李春燕 李春旭 楊 帆
(齊齊哈爾醫(yī)學院臨床病理診斷中心,黑龍江 齊齊哈爾 161006)
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基底細胞樣乳腺癌老年患者Ki-67表達與TopoⅡα、C-MYC基因的相關性
李春燕李春旭1楊帆
(齊齊哈爾醫(yī)學院臨床病理診斷中心,黑龍江齊齊哈爾161006)
目的探討基底細胞樣乳腺癌(BLBC)和非BLBC(NBLBC)癌組織中TopoⅡα、C-MYC基因擴增與Ki-67表達的關系。方法該院臨床病理診斷中心經(jīng)石蠟包埋的乳腺癌組織,其中100例BLBC癌組織、100例NBLBC癌組織,對照組選取100例同期周圍正常乳腺組織。結果TopoⅡα與C-MYC基因改變類型主要為擴增與缺失,TopoⅡα、C-MYC和Ki-67在對照組表達不顯著。100例BLBC病理組織中,TopoⅡα與C-MYC基因擴增分別為43例和51例,缺失分別為57例49例;Ki-67陽性76例,陰性24例;TopoⅡα、C-MYC基因擴增與Ki-67表達在Spearman等級相關分析中有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。100例NBLBC病理組織中,TopoⅡα與C-MYC基因擴增分別為34例和43例,缺失66例和57例;Ki-67陰性16例,陽性84例;Spearman等級相關分析,TopoⅡα、C-MYC基因擴增與Ki-67表達相關(P<0.05),TopoⅡα與C-MYC基因擴增呈正相關(P<0.05)。與NBLBC比較,BLBC的TopoⅡα與C-MYC基因擴增略多。結論TopoⅡα、C-MYC基因擴增與Ki-67相關。與NBLBC比較,BLBC癌組織的TopoⅡα、C-MYC基因擴增較多,TopoⅡα與C-MYC基因擴增可能參與乳腺癌的發(fā)生發(fā)展過程。
乳腺癌;TOP2A;C-MYC;Ki-67
我國老年女性乳腺癌發(fā)病率最高〔1〕。乳腺癌按cDNA組織芯片基因表型分為基底細胞樣乳腺癌(BLBC)和非基底細胞樣乳腺癌(NBLBC)兩類,BLBC約占25%,其特點為強侵襲性和惡性程度高,患者術后易出現(xiàn)復發(fā)和轉移,導致生存質量下降、預后差及病死率增高。本文采用熒光原位雜交方法(FISH)和免疫組化(ICC)檢測BLBC癌組織拓樸異構酶(Topo)Ⅱα和細胞原癌基因(C-MYC)的擴增情況及細胞增殖因子(Ki-67)的表達,同時探討三者之間的關系。
1.1一般資料選取2010年2月至2014年8月齊齊哈爾醫(yī)學院臨床病理診斷中心經(jīng)石蠟包埋的癌組織,其中100例BLBC癌組織、100例NBLBC癌組織,同時選取100例同期周圍正常乳腺組織作為對照組。所有患者均符合乳腺癌診斷標準,為首次診治的女性,研究開始前告知患者及其監(jiān)護人本研究的目的及意義,患者在知情同意書上簽字,并嚴格保守患者個人信息,得到倫理委員會批準后進行研究。兩組年齡、體重指數(shù)等基本資料無統(tǒng)計學差異(P>0.05)。見表1。
表1 BLBC和NBLBC兩組基本情況比較
1.2儀器和試劑采用杭州朗基科學儀器有限公司基因擴增儀MCC96+;熒光原位雜交和染色體核型分析采用美國IMSTAR全自動熒光原位雜交掃描分析系統(tǒng)Pathfinder FISH;小鼠抗人Ki-67單克隆抗體來自上海微蒙生物科技有限公司;TopoⅡα和C-MYC基因擴增檢測(FISH法)采用上海信裕生物技術有限公司的試劑盒及其相應配套試劑。
1.3檢測方法
1.3.1Envision檢測Ki-67在乳腺組織的表達將乳腺組織石蠟切片脫蠟,高壓鍋內(nèi)放入乙二胺四乙酸(EDTA)修復液,將切片置入其中修復3 min后用磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗,在3%H2O2溶液中浸泡10 min,再用PBS沖洗,然后加入一抗,4℃靜置10 h后用PBS沖洗,加入二抗,放入恒溫箱中37℃靜置40 min后用PBS沖洗,最后加入二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色液,進行觀察。
Ki-67在乳腺癌組織的陽性判斷:當出現(xiàn)黃色顆粒時Ki-67胞核表達為陽性,按著色的細胞染色強度分級:深褐色為3分;棕黃色為2分;淺黃色為1分。陽性細胞所占百分比分級:陽性細胞占總細胞比例>51%為3分;占總細胞比例26%~50%為2分;占總細胞比例6%~25%為1分;占總細胞比例<5%為0分。著色強度+陽性細胞百分比為Ki-67陽性表達級別:“”為5~6分;“” 為3~4分;“+”為2分;“-”為0~1分。
1.3.2TopoⅡα和C-MYC基因檢測采用FISH法進行檢測,將厚度為4 μm的切片脫蠟后置入甲醇溶液中,浸泡5 min后取出,干燥15 min,放入甲酸混合液(濃度85%)中暗處靜置20 min,4% HCl漂洗5 min,置于含4%HCl 70%~100%系列乙醇溶液梯度脫水,干燥20 min,置于硫氰酸鈉(NaScN)液80℃加熱10 min,4% HCl漂洗。4%HCl 70%~100%系列乙醇溶液脫水,晾干。蛋白酶工作液37℃加熱10 min,4% HCl漂洗10 min,4%HCl 70%~100%系列乙醇溶液脫水,晾干,加固定液3.7%甲醛PBS溶液靜置15 min后,在PBS溶液中漂洗15 min,用超純水漂洗10 min,用中性系列乙醇溶液(濃度為70%~100%)脫水。晾干后加入10 μl探針(TopoⅡα或C-MYC)和蓋玻片,80℃烘干5 min,然后放入37℃恒溫箱中雜交。10 h后取出浸泡在PBS液中,去掉蓋玻片,將恒溫箱調至42℃,用PanWash洗液孵育,5 min后用PBS液沖洗,中性70%~100%系列乙醇溶液脫水,晾干,甘油明膠封片,熒光顯微鏡下觀察?;驍U增陽性判定:通過查找基因雜交信號,分別標記17號染色體(綠色)、TopoⅡα基因(紅色)、8號染色體(藍色)、C-MYC基因(黃色)。在激光共聚焦顯微鏡下隨機查找30個雙色信號的癌細胞核。統(tǒng)計Ratio值,即30個細胞核中紅(黃)/綠(藍)比值,若Ratio(紅/綠)<1.8,表示TopoⅡα無基因擴增;Ratio(紅/綠)>2.2時,說明TopoⅡα基因擴增。當Ratio(黃/藍)<1.8,表示C-MYC無基因擴增;當Ratio(黃/藍)>2.2,說明樣本中C-MYC基因擴增。
1.4統(tǒng)計學方法應用SPSS18.0軟件行方差分析、等級相關分析。
2.1Ki-67分級與TopoⅡα基因擴增的相關性分析TopoⅡα基因改變以擴增與缺失為主,對照組很少有TopoⅡα和Ki-67表達。BLBC組及NBLBC組中擴增分別占43.0%、34.0%,缺失分別占57.0%、66.0%。等級相關分析(Spearman)顯示,BLBC、NBLBC病理組織TopoⅡα基因擴增隨Ki-67分級增高而增加,呈正相關(r=0.58,0.53;P<0.05);基因缺失均與Ki-67分級無關聯(lián)(P>0.05)。兩組比較,BLBC組的TopoⅡα基因擴增多于NBLBC組。見表2。
2.2Ki-67分級與C-MYC基因擴增的相關性分析見表3。擴增與缺失是C-MYC基因主要改變類型,對照組很少出現(xiàn)C-MYC擴增或缺失。BLBC組及NBLBC組中擴增分別占51.0%、43.0%、缺失分別占49.0%、57.0%。等級相關分析(Spearman)顯示,BLBC、NBLBC組C-MYC基因擴增與Ki-67呈正相關,隨分級增加而升高(r=0.56,0.52;P<0.05);基因缺失均與Ki-67分級無關聯(lián)(P>0.05);兩組相比,BLBC組的C-MYC基因擴增多于NBLBC組。
表2 Ki-67與TopoⅡα在BLBC、NBLBC基因擴增中的相關性〔n(%)〕
表3 Ki-67與C-MYC在BLBC、NBLBC基因擴增中的相關性〔n(%)〕
2.3BLBC的TopoⅡα基因與C-MYC基因擴增相關性BLBC病理組織基因擴增中,TopoⅡα、C-MYC共同擴增29例,共同缺失35例,TopoⅡ擴增、C-MYC缺失14例,TopoⅡα缺失、C-MYC擴增22例。TopoⅡα與C-MYC在BLBC基因擴增中有關(r=0.59,P<0.05)。
2.4NBLBC的TopoⅡα基因與C-MYC基因擴增相關性分析NBLBC病理組織基因擴增中,TopoⅡα、C-MYC共同擴增23例,共同缺失46例,TopoⅡα擴增、C-MYC缺失11例,TopoⅡα缺失、C-MYC擴增20例。TopoⅡα與C-MYC在NBLBC基因擴增有關(r=0.61,P<0.05)。
Ki-67僅在增殖細胞表達,因此,可作為反映腫瘤細胞增殖活性的標志物,與多種腫瘤的發(fā)生、發(fā)展、轉移與預后密切相關〔2~6〕。本研究表明,TopoⅡα與C-MYC基因水平變化對乳腺癌的靶向治療具有參考價值〔7〕。
DNA拓撲異構酶按功能可分TopoⅠ和TopoⅡ,其中TopoⅡ亞單位包括α與β,TopoⅡα與乳腺癌密切相關,位于17號染色體上,TopoⅡα作為拓撲異物酶的編碼基因,對核酸生理功能具有調控作用,合成酶和水解酶在細胞分裂中扮演重要角色,由ATP提供能量,表現(xiàn)為:①DNA拓撲結構改變可以通過偶聯(lián)反應途徑催化DNA鏈結合或斷開;②作用于核酸磷酸價鍵,影響DNA超螺旋和解旋狀態(tài)間的轉換,參與DNA復制與修復。本次研究中,TopoⅡα基因擴增BLBC高于NBLBC,表明癌基因激活機制包括TopoⅡα基因擴增,在臨床同一分期患者中,TopoⅡα基因擴增存在差異,從側面表明乳腺癌轉歸不同,表明乳腺癌發(fā)生過程中TopoⅡα基因會擴增〔8〕。但有學者認為,乳腺癌的病理改變與TopoⅡα基因擴增并沒有顯著的相關性,其敏感性高低不能作為蒽環(huán)類化療藥物標志物〔9〕。筆者認為,檢測方法是導致差異的主要因素,需要采用不同檢測方法并增加樣本量來進行驗證。
C-MYC基因屬于MYC基因組,人的C-MYC基因在染色體的8q24區(qū),其組成包括外顯子3個和內(nèi)含子2個,其中第1外顯子只能調節(jié)轉錄控制區(qū),無編碼序列,2、3外顯子核蛋白能夠與DNA結合,進行核內(nèi)信息傳遞。C-MYC基因在激活狀態(tài)下可與ras癌基因產(chǎn)生協(xié)同作用,阻礙p15、p21 等因子表達,促使細胞增殖速度加快和細胞分化速度降低,最終導致細胞凋亡、惡性腫瘤形成。研究發(fā)現(xiàn)C-MYC基因在很多腫瘤中均可表達過度,并且是永生癌基因,尤其在癌變早期和腫瘤啟動呈現(xiàn)異常激活狀態(tài),可作為早期乳腺癌病變觀察指標,其表達水平與腫瘤發(fā)生發(fā)展、浸潤侵襲等過程密切相關。乳腺癌合并C-MYC基因擴增后,可能導致乳腺癌化療藥物耐受。有研究顯示,抑制C-MYC水平,阿霉素類藥物治療乳腺癌患者敏感性顯著提高〔2,10〕,C-MYC基因在BLBC中擴增高于NBLBC。
綜上所述,TopoⅡα基因與C-MYC基因擴增在BLBC與NBLBC中呈正相關,在靶向治療中,若其中一種基因水平下降,另一種基因也隨之下降。但尚未有文獻報道兩者之間的關聯(lián),仍需深入探討。
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〔2015-12-31修回〕
(編輯袁左鳴)
齊齊哈爾市科技局指令性科研項目
李春旭(1965-),男,副主任醫(yī)師,主要從事腎臟病、乳腺病及婦產(chǎn)科疾病研究。
李春艷(1976-),女,副主任醫(yī)師,主要從事乳腺病理研究。
R737.9
A
1005-9202(2016)16-3988-03;doi:10.3969/j.issn.1005-9202.2016.16.054
1齊齊哈爾醫(yī)學院