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        塑化劑鄰苯二甲酸二丁酯與小牛胸腺DNA的溝槽結合

        2016-10-15 12:16:20張國文
        分析科學學報 2016年5期
        關鍵詞:溝槽實驗

        李 松,張國文

        (南昌大學食品科學與技術國家重點實驗室,江西南昌 330047)

        塑化劑鄰苯二甲酸二丁酯(Dibutyl Phthalate,DBP)是廣泛應用于工業(yè)生產(chǎn),并存在于人們生活環(huán)境中的一種工業(yè)添加劑,為潛在有毒有害物質(zhì)。研究表明,DBP作為一種雌激素類似物,主要對人體具有生殖和發(fā)育毒性[1],另外還有一定的基因毒性和致癌性[2]。近年,塑化劑威脅人類健康的事件屢見不鮮,人們也越來越關注其安全性問題。DNA是重要的遺傳物質(zhì),在生命過程中發(fā)揮著重要作用,并掌控著遺傳信息的復制、轉錄和表達[3],此外,DNA還是許多小分子在體內(nèi)的作用靶點。小分子與DNA相互作用的研究能夠在分子水平提供其結合機制,以及小分子對DNA構象的影響等信息,有助于深入了解有害小分子對人體的毒理效應。

        DBP在動物體內(nèi)的毒性實驗已有一些研究[1,2],但在體外與DNA相互作用還未見報道。本文以小牛胸腺DNA(ctDNA)為作用靶點,采用體外實驗,在模擬人體生理酸度(pH=7.4)條件下,應用多種光譜學方法、化學計量學,以及分子模擬技術研究DBP與ctDNA相互作用,以期為認識DBP與ctDNA的作用機制及DBP的毒性行為提供理論基礎。

        1 實驗部分

        1.1 實驗儀器及試劑

        F-7000型熒光光度計(日本,日立公司);UV-2450型紫外-可見分光光度計(日本,島津公司);MOS 450型圓二色光譜儀(法國,Bio-Logie公司);Nicolet-5700型紅外光譜儀,配置ATR附件(美國,Nicolet公司);烏氏粘度計(上海前鋒橡塑玻璃制品廠);pHS -3C型酸度計(上海雷磁儀器廠)。

        DBP標準品(純度≥99.5%,阿拉丁試劑公司)用95%乙醇配制成2.0×10-3mol·L-1的儲備溶液; ctDNA(Sigma公司)用0.1 mol·L-1NaCl溶液溶解,其濃度利用ε260=6 600 L·mol-1·cm-1[4]確定為2.45×10-3mol·L-1,測得A260/A280>1.80,表明ctDNA已充分脫去蛋白質(zhì);超螺旋pUC18質(zhì)粒DNA(索萊寶試劑公司);0.05 mol·L-1pH=7.4的Tris-HC1緩沖溶液。上述溶液均保存于4 ℃冰箱中備用,其他試劑均為分析純。實驗用水為超純水。

        1.2 實驗方法

        1.2.1構建紫外吸收光譜數(shù)據(jù)矩陣實驗1:固定ctDNA溶液濃度為6.24×10-5mol·L-1,然后以每次2.0×10-6mol·L-1的濃度間隔加入31次DBP;實驗2:保持DBP溶液濃度為8.0×10-5mol·L-1不變,依次滴加濃度間隔為2.08×10-6mol·L-1的ctDNA 31次,至最終濃度為6.45×10-5mol·L-1。每次加樣后均混勻靜置4 min,待充分反應后進行紫外光譜測定,記錄波長215~350 nm數(shù)據(jù),共136個數(shù)據(jù)點,得到了DctDNA(32×136) 和DDBP(32×136)兩個數(shù)據(jù)矩陣,組成[DctDNA,DDBP]矩陣。

        1.2.2多元曲線分辨-交替最小二乘法(MCR-ALS) MCR-ALS是一種能夠分析數(shù)據(jù)矩陣、特征重疊光譜,并從復雜反應系統(tǒng)中記錄每一個參與組分的響應信號和濃度變化的有效方法[5]。該方法可以幫助我們從復雜反應系統(tǒng)中得到更多本質(zhì)直觀的信息,如濃度變化、純光譜等。解析步驟如下:(1)構建擴展數(shù)據(jù)矩陣,通過奇異值分解(SVD)方法分析獲取體系中主要組分數(shù)目;(2)用漸進因子分析法(EFA)初步估計初始濃度,得到ALS迭代的初始濃度矩陣;(3)運用ALS進行迭代優(yōu)化。

        對于二維光譜數(shù)據(jù)矩陣,根據(jù)以下代數(shù)模型進行雙線性分解[6]:

        D=C×ST+E

        (1)

        其中,D分別為光譜矩陣;C為濃度矩陣;ST為純光譜矩陣;E為誤差矩陣。

        將1.2.1得到的光譜數(shù)據(jù)矩陣分解為:

        (2)

        1.2.3熒光光譜的測定分別在298、304和310 K三個溫度下向濃度為6.67×10-5mol·L-1的DBP溶液中連續(xù)滴加濃度間隔為6.24×10-6mol·L-1的ctDNA,在激發(fā)波長為254 nm,激發(fā)和發(fā)射狹縫均為2.5 nm下,掃描溶液在280~400 nm的熒光發(fā)射光譜。為消除紫外重吸收和內(nèi)濾效應,所有熒光數(shù)據(jù)均采用文獻方法[7]對熒光數(shù)據(jù)進行校正。

        1.2.4瓊脂糖凝膠電泳實驗將超螺旋pUC18質(zhì)粒(DNA 3 μL,400 μg/mL) 用不同濃度的DBP處理并用Tris-HCl緩沖液稀釋至10 μL。在37 ℃水浴中孵化24 h后加入上樣緩沖溶液(包含0.03%溴酚藍、0.03%二甲苯藍和30%甘油)。準備1.0% 瓊脂糖凝膠,用GoldView 溶液染色,放入含有1×Tris-乙酸-EDTA緩沖液中,將樣品加入加樣孔中,在80 V電壓條件下電泳30 min,之后取出凝膠進行紫外成像。

        1.2.5分子模擬從 Protein Data Bank 庫獲取B型DNA的結構(PDB ID:453D),對接運行前對DNA進行去水、加氫和Gasteiger 電荷修飾。配體DBP模型通過SYBYL×1.1軟件構建,并在MMFF94力場使用MMFF94電荷將其能量最小化優(yōu)化[8]。采用Autodock 4.2軟件進行分子對接(總共100次對接實驗),并用Lamarckian Genetic Algorithm(LGA)算法完成對接計算,以2.0 ?的均方根偏差容量對100次對接結果進行能量分析,獲得一系列的能量簇,取能量最低且次數(shù)最多的構象進行分析。

        2 結果與討論

        2.1 DBP與ctDNA相互作用的紫外吸收光譜

        實驗1為固定ctDNA濃度連續(xù)加入DBP,發(fā)現(xiàn)ctDNA位于259 nm處的特征吸收峰強度隨著DBP的加入緩慢增大并有一定的藍移,而位于230 nm附近的吸收強度有較大的增強(圖1A)。由實驗2結果可見,DBP在230 nm和285 nm處有兩個特征吸收峰,隨著ctDNA濃度的增加,DBP在230 nm處吸光度先減小后略微增大(圖1B),并且在259 nm處出現(xiàn)一個新峰。DBP與ctDNA光譜高度重疊,很難獲得兩者相互作用有價值的信息。

        2.2 MCR-ALS解析紫外光譜數(shù)據(jù)矩陣

        利用MCR-ALS法對光譜數(shù)據(jù)擴展矩陣進行分析,通過奇異值分解(SVD)確定反應體系中的組分數(shù)。所提取到的前4個特征值分別為112.53、61.41、59.24和7.58,可以預測到體系中存在3種主要組分,即DBP、ctDNA和DBP-ctDNA復合物。MCR-ALS算法解析[DctDNA,DDBP]數(shù)據(jù)矩陣得到了3種組分濃度變化趨勢圖,隨著DBP加入量的增加,DBP-ctDNA復合物的濃度逐漸增大,伴隨著ctDNA濃度逐漸減少(圖2A)。相反,當向DBP溶液中加入ctDNA,DBP濃度逐漸降低而DBP-ctDNA復合物的濃度逐漸增加(圖2B),并且解析出的各組分純光譜曲線(實線)與實際測得光譜曲線(虛線)較好地吻合(圖2C),表明預測反應體系中存在3種主要組分且其濃度變化趨勢是可靠的,組分間濃度變化直觀地顯示DBP與ctDNA發(fā)生相互作用形成了復合物。

        2.3 ctDNA對DBP熒光光譜影響

        當熒光激發(fā)波長為254 nm 時,DBP在316 nm處有一個較強的熒光發(fā)射峰(圖3A)。隨著ctDNA的加入,DBP在316 nm的熒光強度顯著降低,表明ctDNA猝滅DBP的熒光,兩者發(fā)生了相互作用。

        為了明確其猝滅機制,采用Stern-Volmer方程對熒光數(shù)據(jù)進行分析[9]:

        F0/F=1+KSV[Q]=1+Kqτ0[Q]

        (3)

        式中,F(xiàn)0和F分別為加入ctDNA前后DBP溶液的熒光強度;KSV為猝滅常數(shù);Kq為雙分子猝滅過程的速率常數(shù);[Q]為猝滅劑的濃度;τ0為沒有猝滅劑存在下的熒光分子平均壽命,約為10-8s[10]。

        以F0/F對[Q]作圖(圖3B),得到3個不同溫度下的猝滅常數(shù)值,見表1。隨著溫度的升高KSV的值逐漸減小,且猝滅速率常數(shù)Kq達到1012數(shù)量級,遠大于最大擴散碰撞猝滅速率常數(shù)(2.0×1010L·mol-1·s-1),表明ctDNA對DBP的熒光猝滅為單一靜態(tài)猝滅過程。

        此外,由修正的Stern-Volmer方程分析熒光數(shù)據(jù)[11]:

        (4)

        以F0/(F0-F)對1/[Q]作圖,獲得結合常數(shù)值Ka(表1),Ka隨著溫度升高而降低,表明溫度升高復合物穩(wěn)定性下降,這與靜態(tài)猝滅機制相符。

        2.4 熱力學參數(shù)及作用力類型的確定

        為進一步了解DBP與ctDNA反應熱力學過程,其熱力學參數(shù)可由Van’t Hoff 方程[12]求得,焓變ΔHΘ和熵變ΔSΘ分別為-14.03 kJ·mol-1和28.62 J·mol-1·K-1,表明該反應為放熱,疏水作用和氫鍵是結合作用的主要驅(qū)動力,且是一個自發(fā)過程[3,13]。

        表1 三個溫度下的猝滅常數(shù)、結合常數(shù)及熱力學參數(shù)

        Rais the correlation coefficient for theKSVvalues.Rbis the correlation coefficient for theKavalues.

        2.5 ctDNA解鏈溫度及粘度測定

        DNA的熔點(Tm),即為DNA加熱發(fā)生解鏈失去一半螺旋結構時的溫度,也稱解鏈溫度。當小分子嵌插于DNA堿基對當中,DNA結構變得更加穩(wěn)定,Tm則會明顯升高,而通過溝槽與靜電作用方式與DNA結合,Tm則不會有明顯變化[14]。圖4A顯示ctDNA與DBP-ctDNA復合物的Tm值沒有明顯的差異,表明DBP通過溝槽模式與ctDNA結合。

        經(jīng)典嵌插劑嵌入DNA堿基對會引起堿基對間距增大,導致雙螺旋松弛,長度變大,使得粘度明顯增大,而溝槽結合劑對DNA粘度無明顯影響[15]。圖4B顯示了DBP與小溝結合劑Hoechst33258一樣對于ctDNA粘度均無明顯影響,這是DBP與ctDNA通過溝槽模式結合的有力證據(jù)。

        2.6 單、雙鏈ctDNA對DBP熒光猝滅

        為探究DBP與ctDNA結合模式,采用雙鏈ctDNA(dsctDNA)與單鏈ctDNA(ssctDNA)分別對DBP進行熒光猝滅實驗。若小分子與ctDNA通過嵌插模式結合,dsctDNA更利于DBP的結合,其對DBP熒光猝滅的程度要強于要ssctDNA,而溝槽結合則相反[16]。圖5顯示,ssctDNA對DBP熒光的猝滅效應明顯強于dsctDNA,進一步表明DBP與ctDNA的溝槽結合方式。

        2.7 結合位點

        為測定DBP在ctDNA上的結合位點,實驗對加入DBP前后的ctDNA分別進行了紅外光譜掃描。B型DNA在紅外光譜中1 717 cm-1、1 660 cm-1、1 610 cm-1和1 490 cm-1處的特征峰,分別對應鳥于嘌呤(G)、胸腺嘧啶(T)、腺嘌呤(A)和胞嘧啶(C)的伸縮振動。而1 222 cm-1和1 088 cm-1的特征峰則為磷酸骨架的非對稱伸縮振動和對稱伸縮振動引起的[17]。隨著DBP比例的增大,T堿基和A堿基的峰位有明顯的移動,分別從1 667 cm-1移動到了1 659 cm-1,1 610 cm-1移動到1 600 cm-1,而其他各個特征峰均沒有出現(xiàn)移動(圖6),表明DBP可能主要結合于ctDNA的A-T堿基富集區(qū)[18]。

        2.8 ctDNA構象變化

        B型構象的ctDNA 有兩個分別由右手螺旋結構和堿基堆積引起的特征峰,即245 nm處的負峰和280 nm處的正峰。隨著DBP濃度的增大,ctDNA負峰增強、正峰減弱(圖7),表明B型ctDNA結構變得更為松散[19]。

        2.9 DNA損傷檢測

        采用瓊脂糖凝膠電泳實驗通過檢測DBP對pUC18質(zhì)粒DNA可能的損傷。當環(huán)狀超螺旋DNA進行電泳時,可能出現(xiàn)3種形式,即Form Ⅰ(環(huán)狀)、Form Ⅱ(開環(huán)狀)和Form Ⅲ(線狀),它們在凝膠中的遷移速率為Form Ⅰ>Form Ⅲ>Form Ⅱ[20]。電泳圖中并沒有出現(xiàn)除Form I外的其他條帶(圖8),表明該濃度范圍內(nèi)DBP沒有造成DNA明顯損傷。

        2.10 DBP與ctDNA的分子對接

        通過Autodock軟件對整個DNA模型范圍完成100次模擬對接后,形成了由15個構象能量簇構成的能量圖(圖9(A))。從能量角度考慮,選取能量圖中能量最低,次數(shù)最多的DBP與ctDNA結合狀態(tài)進行分析。圖9(B)顯示DBP與DNA的小溝富集區(qū)A-T堿基結合,且與DA5和DA6堿基形成了兩個氫鍵,分子模擬結果與紅外光譜實驗相一致,進一步確證了DBP與ctDNA溝槽結合模式。

        3 結論

        在模擬生理酸度(pH=7.4)條件下,聯(lián)合應用MCR-ALS法結合多種光譜學以及分子模擬技術,研究了DBP與ctDNA的相互作用。結果表明,DBP能與ctDNA發(fā)生相互作用形成DBP-ctDNA復合物。ctDNA通過單一的靜態(tài)方式猝滅DBP的內(nèi)源熒光,疏水作用和氫鍵是兩者作用的主要驅(qū)動力。DBP與ctDNA通過溝槽方式結合,且DBP主要作用于A-T堿基富集區(qū),這種作用誘導B型ctDNA結構變得更為松散,但未對質(zhì)粒DNA產(chǎn)生明顯損傷。研究結果為理解DBP與DNA的相互作用機制和DBP毒理效應提供了有益的信息。

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