亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        抗結核藥物致肝毒性易感性研究進展

        2016-09-16 05:58:51李穎佳申阿東
        中國循證兒科雜志 2016年4期

        李穎佳 綦 輝 申 晨 申阿東

        ?

        ·綜述·

        抗結核藥物致肝毒性易感性研究進展

        李穎佳綦輝申晨申阿東

        近年來,隨著結核分枝桿菌耐藥菌株的出現(xiàn)和獲得性免疫缺陷綜合征(AIDS)患者的增加,結核病(TB)成為全球公共衛(wèi)生日益嚴峻的挑戰(zhàn)和負擔??菇Y核化療方案仍以異煙肼(INH)、利福平(RMP)、吡嗪酰胺(PZA)等聯(lián)合用藥為主,然而抗結核藥物在治療過程中引起藥物不良反應(ADR),影響了抗結核治療效果和患者健康。常見的抗結核ADR有抗結核藥物致肝毒性(ATDH)、皮疹、胃腸功能障礙和神經系統(tǒng)病變等,其中以ATDH最嚴重[1],常導致抗結核治療中斷,甚至治療失敗[2]。提高對ATDH的認識,預測并預防其發(fā)生和進展有重要臨床意義。

        1 ATDH概述

        已有的資料顯示,ATDH發(fā)生率5%~28% ,不同地區(qū)不同人群中ATDH發(fā)生率存在較大差異[3],可能與研究人群不同和對ATDH的定義不同有關[2, 4]。通常對ATDH的定義為:抗結核藥物治療初期突然出現(xiàn)的肝損傷,表現(xiàn)為ALT高于正常值上限(ULN)的2~5倍,伴或不伴有肝臟毒性癥狀[2, 4]。

        ATDH潛伏期為抗結核藥物治療后1周至12個月,中位數(shù)為8周[5]。臨床表現(xiàn)可不典型,常表現(xiàn)為厭食、惡心、嘔吐、食欲不振、上腹部不適、皮膚黃染和茶色尿等非特異性臨床癥狀或體征[5]。肝臟病理呈肝小葉區(qū)域性、亞大塊性或大塊性壞死[5]。臨床上ATDH的血生化和組織學特征很難與病毒性肝炎區(qū)分[6]。嚴重肝損傷發(fā)生前停止抗結核用藥,肝臟功能即可恢復正常[5]。

        2 ATDH發(fā)病機制

        ATDH發(fā)病機制較復雜,往往是多種機制先后或共同作用的結果。目前研究認為,引起ATDH的物質主要是抗結核藥物的活性代謝產物,如肼、乙酰肼[2]。Ⅰ相代謝酶主要參與藥物的生物活化(如氧化、還原或水解),如細胞色素P450(CYP450)酶[6]。藥物或其Ⅰ相代謝產物在Ⅱ相代謝酶作用下,與葡萄糖醛酸、硫酸、甘氨酸和谷胱甘肽(GSH)等結合后水溶性增加,利于從體內排出[6];參與Ⅱ相代謝反應的酶主要是谷胱甘肽S轉移酶(GST)和尿苷二磷酸葡萄糖醛酸轉移酶(UGT)等。Ⅲ相代謝酶如溶質載體(SLC)、三磷酸腺苷結合盒(ABC)[7]等,主要參與藥物或其代謝產物的吸收和排泄,也被稱為轉運體。各相代謝酶活性發(fā)生改變時,均有可能造成藥物或其代謝產物在體內積累[3]。

        一線抗結核藥物中,INH、RMP及PZA常引起ATDH[5]。INH主要通過其代謝產物肼、乙酰肼等引起ATDH[4, 6],其代謝途徑包括主路途徑和旁路途徑。如圖1所示,在主路途徑中,INH被N乙酰基轉移酶2(NAT2)乙?;癁橐阴.悷熾拢笳弑货0访杆獬梢阴熾潞?,再繼續(xù)乙?;癁闊o毒的二乙酰肼[3, 6];INH也可通過旁路途徑直接水解為肼,后者再被NAT2乙?;癁橐阴熾耓3, 6]。肼具有較強肝毒性,可以引起細胞不可逆性損傷[8]。NAT2乙?;A段生成的乙酰煙肼經細胞色素P450 2E1(CYP2E1)催化后,轉化為具有較強肝毒性的中間代謝產物,如乙酰偶氮、烯酮和乙酰氧離子等[3]。這些毒性中間代謝產物必須經GST催化,與GSH共價結合并排出體外,

        圖1異煙肼的代謝過程[8]

        注NAT2: N乙?;D移酶2

        從而起到解毒作用[3]。目前,RMP或PZA發(fā)生ATDH的具體機制仍不清楚[2]。與INH相似,RMP引起的肝損傷為肝細胞型[5]。RMP單用時可干擾膽紅素的吸收和排泄,引起不伴血清轉氨酶升高的(直接或間接)高膽紅素血癥[2, 5];與INH合用時,RMP可以誘導酰胺酶和CYP2E1酶活性,使INH釋放的肝毒性物質(如肼)增加,從而增加INH所致肝毒性風險[2, 5]。目前的研究認為,PZA導致的肝毒性具有劑量依賴性[5]。與RMP相似,PZA與INH合用時也能增加患者ATDH發(fā)生風險[2]。

        活性代謝產物可通過耗竭抗氧化物質或與細胞酶類、脂質或核酸選擇性結合,從而引起細胞應激反應[3],線粒體是ATDH發(fā)生的重要靶點[3]:細胞應激抑制線粒體呼吸鏈,導致ATP衰竭和活性氧(ROS)積累。過量ROS積累可以導致脂質過氧化和細胞死亡[3]。紅系衍生的核因子2相關因子2(Nrf2)是抗氧化反應的核心轉錄因子[2],Nrf2-抗氧化反應元件(Nrf2-ARE)信號通路中,抗氧化激活途徑和抑制途徑的失調在ATDH發(fā)生中也發(fā)揮了重要作用[9],其具體機制見本文3.3部分。錳超氧化物歧化酶(MnSOD)對線粒體基質中超氧陰離子的解毒具有關鍵作用[3]。MnSOD功能發(fā)生改變時,對超氧化物的解毒缺乏,導致線粒體抑制,最終線粒體通透性發(fā)生改變,隨之發(fā)生ATP依賴性細胞凋亡或壞死[3]。

        肝細胞功能障礙和損傷時可激活免疫反應,包括先天性免疫反應和獲得性免疫反應[2]。肝損傷時,機體分泌的腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、γ干擾素(IFN-γ)、白細胞介素4(IL-4)、IL-6等促炎-抗炎因子調節(jié)炎癥反應,決定肝細胞發(fā)生恢復反應還是損傷反應[2, 3]。至于獲得性免疫反應,目前研究者提出2種理論,即半抗原理論和藥物與免疫受體的藥理作用(p-I)理論[2]。半抗原理論認為,藥物或活性代謝產物與肝內蛋白(如CYP酶類)形成的共價復合物(即半抗原),可以誘導抗體或毒性T細胞反應,造成細胞損傷[2, 10]。p-I理論認為某些藥物能夠模擬配體的作用,可以不與肝內蛋白結合,直接與T細胞受體結合,并以主要組織相容性復合物(MHC)依賴型經典模式使T細胞活化[2, 10]。

        3 基因多態(tài)性與ATDH易感性

        從ATDH發(fā)病機制可知,藥物代謝酶(DME,Ⅰ相、Ⅱ相)、藥物轉運體(Ⅲ相代謝酶)、抗氧化反應和免疫反應在ATDH發(fā)生發(fā)展過程中均起著重要作用,參與這些代謝過程的相關基因的多態(tài)性與ATDH易感性密切相關。

        3.1DME與ATDH易感性相關的Ⅰ相代謝酶主要有CYP2E1、CYP3A4、CYP2B6和羧酸酯酶1(CES1),Ⅱ相代謝酶主要有NAT2、GST、UGT和MnSOD。

        3.1.1Ⅰ相代謝酶

        3.1.1.1CYP2E1其活性受CYP2E1基因上多個位點多態(tài)性的調控[8]。位于CYP2E1轉錄起始點上游,分別被限制性內切酶RsaⅠ和PstⅠ識別的2個多態(tài)性位點,表現(xiàn)出完全連鎖不平衡[2]。野生型等位基因RsaⅠ(+)/PstⅠ(-)被定義為′c1′,命名為CYP2E1*1A;其中任意一個位點發(fā)生突變,即RsaⅠ(-)或PstⅠ(+)被定義為′c2′,命名為CYP2E1*5[8]。CYP2E1基因第6內含子上,可被限制性內切酶DraⅠ識別的位點被命名為CYP2E1*6,其基因型表現(xiàn)為:野生型TT、雜合突變型TA和純合突變型AA。位于CYP2E1基因5′端調控序列上,96個堿基對插入/缺失的多態(tài)性被稱為CYP2E1*1D/*1C,對酶活性也具有調節(jié)作用[8]。

        在INH代謝過程中,CYP2E1可將乙酰煙肼轉化為乙酰偶氮、烯酮和乙酰陽離子等肝毒性物質[3],CYP2E1酶活性升高時,肝毒性物質生成增多,將增加ATDH風險[8]。研究者對CYP2E1基因c1/c1基因型與ATDH易感性的相關性進行了Meta分析(納入13項病例對照研究),結果提示:在東亞人群中,CYP2E1基因c1/c1基因型與ATDH易感性具有相關性,但在印度人群、高加索人群及其他人群中,兩者的相關性無統(tǒng)計學意義[11]。盡管Meta分析的結果提示,在中國人群中,CYP2E1基因c1/c1基因型與ATDH患病風險具有相關性[12];但3項獨立研究的結果均提示,CYP2E1基因c1/c1基因型與中國人群ATDH患病風險并無相關性[13~15]。雖然CYP2E1基因DraⅠ位點多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性研究較少,但卻存在爭議。在印度人群中,2項獨立研究分別發(fā)現(xiàn)CYP2E1基因DraⅠ位點CC基因型或CD基因型與ATDH患病風險具有相關性[16, 17],但在中國人群中,Tang等[13]并未發(fā)現(xiàn)CYP2E1基因DraⅠ位點多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性。

        3.1.1.2CYP3A4是肝內最豐富的CYP亞家族,參與臨床上50%以上藥物的代謝[18]。CYP3A4與卡馬西平、INH等多種藥物引起的細胞毒性有關[18],而CYP3A4抑制劑可顯著減弱INH的細胞毒性作用[19]。而且近年來的研究提示,CYP3A4對INH的代謝、生物活化和肝毒性均有影響[19]。CYP3A4對INH致肝毒性的影響可能與孕烷X受體(PXR)有關,RMP通過激活PXR誘導CYP3A4的表達,激活的CYP3A4可促進INH產生肝毒性代謝產物[3]。動物實驗研究并未發(fā)現(xiàn)CYP3A4對小鼠體內INH藥代動力學的影響[19]。在巴西人群中,研究者也未發(fā)現(xiàn)CYP3A4基因-392位點A>G變異與ATDH風險的顯著相關性,可能與該研究人群大部分為CYP3A4基因-392位點AA基因型攜帶者有關[20]。

        3.1.1.3CYP2B6是CYP家族中重要的藥物代謝酶,參與多種內源性和外源性物質的合成和代謝[21]。RMP可通過誘導CYP2B6表達,使INH肝毒性代謝產物增多,增加ATDH風險[22]。CYP2B6基因多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性研究,多集中在TB- HIV共感染人群。高活性抗逆轉錄病毒療法(HAART)藥物依法韋侖,主要通過CYP2B6代謝[23]。研究人員發(fā)現(xiàn),在TB-HIV共感染人群中,CYP2B6基因516位點TT基因型與ATDH患病風險的相關性存在爭議,在坦桑尼亞人群[23]、埃塞俄比亞人群[24]中,CYP2B6基因516位點TT基因型是ATDH發(fā)生的危險因素;但在巴西人群中,CYP2B6基因516位點TT基因型是ATDH進展的保護性因素[22]。

        3.1.1.4CES1是絲氨酸酯酶超家族成員之一,此家族成員主要催化含酯、硫酯和酰胺鍵的內源性和外源性物質的水解或酯交換反應[2]。人類基因組中最具特征性的CES為CES1、CES2和CES3,均在肝內表達[25]。CES1和CES2在肝內高表達,與INH代謝密切相關[25];CES3在腦血管內皮細胞中高表達,與血腦屏障功能有關[25];CES4是位于CES1上游28 kb處的轉錄假基因,與CES1高度相似[25]。如圖1所示,酰胺酶在INH代謝過程中,通過酰胺鍵裂解作用水解INH[26],動物實驗研究也證實酰胺酶活性對肝毒性有影響[27]。因此,肝內具有酰胺酶裂解作用的CES,可能主要通過干擾INH代謝影響ATDH風險[25]。

        在英國人群中,Yamada等[25]納入170例潛伏結核分枝桿菌感染患者,對CES1、CES2、CES4所有外顯子和啟動子序列進行檢測,結果提示,所有檢測的單核苷酸多態(tài)性(SNPs)與ATDH患病風險均無顯著相關性,只有CES1基因-2位點C/G變異改變了CES1基因的翻譯起始序列。在中國人群中,Wu等[28]發(fā)現(xiàn)CES1基因rs8192950-AC基因型和rs1968785-GG基因型是ATDH的保護性因素。

        3.1.2Ⅱ相代謝酶

        3.1.2.1NAT2如圖1所示,NAT2是INH代謝過程中的主要代謝酶,其基因多態(tài)性影響NAT2酶活性[5]。一般來說,2個慢乙?;任换?NAT2*5、NAT2*6、NAT2*7、NAT2*14)組成的基因型定義為慢乙?;硇?,1個慢和1個快乙酰化等位基因(NAT2*4、NAT2*11、NAT2*12、NAT2*13)組成的基因型定義為中間乙酰化表型,2個快乙?;任换蚪M成的基因型定義為快乙酰化表型[5, 29]。在NAT2酶作用下,在快乙?;硇驼唧w內,INH通過主路途徑迅速轉化為二乙酰肼并排出體外;而在慢乙酰化表型者體內,由于INH主路途徑代謝減慢而旁路代謝途徑相對增強,INH直接水解成肼的量增加[6]。同時,慢乙酰化表型者不能將乙酰煙肼迅速轉化為二乙酰肼,而增加了CYP2E1途徑的代謝,產生的肝毒性物質增多[6]。NAT2代謝表型多態(tài)性分布具有地域特點,亞洲國家以快代謝表型為主,而歐美及非洲國家則主要以中間/慢代謝表型為主[30]。本課題組的研究結果提示,在中國漢族兒童中,NAT2代謝表型以快代謝表型的頻率最高(61.3%),其次是中間/慢代謝表型(34.1%)[31]。

        盡管既往研究認為快乙酰化者更易發(fā)生ATDH,但近年來多項研究指出,與快乙?;硇驼呦啾?,慢乙酰化表型者更易發(fā)生ATDH,而且癥狀更嚴重[3, 5]。一項納入24項病例對照研究的Meta分析結果提示,在不同人群(東亞人群、印度人群、中東人群及其他人群)中,NAT2慢乙?;硇驼吒装l(fā)生ATDH,但在高加索人群中,研究者并未發(fā)現(xiàn)NAT2基因多態(tài)性與ATDH易感性的相關性[11]。中國臺灣[15]及北京[14]的研究結果均提示,在中國人群中,NAT2慢乙酰化表型者更易發(fā)生ATDH;但在中國社區(qū)人群中,Lv等[32]并未發(fā)現(xiàn)NAT2基因型與ATDH易感性的相關性。

        3.1.2.2GST是通過催化多種物質的毒性中間代謝產物與GSH結合,并排出體外而起到解毒作用,與多種致癌物、毒性化學物和藥物的解毒有關[2, 8]。GST至少由5個獨立位點編碼,即α、μ、π、θ、γ,在肝毒性相關研究中,GSTM1(μ型)和GSTT1(θ型)獲得較多關注[8]。在人群中,攜帶1個或2個GSTM1和GSTT1功能性等位基因的個體具有酶活性,而純合子缺失基因型個體酶活性喪失[8]。報道顯示,在不同人群健康個體中,GSTM1和GSTT1純合子缺失基因型頻率差異較大,在太平洋島民、馬來西亞人群、中國人群、韓國人群、日本人群中,GSTM1和GSTT1純合子缺失基因型頻率相對較高[8]。本課題組的研究結果提示,在中國漢族兒童中,GSTM1和GSTT1純合子缺失基因型的頻率最高,分別為59.3%、58.4%,單拷貝缺失基因型的頻率次之,分別為34.0%、35.1%,未缺失基因型的頻率最低,分別為6.7%、6.5%[33]。

        GSTM1和GSTT1純合子缺失基因型攜帶者的GST酶活性喪失,對INH毒性中間代謝產物的解毒能力降低,可能易發(fā)生ATDH[3]。一項納入11項病例對照研究的Meta分析結果提示,在東亞人群中,GSTM1缺失基因型與ATDH風險具有相關性,但在印度人群和高加索人群中,兩者的相關性并不顯著[11]。有Meta分析[34]提示,在中國人群中,GSTM1缺失基因型與ATDH患病風險具有顯著相關性,但Tang等[13]及本課題組[35]在中國人群中并未發(fā)現(xiàn)兩者的相關性。雖然體內、體外研究均提示,GSTT1純合子缺失基因型與GST酶活性喪失有關[34],上述2項獨立Meta分析[11, 34]結果均提示,在所有人群(高加索人群、印度人群、東亞人群)中,GSTT1缺失基因型與ATDH風險并無相關性。

        3.1.2.3UGTUGT家族是位于內質網(wǎng)的膜結合酶,催化葡萄糖醛酸基與親核性物質結合,與多種內外源性物質的解毒和消除有關[5]。UGT家族可分為2個亞家族,分別由UGT1A和UGT2編碼[2]。UGT1A由9個活性基因組成,如UGT1A1、UGT1A3、UGT1A6;UGT2進一步被分為UGT2A和UGT2B[2]。

        在不同人群中,UGT基因多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性研究較少。在韓國人群中,Kim等[36]并未發(fā)現(xiàn)UGT1A1基因多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性,但在中國臺灣人群中,Change等[37]發(fā)現(xiàn)同時攜帶UGT1A1*27和UGT1A1*28等位基因的個體更易發(fā)生ATDH 。UGT1A3基因多態(tài)性與韓國人群ATDH患病風險并無相關性[36]。在中國人群中,Hao等[38]發(fā)現(xiàn)UGT1A6基因-19位點T/G變異、-308位點C/A變異、-541位點C/A變異與ATDH患病風險有關。在埃塞俄比亞TB- HIV共感染患者中并未發(fā)現(xiàn)UGT2B7基因-372位點G>A變異與ATDH患病風險的相關性[24];但在中國人群中發(fā)現(xiàn)UGT2B7基因-268位點AG基因型和802位點TT基因型攜帶者,發(fā)生ATDH風險明顯高于野生型(UGT2B7基因-268位點AA基因型和802位點CC基因型)攜帶者[39]。

        3.1.2.4MnSOD攝入體內的藥物在代謝過程中產生過量ROS,可引起脂質過氧化和細胞死亡[3]。MnSOD可將線粒體內產生的ROS催化還原為過氧化氫,是抗氧化應激的關鍵酶[2]。MnSOD基因47位點的多態(tài)性與許多癌癥和酒精性肝疾病風險增加有關,研究人員認為MnSOD基因47位點發(fā)生T/C置換后,導致前導氨基酸序列上纈氨酸轉變?yōu)楸彼?,改變了線粒體靶向序列的螺旋結構,使得進入線粒體基質的MnSOD增多,催化生成的過氧化氫也增多,造成其后的解毒負荷過大,易發(fā)生肝損傷[5, 7]。中國臺灣人群MnSOD基因47位點TC或CC基因型攜帶者發(fā)生ATDH風險增加[40],中國北京研究也顯示,MnSOD基因47位點CC基因型與ATDH進展具有顯著相關性[41]。MnSOD基因47位點變異與ATDH風險僅在中國人群中觀察到相關性,因此,未來需要進行多種族、大樣本的相關研究。

        3.2藥物轉運體(Ⅲ相代謝酶) 與抗結核藥物代謝相關的藥物轉運體主要為肝臟轉運體,分為基質側膜轉運體和膽管側膜轉運體。前者主要調控肝細胞從肝血竇攝取物質,主要是SLC轉運體;后者主要調控肝細胞將物質排入膽汁內,主要是ABC轉運體[2, 42]。

        3.2.1SLC轉運體主要調控肝細胞攝取肝血竇中外源性化合物和結合型膽汁酸,分為鈉依賴性途徑和非鈉依賴性途徑;前者主要是?;悄懰徕c共轉運多肽(NTCP,由SLC10A1編碼),后者主要是有機陰離子轉運蛋白(OAT)和有機陰離子轉運多肽(OATP,由SLCO1B1編碼)家族的成員[2, 42]。

        OATP與肝細胞從肝血竇攝取藥物(如RMP)有關,SLCO1B1基因多態(tài)性可影響藥物攝取的藥代動力學[43]。在亞洲人群中,rs2306283(388A>G)、rs4149056(521T>C)突變頻率較高,而且兩者存在連鎖不平衡,組成的4種單倍體分別是SLCO1B1*1A(388A-521T)、*1B(388G-521T)、*5(388A-521C)和*15(388G-521C)[43]。在韓國人群[44]、印度人群[45]及埃塞俄比亞人群[24]中,研究者并未發(fā)現(xiàn)SLCO1B1基因多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性;但在中國人群發(fā)現(xiàn)SLCO1B1基因521位點T>C變異[46]、SLCO1B1 *15單倍體[43]與ATDH患病風險增加有關。目前,進行SLC10A1基因多態(tài)性與ATDH患病風險的相關研究較少,而且在中國人群未發(fā)現(xiàn)SLCO10A1基因多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性[43]。

        3.2.2ABC轉運體利用水解ATP的能量,將肝細胞內的藥物分子和代謝產物泵出胞內。ABC轉運體可分為7個亞族,在藥物分布中具有重要作用的主要是多藥耐藥蛋白1(MDR1,又稱P-糖蛋白,由ABCB1編碼)、多藥耐藥相關蛋白2(MRP2,由ABCC2編碼)和乳腺癌耐藥蛋白(BCRP,由ABCG2編碼)[2]。

        在韓國人群[44]、中國人群[46]并未發(fā)現(xiàn)ABCB1基因多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性;但在埃塞俄比亞TB-HIV共感染人群中,ABCB1基因3435位點TT基因型與ATDH患病風險增加有關[24]。在韓國人群[44]、埃塞俄比亞人群[24]未發(fā)現(xiàn)ABCC2基因多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性。

        3.3抗氧化反應藥物代謝產生的ROS或活性代謝產物可引起抗氧化反應,參與抗氧化反應的代謝酶主要有GST和MnSOD以及Nrf-ARE信號通路。

        在肝細胞內,抗結核藥物代謝產生毒性中間代謝產物,其在CYP2E1等催化下產生過量ROS和活性氮(RNS)[9]。肝內ROS/RNS存在時,核因子活化B細胞κ輕鏈增強子(NF-κB)上調誘導型一氧化氮合酶(iNOS,由NOS2A編碼)表達,產生過量肝毒性分子一氧化氮[9]。機體處于生理狀態(tài)時,體內多種抗氧化酶可快速消除ROS/RNS,如GSTs、NAD(P)醌脫氫酶1(NQO1,由NQO1編碼)、血紅素加氧酶(HO1,由HMOX1編碼)等[9]。多種轉錄因子可調節(jié)抗氧化酶基因啟動子區(qū)域上的抗氧化反應原件(ARE),如Nrf2(由NFE2L2編碼)、BTB-CNC異體同源體1(Bach1,由BACH1編碼)、小Maf堿性亮氨酸拉鏈蛋白(small Maf basic leucine zipper proteins,主要是MafF、MafG、MafK,分別由MAFF、MAFG、MAFK編碼)[9]。如圖2所示, 在細胞核內,

        圖2INrf-ARE信號通路[9]

        注Nrf2:核因子2相關因子2;ARE:抗氧化反應元件;Keap1:Kelch樣環(huán)氧氯丙烷相關蛋白1;Small Maf:小Maf堿性亮氨酸拉鏈蛋白;Bach1:BTB-CNC異體同源體1;Xpo1:輸出蛋白1;GST:谷胱甘肽S轉移酶;NQO1:NAD(P)H醌脫氫酶1;HO1:血紅素加氧酶1

        Nrf2和小Maf蛋白形成的異源二聚體與ARE結合,上調抗氧化酶表達[3];相反,Bach1和小Maf蛋白形成的異源二聚體與ARE結合,下調抗氧化酶表達[3]。在非氧化應激狀態(tài)時,胞漿中的Kelch樣環(huán)氧氯丙烷相關蛋白1(Keap1,由KEAP1編碼)與Nrf2結合,抑制Nrf2進入核內,從而抑制抗氧化酶表達[9];相反,輸出蛋白1(Xpo1,由XPO1編碼)與Bach1結合,將其從核內運到胞漿,從而激活抗氧化酶表達[9]。因此,體內Nrf-ARE信號通路中,抗氧化激活途徑(包括Nrf2/小Mafs/Xpo1)和抑制途徑(包括Bach1/小Mafs/Keap1)的失調可能導致ATDH的發(fā)生[3]。

        Nanashima等[9]對日本人群Nrf-ARE信號通路中10個基因的多態(tài)性與ATDH患病風險的相關性進行分析,結果提示,在所檢測的34個標簽SNPs中,只有3個SNPs是發(fā)生ATDH的獨立危險因素,分別是NOS2A基因rs11080344-CC基因型、BACH1基因rs2070401-CC基因型以及MAFK基因rs4720833-GA或AA基因型。

        3.4免疫反應從ATDH發(fā)病機制可知,免疫反應在ATDH發(fā)生過程中發(fā)揮了重要作用。體內炎癥-抗炎反應的失衡方向,決定肝細胞是發(fā)生損傷反應還是修復反應[3],而TNF-α、IL-4、IL-6和IL-10對炎癥-抗炎平衡影響較大。在人體內,TNF-α啟動子轉錄起始位點上游308核苷酸G/A轉變與TNF-α水平升高有關[2];Kim等[47]發(fā)現(xiàn),TNF-α基因-308位點G/A變異與ATDH的發(fā)生具有相關性。IL-4基因多態(tài)性與藥物性肝損傷(DIH)易感性具有相關性[2],但在TB人群中,IL-4基因多態(tài)性與ATDH易感性無相關性[48]。IL-6與急性期反應基因的調節(jié)有關[4],Wang等[49]未發(fā)現(xiàn)IL-6基因多態(tài)性與ATDH易感性的相關性。動物實驗顯示IL-10與DIH有關[2],但人群研究并未發(fā)現(xiàn)IL-10基因多態(tài)性與ATDH易感性的相關性[48]。

        MHC主要負責將抗原提呈給T細胞以激活保護性免疫反應[2, 3],人類MHC通常被稱為人類白細胞抗原(HLA)。HLA分子主要有2種,即Ⅰ類(HLA-A、HLA-B及HLA-C)和Ⅱ類(HLA-DP、HLA-DQ及HLA-DR)[4];其中HLA-DQ基因具有高度多態(tài)性,其基因多態(tài)性可改變HLA-DQ分子的功能[50]。Sharma等[51]發(fā)現(xiàn)印度人群HLA-DQA1*0102等位基因缺失和HLA-DQB1*0201等位基因存在是ATDH發(fā)生的獨立危險因素;Chen等[50]發(fā)現(xiàn),中國人群HLA-DQB1*05/*05基因型與ATDH患病風險具有相關性。

        與ATDH發(fā)生相關酶和基因多態(tài)性匯總見表1。

        4 其他因素對ATDH的影響

        年齡、性別、營養(yǎng)狀態(tài)、酒精攝入和肝臟基礎疾病等非遺傳因素,也有可能對ATDH患病風險產生影響。

        4.1年齡是影響ATDH發(fā)生的重要因素[2, 3]。兒童是ATDH的高危人群[52]。接受INH和RMP治療后,兒童比成人更易發(fā)生ATDH(6.9%vs2.7%)[3],可能與兒童的代謝酶與器官(如肝臟、腎臟)發(fā)育不成熟,藥物代謝過程不完善、清除率降低,藥物和毒性代謝產物易在體內累積有關。老年患者也是ATDH的高危人群[2, 3]。近期的研究提示,與<60歲TB患者相比,≥60歲TB患者的ATDH風險增加了2.6~3.5倍[3];而且,≥50歲TB患者ATDH的嚴重程度及病死率均高于<50歲TB患者[3]。可能與老年患者DME活性降低、肝功能惡化有關[2]。

        4.2性別多項研究顯示,女性患ATDH風險高于男性[3, 6, 7, 52],而且女性比男性更易發(fā)生嚴重肝疾病[52],可能與女性CYP3A酶活性高于男性有關[3, 6]。CYP3A4對INH代謝的影響可能受PXR調控[3]。Wang等[53]發(fā)現(xiàn),中國人群PXR基因rs2461823位點和rs7643645位點的多態(tài)性與ATDH易感性具有相關性,但這種相關性只特異地存在于女性人群。

        4.3營養(yǎng)狀態(tài)TB患者容易發(fā)生營養(yǎng)不良,而白蛋白低(<35 g·L-1)的患者[52]和4周內體重減輕>2 kg患者[3, 5, 52],ATDH患病風險明顯增加??赡芘cCYP450酶系統(tǒng)受營養(yǎng)攝入、空腹、營養(yǎng)不良狀態(tài)的影響[3],導致藥物清除率降低、血藥濃度升高[6]有關。

        4.4酒精攝入酒精通過誘導CYP2E1等肝酶,增加患者ATDH患病風險[2, 3, 5]。飲酒過量(每日酒精攝入量超過48 g)者,ATDH患病風險是非飲酒過量者的3倍[54];飲酒甚至使進行RMP預防性治療的TB患者,ATDH患病風險增加[3]。

        4.5肝臟基礎疾病一般來說,肝功能檢測基線異常的患者肝毒性發(fā)生率更高[2]。TB-病毒聯(lián)合感染的輕度炎癥反應使機體處于高危狀態(tài),使用抗結核藥物后,TB-病毒聯(lián)合感染者易從起始高危狀態(tài)進入全面肝毒性反應[3]。與未感染者相比,感染乙型肝炎病毒(HBV)或丙型肝炎病毒(HCV)的TB患者發(fā)生ATDH風險更高,而且肝毒性嚴重程度與抗結核治療前起始病毒載量直接相關[3]。與未感染HIV者相比,HIV感染者更易進展為活性TB[52],TB-HIV共感染者ATDH發(fā)生風險也顯著增加[3];而且,HAART治療前后,TB-HIV共感染者ATDH發(fā)生風險均顯著增加[3]。

        4.6吸煙煙草煙霧中的不同成分可通過不同途徑對肝臟產生毒性作用,如多環(huán)芳香烴、尼古丁等通過誘導CYP1A1、CYP1A2、CYP2E1等而干擾藥物清除[55],丙烯醇通過線粒體毒性作用,使線粒體功能紊亂[56]。然而也有學者認為,煙草煙霧中的雜環(huán)胺需要CYP1A2和NAT2激活,長期吸煙可增加慢乙?;x表型者體內的NAT2酶活性,其體內INH代謝反而加快[57]。Camila等[20]發(fā)現(xiàn),長期吸煙是巴西人群ATDH進展的保護性因素。

        5 其他

        給藥方案、病變類型以及藥物間相互作用,對ATDH患病風險也有一定影響。每日用藥的抗結核治療方案,ATDH患病風險高于每周3次用藥的抗結核治療方案[6];血行播散型TB的ATDH發(fā)生率較高[58];INH與RMP、PZA合用時 , 比INH單用時ATDH的發(fā)生率高[2, 3], 抗結核藥物與HAART同時進行時,ATDH風險高于2種治療方法單獨使用時[3, 52]。

        6 小結

        ATDH現(xiàn)在是而且將來仍是全球嚴重的ADR。DME、藥物轉運體、抗氧化反應及免疫反應多種基因的多態(tài)性與ATDH易感性有關,而且年齡、性別、酒精攝入、肝臟基礎疾病和吸煙等多種非遺傳因素,對ATDH患病風險也有一定影響。因此,了解與ATDH易感性相關的基因多態(tài)性和非遺傳危險因素,有助于識別ATDH高?;颊呒邦A測ATDH的發(fā)生。對于已識別的高危基因型與高危因素的患者,需在抗結核藥物治療的前幾個月定期進行肝生化檢驗。除此之外,仍需開展ATDH易感基因多態(tài)性方面的大樣本、多種族、多中心的風險評估研究,調整不同基因型個體給藥劑量以預防ATDH的發(fā)生。

        [1]Frieden T, Sterling T, Munsiff S, et al. Tuberculosis. Lancet, 2003,362:887-899

        [2]Chen R, Wang J, Zhang Y, et al. Key factors of susceptibility to anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity. Arch Toxicol, 2015,89(6):883-897

        [3]Ramappa V, Aithal GP. Hepatotoxicity Related to Anti-tuberculosis Drugs: Mechanisms and Management. J Clin Exp Hepatol, 2013,3(1):37-49

        [4]Daly AK, Day CP. Genetic association studies in drug-induced liver injury. Drug Metab Rev, 2012,44(1):116-126

        [5]Huang YS. Recent progress in genetic variation and risk of antituberculosis drug-induced liver injury. J Chin Med Assoc, 2014,77(4):169-173

        [6]Tostmann A, Boeree MJ, Aarnoutse RE, et al. Antituberculosis drug-induced hepatotoxicity: concise up-to-date review. J Gastroenterol Hepatol, 2008,23(2):192-202

        [7]Corsini A, Bortolini M. Drug-induced liver injury: the role of drug metabolism and transport. J Clin Pharmacol, 2013,53(5):463-474

        [8]Roy PD, Majumder M, Roy B. Pharmacogenomics of anti-TB drugs-related hepatotoxicity. Pharmacogenomics, 2008,9(3):311-321

        [9]Nanashima K, Mawatari T, Tahara N, et al. Genetic variants in antioxidant pathway: risk factors for hepatotoxicity in tuberculosis patients. Tuberculosis (Edinb), 2012,92(3):253-259

        [10]Adam J, Pichler WJ, Yerly D. Delayed drug hypersensitivity: models of T-cell stimulation. Br J Clin Pharmacol, 2011,71(5):701-707

        [11]Cai Y, Yi J, Zhou C, et al. Pharmacogenetic study of drug-metabolising enzyme polymorphisms on the risk of anti-tuberculosis drug-induced liver injury: a meta-analysis. PLoS One, 2012,7(10):e47769

        [12]Deng R, Yang T, Wang Y, et al. CYP2E1 RsaI/PstI polymorphism and risk of anti-tuberculosis drug-induced liver injury: a meta-analysis. Int J Tuberc Lung Dis, 2012,16(12):1574-1581

        [13]Tang SW, Lv XZ, Zhang Y, et al. CYP2E1, GSTM1 and GSTT1 genetic polymorphisms and susceptibility to antituberculosis drug-induced hepatotoxicity: a nested case-control study. J Clin Pharm Ther, 2012,37(5):588-593

        [14]An HR, Wu XQ, Wang ZY, et al. NAT2 and CYP2E1 polymorphisms associated with antituberculosis drug-induced hepatotoxicity in Chinese patients. Clin Exp Pharmacol Physiol, 2012,39(6):535-543

        [15]Lee SW, Chung LS, Huang HH, et al. NAT2 and CYP2E1 polymorphisms and susceptibility to first-line anti-tuberculosis drug-induced hepatitis. Int J Tuberc Lung Dis, 2010,14(5):622-626

        [16]Roy B, Ghosh SK, Sutradhar D, et al. Predisposition of antituberculosis drug induced hepatotoxicity by cytochrome P450 2E1 genotype and haplotype in pediatric patients. J Gastroenterol Hepatol, 2006,21(4):784-786

        [17]Bose PD, Sarma MP, Medhi S, et al. Role of polymorphic N-acetyl transferase2 and cytochrome P4502E1 gene in antituberculosis treatment-induced hepatitis. J Gastroenterol Hepatol, 2011,26(2):312-318

        [18]Yoshikawa Y, Hosomi H, Fukami T, et al. Establishment of knockdown of superoxide dismutase 2 and expression of CYP3A4 cell system to evaluate drug-induced cytotoxicity. Toxicol In Vitro, 2009,23(6):1179-1187

        [19]Liu K, Li F, Lu J, et al. Role of CYP3A in isoniazid metabolism in vivo. Drug Metab Pharmacokinet, 2014,29(2):219-222

        [20]Zaverucha-do-Valle C, Monteiro SP, El-Jaick KB, et al. The role of cigarette smoking and liver enzymes polymorphisms in anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity in Brazilian patients. Tuberculosis (Edinb), 2014,94(3):299-305

        [21]Miksys S, Lerman C, Shields PG, et al. Smoking, alcoholism and genetic polymorphisms alter CYP2B6 levels in human brain. Neuropharmacology, 2003,45(1):122-132

        [22]Fernandes DC, Santos NP, Moraes MR, et al. Association of the CYP2B6 gene with anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity in a Brazilian Amazon population. Int J Infect Dis, 2015,33:28-31

        [23]Mugusi S, Ngaimisi E, Janabi M, et al. Liver enzyme abnormalities and associated risk factors in HIV patients on efavirenz-based HAART with or without tuberculosis co-infection in Tanzania. PLoS One, 2012,7(7):e40180

        [24]Yimer G, Ueda N, Habtewold A, et al. Pharmacogenetic & pharmacokinetic biomarker for efavirenz based ARV and rifampicin based anti-TB drug induced liver injury in TB-HIV infected patients. PLoS One, 2011,6(12):e27810

        [25]Yamada S, Richardson K, Tang M, et al. Genetic variation in carboxylesterase genes and susceptibility to isoniazid-induced hepatotoxicity. Pharmacogenomics J, 2010,10(6):524-536

        [26]Kita T, Tanigawara Y, Chikazawa S, et al. N-Acetyltransferase2 genotype correlated with isoniazid acetylation in Japanese tuberculous patients. Biol Pharm Bull, 2001,24(5):544-549

        [27]Sarich TC, Adams SP, Petricca G, et al. Inhibition of isoniazid-induced hepatotoxicity in rabbits by pretreatment with an amidase inhibitor. J Pharmacol Exp Ther, 1999,289(2):695-702

        [28]吳雪瓊,朱冬林,張俊仙,等. 羧酸酯酶基因1多態(tài)性鑒定及其與抗結核藥物肝毒性相關性研究. 中華內科雜志, 2012,51(7):524-530

        [29]Hein DW, Doll MA. Accuracy of various human NAT2 SNP genotyping panels to infer rapid, intermediate and slow acetylator phenotypes. Pharmacogenomics, 2012,13(1):31-41

        [30]Sabbagh A, Langaney A, Darlu P, et al. Worldwide distribution of NAT2 diversity: implications for NAT2 evolutionary history. BMC Genet, 2008,9:21

        [31]劉芳, 苗青, 焦偉偉, 等. NAT2和CYP2E1基因多態(tài)性及其代謝表型在中國漢族兒童中的分布. 中國當代兒科雜志, 2012(05):353-358

        [32]Lv X, Tang S, Xia Y, et al. NAT2 genetic polymorphisms and anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity in Chinese community population. Ann Hepatol, 2012,11(5):700-707

        [33]劉芳, 苗青, 肖婧, 等. 漢族兒童Ⅱ相藥物代謝酶基因GSTM1和GSTT1的多態(tài)性分布. 中國循證兒科雜志, 2011(03):205-210

        [34]Tang N, Deng R, Wang Y, et al. GSTM1 and GSTT1 null polymorphisms and susceptibility to anti-tuberculosis drug-induced liver injury: a meta-analysis. Int J Tuberc Lung Dis, 2013,17(1):17-25

        [35]Liu F, Jiao AX, Wu XR, et al. Impact of glutathione S-transferase M1 and T1 on anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity in Chinese pediatric patients. PLoS One, 2014,9(12):e115410

        [36]Kim SH, Kim SH, Bahn JW, et al. Genetic polymorphisms of drug-metabolizing enzymes and anti-TB drug-induced hepatitis. Pharmacogenomics, 2009,10(11):1767-1779

        [37]Chang JC, Liu EH, Lee CN, et al. UGT1A1 polymorphisms associated with risk of induced liver disorders by anti-tuberculosis medications. Int J Tuberc Lung Dis, 2012,16(3):376-378

        [38]郝金奇,陳怡,李世明,等. 尿苷二磷酸葡萄糖醛酸轉移酶1A6基因多態(tài)性與抗結核藥致肝損害的相關性. 中華肝臟病雜志, 2011,19(3):201-204

        [39]史哲, 賀蕾, 高麗, 等. UGT2B7基因多態(tài)性與抗結核藥物性肝損傷的相關性分析. 中國抗生素雜志, 2014(11):856-860

        [40]Huang YS, Su WJ, Huang YH, et al. Genetic polymorphisms of manganese superoxide dismutase, NAD(P)H:quinone oxidoreductase, glutathione S-transferase M1 and T1, and the susceptibility to drug-induced liver injury. J Hepatol, 2007,47(1):128-134

        [41]An HR, Wu XQ, Wang ZY. The relationship between the polymorphism of MnSOD gene and antituberculosis drug-induced liver injury. Chinese Journal of Antibiotics, 2012,37(11):1-4

        [42]Halilbasic E, Claudel T, Trauner M. Bile acid transporters and regulatory nuclear receptors in the liver and beyond. J Hepatol, 2013,58(1):155-168

        [43]Chen R, Wang J, Tang S, et al. Association of polymorphisms in drug transporter genes (SLCO1B1 and SLC10A1) and anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity in a Chinese cohort. Tuberculosis (Edinb), 2015,95(1):68-74

        [44]Kim SH, Kim SH, Lee JH, et al. Polymorphisms in drug transporter genes (ABCB1, SLCO1B1 and ABCC2) and hepatitis induced by antituberculosis drugs. Tuberculosis (Edinb), 2012,92(1):100-104

        [45]Singh M, Gupta VH, Amarapurkar DN, et al. Association of genetic variants with anti-tuberculosis drug induced hepatotoxicity: a high resolution melting analysis. Infect Genet Evol, 2014,23:42-48

        [46]張金玲, 朱學彬, 李世明, 等. SLCO1B1/ABCB1基因多態(tài)性與抗結核藥物性肝損傷的相關性分析. 中華疾病控制雜志, 2013(06):469-472

        [47]Kim SH, Kim SH, Yoon HJ, et al. TNF-alpha genetic polymorphism -308G/A and antituberculosis drug-induced hepatitis. Liver Int, 2012,32(5):809-814

        [48]Wang J, Chen R, Tang S, et al. Interleukin-4 and interleukin-10 polymorphisms and antituberculosis drug-induced hepatotoxicity in Chinese population. J Clin Pharm Ther, 2015,40(2):186-191

        [49]Wang J, Chen R, Tang S, et al. Analysis of IL-6, STAT3 and HSPA1L gene polymorphisms in anti-tuberculosis drug-induced hepatitis in a nested case-control study. PLoS One, 2015,10(3):e118862

        [50]Chen R, Zhang Y, Tang S, et al. The association between HLA-DQB1 polymorphism and antituberculosis drug-induced liver injury: a Case-Control Study. J Clin Pharm Ther, 2015,40(1):110-115

        [51]Sharma SK, Balamurugan A, Saha PK, et al. Evaluation of clinical and immunogenetic risk factors for the development of hepatotoxicity during antituberculosis treatment. Am J Respir Crit Care Med, 2002,166(7):916-919

        [52]Devarbhavi H. Antituberculous drug-induced liver injury: current perspective. Trop Gastroenterol, 2011,32(3):167-174

        [53]Wang JY, Tsai CH, Lee YL, et al. Gender-Dimorphic Impact of PXR Genotype and Haplotype on Hepatotoxicity During Antituberculosis Treatment. Medicine (Baltimore), 2015,94(24):e982

        [54]Sharma SK, Balamurugan A, Saha PK, et al. Evaluation of clinical and immunogenetic risk factors for the development of hepatotoxicity during antituberculosis treatment. Am J Respir Crit Care Med, 2002,166(7):916-919

        [55]Kroon LA. Drug interactions with smoking. Am J Health Syst Pharm, 2007,64(18):1917-1921

        [56]Sun L, Luo C, Long J, et al. Acrolein is a mitochondrial toxin: effects on respiratory function and enzyme activities in isolated rat liver mitochondria. Mitochondrion, 2006,6(3):136-142

        [57]Voutsinas J, Wilkens LR, Franke A, et al. Heterocyclic amine intake, smoking, cytochrome P450 1A2 and N-acetylation phenotypes, and risk of colorectal adenoma in a multiethnic population. Gut, 2013,62(3):416-422[58]Donald PR. Antituberculosis drug-induced hepatotoxicity in children. Pediatr Rep, 2011,3(2):e16

        (本文編輯:張崇凡)

        10.3969/j.issn.1673-5501.2016.04.013

        國家自然科學基金應急管理項目:81441067;國家自然科學基金面上項目:81571950;北京市科委行業(yè)定額經費資助:2014-bjsekyjs-1;北京市科技新星計劃交叉學科合作課題:xxjc2001611;2015年北京市留學人員科技活動擇優(yōu)資助項目

        首都醫(yī)科大學附屬北京兒童醫(yī)院、北京市兒科研究所,兒科學國家重點學科,教育部兒科重大疾病研究重點實驗室,國家呼吸系統(tǒng)疾病臨床醫(yī)學研究中心,兒童呼吸道感染性疾病研究北京市重點實驗室北京,100045

        申阿東,E-mail:shenad16@hotmail.com

        2016-05-15

        2016-08-20)

        亚洲中文字幕在线第六区| 亚洲精品国产字幕久久vr| 成人精品国产亚洲欧洲| 国产主播一区二区三区在线观看| 国产一级内射视频在线观看| 夜夜添夜夜添夜夜摸夜夜摸| 国模精品无码一区二区二区| 中文无码制服丝袜人妻AV| 97精品熟女少妇一区二区三区| a级国产乱理伦片| 中文字幕无码家庭乱欲| 午夜亚洲国产精品福利| 蜜桃夜夜爽天天爽三区麻豆av| 久久狠狠爱亚洲综合影院| 天天做天天躁天天躁| 色哟哟av网站在线观看| 乳乱中文字幕熟女熟妇| 国产亚av手机在线观看| 色妺妺视频网| 国产高清丝袜美腿视频在线观看| 国产亚洲精品av一区| 中文字幕欧美人妻精品一区| 精品五月天| 综合图区亚洲偷自拍熟女| 最新国产精品拍自在线观看| 人妻少妇精品中文字幕av蜜桃| 免费国产黄片视频在线观看| 在线不卡av一区二区| 国精品人妻无码一区二区三区性色| 欧美成人精品第一区二区三区| 国产精品,在线点播影院| 一区二区三区四区在线观看日本| 少妇仑乱a毛片| 亚洲AV无码一区二区三区天堂网| 性色av一区二区三区密臀av| 亚洲2022国产成人精品无码区| 依依成人精品视频在线观看| 亚洲AV无码AV色| 中文字幕一区久久精品| 亚洲av成人无码精品电影在线| 久久波多野结衣av|