāo)記組(DiD+組)的BM-MNC的平均活性-增殖能力雖略低于未標(biāo)記組(對照組),但差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.107 4)。圖4為DiD染料對BM-MNC造血集落形成能力的影響圖,結(jié)果顯示,DiD+標(biāo)記組(DiD+組)和未標(biāo)記組(對照組)的BM-MNC在紅系BFU-E (P=0.814 5)、粒單核系CFU-GM (P=0.398 2)、粒-單核-巨核-紅系集落CFU-GEMM (P=0.854 2),以及總集落形成 (P=0.449 5)方面,均無明顯差別。

活體觀察DiD標(biāo)記的BM-MNC在顱骨骨髓內(nèi)的歸巢 為了進(jìn)一步觀察DiD標(biāo)記的BM-MNC在生物體內(nèi)是否順利歸巢到骨髓,我們采用了單/雙光子共聚焦顯微鏡,活體直觀觀察DiD標(biāo)記的BM-MNC在小鼠顱骨骨髓內(nèi)的歸巢。小鼠顱骨骨髓主近[19](圖5)。觀察6～10只小鼠后,結(jié)果顯示,每只小鼠顱骨骨髓區(qū)內(nèi)均有BM-MNC的分布(圖6)。

討 論

BM-MNC來源于骨髓,主要由造血干細(xì)胞和間充質(zhì)干細(xì)胞組成,負(fù)責(zé)造血及協(xié)助造血;骨髓也是BM-MNC移植后的主要?dú)w巢部位,BM-MNC歸巢到骨髓后的主要功能即重建造血[17-18]。

BM-MNC作為HSC的主要來源之一,目前已成功應(yīng)用于臨床上的造血干細(xì)胞移植,BM-MNC的活體示蹤研究,對臨床調(diào)控HSCT后的HSC歸巢及拓寬骨髓HSC在其他再生治療領(lǐng)域的應(yīng)用具有重要意義。與傳統(tǒng)的示蹤BM-MNC的方法相比,DiD作為一種新型的親脂性細(xì)胞膜染料,染色效率高、均一,有著很高的淬滅常數(shù)和激發(fā)壽命,其光譜窗與機(jī)體組織自身熒光譜窗基本不重疊,移植細(xì)胞的熒光受機(jī)體自身組織的背景干擾少,且無明顯細(xì)胞毒性,目前已用于多種細(xì)胞的體內(nèi)示蹤研究[12,14-16]。

本研究目的主要在于檢測細(xì)胞膜染料DiD對BM-MNC的染色效率和造血功能的影響,并用DiD示蹤BM-MNC,活體直觀觀察DiD標(biāo)記的BM-MNC在小鼠顱骨骨髓內(nèi)的順利歸巢。結(jié)果顯示,BM-MNC的DiD染色效率高達(dá)90%以上;且DiD對BM-MNC的細(xì)胞增殖能力和造血能力均無明顯的毒性影響;單/雙光子共聚焦顯微鏡下,在活體小然而近來有文獻(xiàn)報道,細(xì)胞膜染料可能存在染料轉(zhuǎn)移的現(xiàn)象——即移植后的細(xì)胞膜染料標(biāo)記細(xì)胞在機(jī)體內(nèi)死亡后可被機(jī)體內(nèi)的單核巨噬細(xì)胞吞噬,繼而膜染料會整合到這些免疫細(xì)胞上,導(dǎo)致這些免疫細(xì)胞也會顯示熒光[20]。這意味著DiD示蹤BM-MNC的作用還有待進(jìn)一步驗(yàn)證和研究。而以往所有示蹤BM-MNC的方法也都存在一定的局限性,如不宜長時間觀察、具有細(xì)胞毒性[9],需要長期穩(wěn)定轉(zhuǎn)染報道基因[10],容易受自身組織的背景干擾[11]等。DiD作為一種新型的親脂性細(xì)胞膜染料,克服了以往方法的諸多缺點(diǎn)和局限性,基本無細(xì)胞毒性;其具有很高的淬滅常數(shù)和激發(fā)態(tài)壽命,高熒光強(qiáng)度至少維持在30天,甚至長達(dá)2年以上[12-13];發(fā)射光峰值在 665 nm,與機(jī)體組織自發(fā)熒光譜窗基本不重疊,受自身熒光背景干擾少。DiD標(biāo)記的BM-MNC染色效率高且均一、無明顯細(xì)胞毒性、染料不易淬滅觀察時間較長,且自身熒光背景干擾少,可成功歸巢到活體小鼠骨髓,DiD標(biāo)記的BM-MNC未來有望應(yīng)用于骨髓單個核細(xì)胞與造血干細(xì)胞的長時間體內(nèi)示蹤研究。

A:The comparison of capacity to form BFU-E between control and DiD+group; B:The comparison of capacity to form CFU-GM between control and DiD+group; C:The comparison of capacity to form CFU-GEMM between control and DiD+group; D:The comparison of total colony number between control and DiD+group and the typical picture of two groups taken under the light microscope (4×).

圖 4 DiD對BM-MNC造血集落形成能力的影響圖

Fig 4 The effects of capacity of hematopoietic colony forming on BM-MNC by DiD

鼠顱骨骨髓內(nèi)可直觀觀察到DiD標(biāo)記的BM-MNC的順利歸巢。以上結(jié)果均表明,DiD標(biāo)記的BM-MNC可用于活體示蹤研究。

[1] CUENDE N,RICO L,HERRERA C.Concise review:bone marrow mononuclear cells for the treatment of ischemic syndromes:medicinal product or cell transplantation?[J].StemCellsTranslMed,2012,1(5):403-408.

[2] AGHAYAN HR,ARJMAND B,YAGHOUBI M,etal.Clinical outcome of autologous mononuclear cells transplantation for spinal cord injury:a systematic review and meta-analysis[J].MedJIslamRepubIran,2014,28:112.

[3] AFZAL MR,SAMANTA A,SHAH ZI,etal. Adult bone marrow cell therapy for ischemic heart disease:evidence and insights from randomized controlled trials[J].CircRes,2015,117(6):558-575.

[4] MESENTIER-LOURO LA,ZAVERUCHA-DO-VALLE C,ROSADO-DE-CASTRO PH,etal.Bone marrow-derived cells as a therapeutic approach to optic nerve diseases[J].StemCellsInt,2016,2016:5078619.

[5] CUI J,WAHL RL,SHEN T,etal.Bone marrow cell trafficking following intravenous administration[J].BrJHaematol,1999,107(4):895-902.

[6] WISENBERG G,LEKX K,ZABEL P,etal. Cell tracking and therapy evaluation of bone marrow monocytes and stromal cells using SPECT and CMR in a canine model of myocardial infarction[J].JCardiovascMagnReson,2009,11:11.

[7] BARBOSA DA FONSECA LM,XAVIER SS,ROSADO DE CASTRO PH,etal.Biodistribution of bone marrow mononuclear cells in chronic chagasic cardiomyopathy after intracoronary injection[J].IntJCardiol,2011,149(3):310-314.

[8] VASCONCELOS-DOS-SANTOS A,ROSADO-DE-CASTRO PH,LOPES DE SOUZA SAetal.Intravenous and intra-arterial administration of bone marrow mononuclear cells after focal cerebral ischemia:Is there a difference in biodistribution and efficacy?[J].StemCellRes,2012,9(1):1-8.

[9] KOJIMA H.Development of near-infrared fluorescent probes forin-vivoimaging[J].YakugakuZasshi,2008,128(11):1653-1663.

[10] WANG H,CAO F,De A,etal. Trafficking mesenchymal stem cell engraftment and differentiation in tumor-bearing mice by bioluminescence imaging[J].StemCells,2009,27(7):1548-1558.

[11] PARISH CR.Fluorescent dyes for lymphocyte migration and proliferation studies[J].ImmunolCellBiol,1999,77(6):499-508.

[12] FUJISAKI J,WU J,CARLSON AL,etal.Invivoimaging of Treg cells providing immune privilege to the haematopoietic stem-cell niche[J].Nature,2011,474(7350):216-219.

[13] VON BARTHELD CS,CUNNINGHAM DE,RUBEL EW.Neuronal tracing with DiI:decalcification,cryosectioning,and photoconversion for light and electron microscopic analysis[J].JHistochemCytochem,1990,38(5):725-733.

[14] TEO GS,YANG Z,CARMAN CV,etal.Intravital imaging of mesenchymal stem cell trafficking and association with platelets and neutrophils[J].StemCells,2015,33(1):265-277.

[15] SIPKINS DA,WEI X,WU JW,etal.Invivoimaging of specialized bone marrow endothelial microdomains for tumour engraftment[J].Nature,2005,435(7044):969-973.

[16] LO CC,FLEMING HE,WU JW,etal. Live-animal tracking of individual haematopoietic stem/progenitor cells in their niche[J].Nature,2009,457(7225):92-96.

[17] VAIDYAA,KALE V.Hematopoietic stem cells,their niche,and the concept of co-culture systems:A critical review[J].JStemCells,2015,10(1):13-31.

[18] FAJARDO-ORDUNA GR,MAYANI H,MONTESINOS JJ.Hematopoietic support capacity of mesenchymal stem cells:biology and clinical potential[J].ArchMedRes,2015,46(8):589-596.

[19] LO CC,LIN CP,SCADDEN DT.Invivoimaging of transplanted hematopoietic stem and progenitor cells in mouse calvarium bone marrow[J].NatProtoc,2011,6(1):1-14.

[20] LASSAILLY F,GRIESSINGER E,BONNET D.“Microen-vironmental contaminations” induced by fluorescent lipophilic dyes used for noninvasiveinvitroandinvivocell tracking[J].Blood,2010,115(26):5347-5354.

A new tracing method of bone marrow mononuclear cells by cell membrane dye Di

DWANG Fen1, XIE Cheng-ying2, QU Ying1, WEI Dan2, SUO Yuan-zhen2,WU Meng-yao1, YUAN Yan1, WEI Xun-bing2, CHEN Tong1△

(1DepartmentofHematology,HuashanHospital,FudanUniversity,Shanghai200040,China;2Med-XResearchInstitute,SchoolofBiomedicalEngineering,ShanghaiJiaoTongUniversity,Shanghai200030,China)

Objective To detect the labeling efficiency of DiD on bone marrow mononuclear cells (BM-MNC) and the effects of hematopoiesis on BM-MNC imposed by DiD,and then directly observe the successful homing of transplanted BM-MNC labeled by DiD in a live mouse skull marrow.Methods We detected the labeling efficiency of DiD on BM-MNC byinvitroflow cytometry and confocal laser scanning microscopy.We also detected the effects of DiD hematopoiesis on BM-MNC by CCK8 test and colony forming assay,and directly observed the homing of transplanted BM-MNC labeled by DiD in a live mouse skull marrow under the single/two-photon confocal laser scanning microscope. Results The labeling efficiency of DiD on BM-MNC was up to 90%,and the cell vitality-proliferation and capacity to produce blood cells of BM-MNC were changed very little after being labeled by DiD (P>0.05).The transplanted BM-MNC labeled by DiD could be seen successfully homing to skull marrow in a live mouse under the single/two-photon confocal laser scanning microscope. Conclusions DiD has high and uniform labeling efficiency,non-toxic to cell functions,low rate of fluorescence quenching,low interference from autofluorescence of tissue,and the BM-MNC labeled by DiD could home to bone marrow successfully in a live mouse.

cell membrane dye; bone marrow mononuclear cells; hemapoietic stem cell transplantation

國家自然科學(xué)基金(81561138002,91542109);上海市基礎(chǔ)研究重點(diǎn)項(xiàng)目(13JC1406404);上海市優(yōu)秀學(xué)術(shù)帶頭人計(jì)劃(16XD1400600)

R457.7

A

10.3969/j.issn.1672-8467.2016.06.010

2016-05-06;編輯:張秀峰)

△Corresponding author E-mail:chentong@fudan.edu.cn

*This work was supported by the National Natural Science Foundation of China(81561138002,91542109),the Key Program of Basic Research of Shanghai (13JC1406404) ,and the Excellent Leading Scholar Program of Shanghai (16XD1400600).