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        金線蓮多倍體誘導研究

        2016-11-28 01:35:57何碧珠楊超朱萍蔣繼宏
        江蘇農業(yè)科學 2016年9期
        關鍵詞:秋水仙素多倍體

        何碧珠+楊超+朱萍+蔣繼宏

        摘要:采用秋水仙素溶液浸泡法、涂抹法、加入培養(yǎng)基法誘導金線蓮多倍體,研究不同秋水仙素濃度、處理時間、處理方式金線蓮多倍體的誘導效果,并將誘變植株進行繁殖。結果表明:以700 mg/L秋水仙素加入培養(yǎng)基處理15 h誘變率最高,達53.00%;以500 mg/L浸泡法處理24 h,誘導效果最佳,誘變率為51.67%;以700 mg/L涂抹法涂抹在金線蓮莖節(jié)處誘導效果較好,誘變率為35.00%;3種多倍體誘導的效果順序為加入培養(yǎng)基法>浸泡法>涂抹法。

        關鍵詞:金線蓮;多倍體;秋水仙素;誘變率

        中圖分類號: S567.23+9.043 文獻標志碼: A

        文章編號:1002-1302(2016)09-0070-05

        金線蓮(Anoectochilus roxburghii)是我國傳統(tǒng)珍貴藥材,屬蘭科(Orchidaceae)開唇蘭屬(Anoectochilus)植物[1]。由于人為掠奪性采挖,金線蓮生境遭受嚴重破壞,加上金線蓮自身繁殖特性,種子細小,發(fā)育不完全,自然狀態(tài)下萌發(fā)率和繁殖率低下等特點,野生金線蓮存量已越來越少[2-5]。多倍體植物具有營養(yǎng)器官大、抗逆性強、藥用活性成分含量高等特性[6]。金線蓮組織培養(yǎng)方面報道雖多[7-13],但尚未見將一次性成苗培養(yǎng)技術應用于多倍體植株誘導方面應用的報道。本研究運用秋水仙素對一次性成苗培養(yǎng)植株進行多倍體誘導,以期為多倍體金線蓮工廠化生產提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        將在福建省永泰藤山自然保護區(qū)赤壁景區(qū)內采集的野生苗一次性成苗培養(yǎng)的第二代瓶苗作為試驗材料,選擇生長一致、莖部粗壯的植株進行試驗處理。

        1.2 方法

        采用3種方法進行多倍體誘導試驗,每種方法均設置若干組處理時間和濃度梯度,研究不同取材部位(莖段、莖尖)、處理方法、秋水仙素濃度及處理時間對多倍體誘變率的影響。

        1.2.1 秋水仙素溶液浸泡法 選取生長一致、莖節(jié)粗壯組培瓶苗,在無菌條件下將瓶苗植株切成長1~2 cm的帶節(jié)莖段,放入經過高壓滅菌濃度為300、500、700 mg/L的秋水仙素溶液分別浸泡10、20、30、40、50、60 h,每個處理重復3次,以無菌水浸泡處理材料為對照(CK)。將各處理后材料在超凈工作臺上用無菌水沖3~4遍后,接種在一次性成苗培養(yǎng)基MS+1 mg/L 6-BA+1.5 mg/L NAA+150 g/L土豆+3%蔗糖+0.65%瓊脂+0.2%活性炭上培養(yǎng),將莖節(jié)和頂芽分開培養(yǎng)。培養(yǎng)條件:溫度(23±2) ℃,光照強度1 000~1 500 lx,光照時間10 h/d。每瓶接種4個莖段或4個頂芽,每個處理接種5瓶,每個處理重復3次。

        1.2.2 培養(yǎng)基添加 選取生長一致、莖節(jié)粗壯組培瓶苗,在無菌條件下將瓶苗切成長1~2 cm的帶節(jié)莖段,接種到分別添加300、500、700 mg/L秋水仙素溶液的上述一次性成苗培養(yǎng)基上培養(yǎng)的植株,培養(yǎng)時間分別為5、10、15、20、25、30 d,以不加秋水仙素培養(yǎng)基為對照(CK),將處理后的材料轉入不含秋水仙素的培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng),將莖節(jié)和頂芽分開培養(yǎng),培養(yǎng)條件同“1.2.1”節(jié)。每瓶接種4個莖段或4個頂芽,每個處理接種5瓶、重復3次。

        1.2.3 秋水仙素蘸在材料處 選取生長一致、莖節(jié)粗壯組培瓶苗,在無菌條件下將瓶苗切成長1~2 cm的帶節(jié)莖段,在超凈工作臺中用無菌棉簽蘸上經高壓滅菌的秋水仙素溶液,涂抹在莖節(jié)處,再將涂抹過秋水仙素的材料接種到“1.2.1”節(jié)所述一次性成苗培養(yǎng)基上培養(yǎng)的植株,將莖節(jié)和頂芽分開培養(yǎng),秋水仙素溶液濃度分別為300、500、700 mg/L,共3個處理。每瓶接種4個莖段或4個頂芽,每個處理接種5瓶、重復3次,以無菌水處理材料為對照(CK)。

        1.3 多倍體鑒定

        1.3.1 形態(tài)學觀察 從植株大小以及葉片大小、顏色、厚度等形態(tài)特征上比較經過秋水仙素處理的植株與對照植株的差異,從而初步篩選出誘導植株。分別測量培養(yǎng)3、5個月二倍體苗和四倍體苗葉長、葉寬、葉厚、莖直徑、株高。

        選擇生長一致的誘導植株和對照植株,分別撕取葉片下表皮,置于載玻片上制成臨時裝片,在日本產Olympus倒置式生物顯微鏡下觀察。在10×10倍鏡下,隨機選擇10個視野,計算每個視野中的氣孔數目;在10×40倍鏡下,隨機選擇10個視野,測量視野中的氣孔長度、寬度。

        1.3.2 染色體觀察 對外部形態(tài)和氣孔明顯變大的植株,采用改良苯酚品紅染色法進行根尖染色體鑒定。在08:00—10:00切取植株根尖,先置于4 ℃冰箱中預處理8 h,后用卡諾固定液(冰乙酸 ∶乙醇=1 ∶3,V ∶V)在室溫下固定18 h,蒸餾水漂洗2~3次后,用90%、80%、70%乙醇溶液各浸泡30 min,再用蒸餾水漂洗2~3次,用1 mol/L HCl溶液在60 ℃ 水浴中解離處理30 min,解離好的根尖用蒸餾水洗凈并吸干水分,用改良苯酚品紅溶液染色5 min壓片,將壓片置于顯微鏡下鏡檢觀察染色條數。

        2 結果與分析

        2.1 金線蓮多倍體誘導研究

        2.1.1 浸泡處理對金線蓮多倍體離體誘導效果 不同濃度秋水仙素溶液浸泡處理后培養(yǎng)1個月時,莖節(jié)處未出現(xiàn)芽萌動現(xiàn)象,頂芽沒有伸長生長。培養(yǎng)2個月后,40%莖節(jié)間開始膨脹,腋芽發(fā)白,逐漸突起并伸長,抽出主芽,隨后分化出二級、三級側芽;5%生長出畸形芽;一部分出現(xiàn)褐化現(xiàn)象;一部分出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象;一部分剛開始有芽分化出來,隨后逐漸萎蔫死亡。與對照相比,處理2、12 h對材料抑制作用不明顯,芽長勢好,側芽多,部分處理長出叢生芽;處理24、36、48、60 h對材料生長抑制作用明顯,莖段芽萌動緩慢,生長慢,側芽較少。

        比較秋水仙素溶液對莖節(jié)、頂芽生長的影響,莖節(jié)較頂芽容易分化出側芽,頂芽未分化出芽,主要表現(xiàn)為伸長生長,生長較快。試驗發(fā)現(xiàn),秋水仙素對頂芽毒害作用比對莖節(jié)嚴重,頂芽生長受到明顯抑制,頂芽膨大后,部分生長停止并逐漸死亡,相同秋水仙素溶液濃度、相同處理時間下,頂芽成活率明顯低于莖節(jié)(圖1)。

        由表1可知,材料成活率隨著秋水仙素溶液濃度升高、處理時間延長而逐漸降低,尤其以700 mg/L秋水仙素溶液處理60 h下,材料成活率最低,僅為13.33%。相同秋水仙素濃度下,隨著處理時間延長,材料成活率也逐漸降低,300 mg/L秋水仙素溶液處理2 h下材料成活率為96.67%,而處理60 h時材料成活率降至35.00%;500 mg/L秋水仙素溶液處理2 h下材料成活率為93.33%,而處理60 h時材料成活率降至25.00%;700 mg/L秋水仙素溶液處理2 h下材料成活率為88.33%,而處理60 h時材料成活率降至13.33%。相同處理時間下,隨著秋水仙素溶液濃度升高,材料成活率顯著降低。

        由表1可知,不同濃度秋水仙素溶液處理不同時間后,對四倍體誘變率的影響有顯著差異。在相同秋水仙素濃度下,隨著處理時間延長,四倍體誘變率先升高后降低。300 mg/L秋水仙素溶液處理2 h,誘變率為0%,而其他時間處理下誘變率為3.33%~48.33%,尤其是處理36 h下誘變率最高,為48.33%。500 mg/L秋水仙素溶液處理2 h,誘變率為0%,而其他時間處理下誘變率為8.33%~51.67%,尤其是處理24 h 下誘變率最高,為51.67%。700 mg/L秋水仙素溶液處理下誘變率為8.33%~50.00%,尤其是處理12 h下誘變率最高,為50.00%。秋水仙素對試驗材料有一定傷害,隨著秋水仙素濃度升高和處理時間延長,傷害程度加重,導致死亡率升高,因此四倍體誘變率反而降低。

        2.1.2 加入培養(yǎng)基法對多倍體離體誘導的效果 與對照相比,處理5 d對材料抑制作用不明顯,芽長勢好,側芽多,部分長出叢生芽;處理10~30 d對材料生長抑制作用明顯,莖段萌動緩慢,側芽較少,頂芽生長慢。

        將秋水仙素加入培養(yǎng)基中對莖節(jié)和頂芽生長產生一定影響,莖節(jié)較頂芽容易分化出側芽,頂芽未分化出芽,主要表現(xiàn)為伸長生長,生長較快。觀察發(fā)現(xiàn),將秋水仙素加入培養(yǎng)基中對莖段毒害作用比對頂芽嚴重,莖段萌動受到明顯抑制,部分不萌動并逐漸死亡,相同秋水仙素濃度、處理時間下,莖段成活率明顯降低,這與浸泡處理結果相反。

        由表2可知,將材料接種到加入不同濃度秋水仙素的培養(yǎng)基,培養(yǎng)時間對材料死亡率產生影響。隨著秋水仙素溶液濃度升高、培養(yǎng)時間延長,材料死亡率隨之升高,尤其以700 mg/L 秋水仙素處理30 d,材料死亡率最高,為80.00%。低濃度秋水仙素下,延長處理時間,材料死亡率保持在相對較低水平;高濃度秋水仙素下,延長處理時間,材料死亡率升高很快。

        由表2還可知,低濃度秋水仙素下,延長處理時間,誘變率沒有明顯增加;高濃度秋水仙素下,延長處理時間,誘變率先升高后降低。300 mg/L秋水仙素溶液處理5~30 d,誘變率為0%~13.33%;而700 mg/L秋水仙素溶液處理5~30 d,誘變率從8.33%上升至53.33%后,又降至15.00%。秋水仙素對材料有一定傷害,隨著濃度升高和處理時間延長,傷害程度加重,導致死亡率升高,因此四倍體誘變率反而降低。

        2.1.3 涂抹法對多倍體離體誘導效果的影響 涂抹法較浸泡法、加入培養(yǎng)基法對材料傷害作用較輕,且節(jié)約藥品,但對四倍體誘導效果明顯較差。由表3可見,秋水仙素濃度為300 mg/L時,四倍體誘變率為13.33%,隨著秋水仙素濃度升高誘變率逐漸增加,當秋水仙素濃度為700 mg/L時,誘變率為35.00%,誘導效果明顯不如浸泡法、加入培養(yǎng)基法,因此該方法不適用于金線蓮多倍體誘導。

        2.2 誘導植株形態(tài)學觀察

        與對照相比,處理組植株在株高、莖粗、葉片大小、葉片厚度、莖節(jié)等外部形態(tài)特征上發(fā)生明顯變化。對莖段處理后,前期誘導分化慢,營養(yǎng)器官明顯增大,主要表現(xiàn)在植株高大,莖稈粗壯,莖節(jié)明顯且長,葉片肥厚,葉片變小,葉脈金色加深等,與二倍體差異明顯(表4)。

        氣孔大小、氣孔密度及保衛(wèi)細胞大小等可作為鑒定多倍體與二倍體的間接指標[14-17]。鏡檢發(fā)現(xiàn),誘導植株氣孔明顯增大,氣孔長度、寬度均明顯大于對照植株(圖2-a至圖2-d)。由表5可見,誘導植株氣孔為44.64 μm×27.78 μm,對照植株氣孔為32.24 μm×17.36 μm,誘導植株氣孔長度、寬度分別比正常植株增加38.46%、37.51%。每個視野氣孔數量明顯少于對照植株,為對照植株的53.85%。

        2.3 誘導植株根尖染色體數目觀察

        從形態(tài)學和解剖學上初步篩選出誘導植株,進行根尖染色體鑒定。曾雅娟等研究表明,金線蓮染色體數目為2n=40[18]。對誘導植株和對照植株進行根尖染色體制片(圖2-e、圖2-f),由于金線蓮染色體數目較多,染色體出現(xiàn)重疊,未能清晰算出染色體數目,但可以明顯看出誘導植株根尖細胞體積變大,細胞核增大,部分細胞形態(tài)發(fā)生變化,染色體數目增多。

        3 結論與討論

        將化學誘導劑和組織培養(yǎng)技術相結合進行人工誘導多倍體,已經在許多植物上取得成功。以往研究表明,掌握秋水仙素濃度及處理時間是多倍體誘導成功的關鍵[19-21]。秋水仙素濃度太低或處理時間太短無法達到誘導目的;而秋水仙素濃度過高或處理時間太長,雖能達到誘導效果,但植株受傷害嚴重,死亡率高。秋水仙素誘導處理方法有浸泡法、涂抹法、注射法、加入培養(yǎng)基等方法,在實際操作中常需要根據植物材料和部位選擇適宜的處理方法。

        本研究采用浸泡、涂抹、加入培養(yǎng)基等3種方法來誘導多倍體。其中浸泡法以500 mg/L秋水仙素溶液處理24 h下誘導效果最佳,誘變率為51.67%,這與蔡文燕等的研究結果略有差異,蔡文燕等用0.1%、0.2%的秋水仙素溶液浸泡,結果表明,用0.1%秋水仙素浸泡48 h條件下,誘導效果最好,誘變率為48%[22]。這說明相同處理方法下,秋水仙素濃度不同,誘導效果也會不同,誘導效果還與培養(yǎng)時間、培養(yǎng)方法有關,金線蓮品種差異、取材部位與時間不同等都會影響試驗結果。在秋水仙素加入培養(yǎng)基試驗中,以700 mg/L秋水仙素處理15 d誘變率最高,達53%。王麗芳等用300 mg/L秋水仙素處理金線蓮莖段、頂芽3~19 d,結果表明處理13 d的加倍效果最好,加倍率為72%[23];而本研究中用300 mg/L秋水仙素處理15 d,誘變率僅為5%,這與王麗芳等研究結果不一致。涂抹法中,以700 mg/L秋水仙素涂抹在莖節(jié)的誘導效果較好,誘變率為35%,涂抹法的誘變率較浸泡法、加入培養(yǎng)基法低,但對材料傷害作用較輕,同時也節(jié)省藥品。

        秋水仙素處理后外植體前期誘導分化慢,后期生長較快,營養(yǎng)器官明顯增大,表現(xiàn)為植株高大、莖稈粗壯、莖節(jié)多且明顯,葉片變多、變短且肥厚,葉脈金色加深等特點;誘導植株氣孔明顯增大,氣孔長度和寬度均顯著大于對照,其形態(tài)和氣孔特征的誘導與通常的多倍體誘導結果一致[24-26]。

        測得組培苗階段二倍體苗、多倍體苗的多糖含量分別從10.13%、14.05%上升到15.91%、18.91%,多倍體瓶苗在大棚栽培6個月后多糖含量為9.69%,而二倍體苗在大棚栽培6個月后多糖含量僅為8.77%,可見在相同栽培環(huán)境下,多倍體植株栽培6個月多糖含量高于二倍體植株。由此可知,多倍體金線蓮的多糖含量高于二倍體植株,得出多倍體苗多糖含量高于二倍體植株,這與多倍體營養(yǎng)成分增加的特點一致,多倍體瓶苗多糖含量高于二倍體瓶苗,這與Olimpienko等研究發(fā)現(xiàn)四倍體鐵皮石斛的可溶性糖含量高于二倍體的研究結果[27]一致。

        測得二倍體苗、多倍體苗總黃酮含量分別從1.17%、1.24%上升到1.27%、1.38%。得出多倍體苗總黃酮含量高于二倍體植株,這進一步證明了多倍體營養(yǎng)成分增加的特點,測得大棚栽培6個月的二倍體栽培苗、多倍體栽培苗總黃酮含量分別為1.47%、1.92%,栽培6個月時多倍體植株多糖、總黃酮含量高于二倍體植株(多倍體苗總黃酮含量接近野生苗的1.97倍)。對赤壁金線蓮組培苗和栽培苗進行總黃酮含量的測定,發(fā)現(xiàn)其均含有黃酮類物質,這與曾建軍等研究認為金線蓮組培苗富含黃酮類物質的報道[8]一致。組培苗黃酮含量隨著培養(yǎng)時間延長而增多,移栽后總黃酮含量進一步增加,黃酮是植物體內的次生代謝產物,其含量變化受外界條件影響,如光照刺激等對其合成有幫助[28-29]。將金線蓮移栽到光照等條件較好的外界環(huán)境中,有利于黃酮積累。

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