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        DAPI染色法在檢測BHK-21細胞周期的應用

        2016-09-10 07:14:15馬全英宋玉霞劉學榮牟克斌王超英董金杰中農(nóng)威特生物科技股份有限公司甘肅蘭州730046
        山東畜牧獸醫(yī) 2016年8期
        關(guān)鍵詞:染色法細胞培養(yǎng)細胞周期

        劉 萍 馬全英 宋玉霞 劉學榮 牟克斌 王超英 董金杰(中農(nóng)威特生物科技股份有限公司 甘肅 蘭州 730046)

        DAPI染色法在檢測BHK-21細胞周期的應用

        劉 萍馬全英宋玉霞劉學榮牟克斌王超英董金杰*
        (中農(nóng)威特生物科技股份有限公司甘肅 蘭州730046)

        為建立一種檢測細胞周期的方法,取懸浮培養(yǎng)的BHK-21細胞按照4,6-聯(lián)脒-2苯基吲哚(DAPI) 染色方法進行染色,利用NC-3000細胞分析儀進行細胞周期分析。結(jié)果表明,DAPI標記法簡單易行,DAPI標記法能夠準確的進行細胞周期檢測。

        DAPI染色法細胞周期流式細胞技術(shù)

        細胞周期分析,對反映一個細胞群體的增殖活性具有重要意義,利用流式細胞術(shù)進行DNA含量測定是細胞周期分析的重要手段,直到目前仍然是廣泛使用的方法之一,應用細胞流式技術(shù)進行細胞周期檢測,其結(jié)果不僅受樣品固有性、樣品的處理方法及熒光染色的影響,還受分析方法的影響目前,用于檢測細胞周期的染料種類較多,其中碘化丙啶(PI)是常用染料,但嵌入到雙鏈DNA 和RNA 的堿基對中與之結(jié)合,無堿基特異性,故染色前必須用核糖核酸酶A處理細胞,排除雙鏈RNA的干擾[1-2]。4,6-聯(lián)脒-2苯基吲哚(DAPI)是DNA特異性的熒光染料,與DNA結(jié)合是非嵌入式的,主要結(jié)合在A-T堿基區(qū),使用時無需用RnaseA處理細胞, 但由于配置紫外激光源的流式細胞儀非常昂貴,大多數(shù)實驗室都沒有配備。因此,以DAPI 標記DNA 分析細胞周期的方法尚未成為常規(guī)檢測方法被普遍采納,也沒有簡單的標準實驗流程可供參考[3-4]。

        本試驗擬采用DAPI標記BHK-21細胞以探索簡便易行的DNA 檢測技術(shù),檢測細胞周期中各期的DNA 含量,以便及時預測規(guī)模化培養(yǎng)細胞培養(yǎng)細胞增殖活性的情況,為規(guī)?;毎囵B(yǎng)的檢測奠定基礎。

        1 材料與方法

        1.1儀器及試劑NucleoCounter NC-3000自動化全光譜定量細胞成像分析儀,DAPI試劑盒均為chemometec公司產(chǎn)品,細胞計數(shù)儀為INNOVATIS產(chǎn)品,懸浮培養(yǎng)細胞BHK-21為中農(nóng)威特生物科技股份有限公司馴化并保存。

        1.2樣品的制備將生長狀態(tài)良好的BHK-21細胞進行傳代批式培養(yǎng)。取生長狀態(tài)良好的細胞,以4x105個/ml的密度接種于含200ml培養(yǎng)基的細胞培養(yǎng)三角瓶中,與37℃,150r/min培養(yǎng)。培養(yǎng)過程中,分別在24、48、60h對細胞取樣,并進行細胞形態(tài)觀察、細胞濃度和細胞活力檢測。將樣品用PBS洗2次,1000r/min離心5min,棄上清液。用冰凍的70%無水乙醇固定,放4℃?zhèn)溆谩?/p>

        1.3染色與上機檢測將處理好的細胞樣品,每份懸浮于0.5ml DAPI染色液中,37℃避光染色5min,取適量染色后的細胞樣加入到NC-Slide A8的檢測室中,將上樣后的NC-Slide A8放置于NC3000主機的托盤中,進行上機檢測。

        2 結(jié)果

        2.1細胞形態(tài)顯微鏡下觀察細胞形態(tài),大多數(shù)細胞散在分布,單個細胞透亮,邊緣光滑,形態(tài)長良好。

        2.2細胞生長濃度與活性在起始濃度為4x105個/ml,經(jīng)過一段時間培養(yǎng),0~48h檢測結(jié)果細胞密度逐漸呈上升趨勢,48h后繼續(xù)培養(yǎng),細胞濃度逐漸呈下降趨勢;細胞活力先有所增加,達到最大值呈下降趨勢,直至細胞大部分死亡(見圖1、2)。

        圖1 批式培養(yǎng)BHK-21細胞濃度變化

        圖2 批式培養(yǎng)BHK-21細胞活性變化

        2.2細胞周期分析上述經(jīng)DAPI染色后的BHK-21細胞上機進行檢測,經(jīng)NC-3000系統(tǒng)對細胞進行細胞周期分析,結(jié)果48h以前,S期和G2/M期的DNA含量總數(shù)呈上升趨勢,大部分細胞逐進入DNA合成期,培養(yǎng)48h后,S期和G2/M期的DNA含量總數(shù)明顯呈下降趨勢(見圖3)。

        圖3 BHK-21細胞培養(yǎng)0-72h細胞周期DNA含量變化

        3 討論

        (1)細胞濃度與細胞活力都是監(jiān)測細胞質(zhì)量好壞的重要指標[5]。本試驗細胞周期檢測結(jié)果表明,在細胞培養(yǎng)到48h,細胞S期和G2/M期含量逐漸呈上升趨勢并達到最高,同時這一培養(yǎng)時間內(nèi)細胞密度也達到最大值,且細胞活力高達95%以上,兩者的檢測結(jié)果一致。試驗結(jié)果表明細胞培養(yǎng)開始階段,培養(yǎng)液中營養(yǎng)豐富,細胞在較低密度下生長,代謝活躍,大部分處在G0/G1期,為下一階段DNA 合成S期貯備足夠營養(yǎng)物質(zhì)和能量,隨著培養(yǎng)時間的延長,細胞逐漸向DNA合成期過渡,完成DNA合成,最后進入G2/M,細胞開始分裂增殖。試驗中,細胞生長到72h,大部分細胞被阻滯在G0/G1期,此期細胞明顯增多,細胞不能在增殖,表明隨著培養(yǎng)時間的延長,細胞培養(yǎng)液中營養(yǎng)物質(zhì)大量被消耗,同時細胞代謝產(chǎn)生大量副產(chǎn)物,這些因素都嚴重影響細胞的生長[6-7]。因此檢測細胞周期可預測下一個階段細胞生長趨勢與增值情況,為規(guī)膜化細胞培養(yǎng)提共理論參考。(2)細胞周期染色方法很多,本實驗以探討了DAPI標記BHK-21細胞,結(jié)果表明,DAPI是一種可靠的DNA檢測方法,并且其樣本制備更簡單、易行。這種染料可做為帶紫外激光器的分選儀上檢測DNA的最佳選擇。雖然PI的DNA染色效果好,適用于普通流式細胞儀上檢測(488 nm激發(fā)),但由于其具有毒性,污染后不易清除,且不能標記活體細胞等局限性,因此,不適用于在分選儀上檢測[8-9]。(3)本試驗借助NC-3000自動化全光譜定量細胞成像分析儀所建立的DAPI染色法簡單易行,不必加通透劑,也不分離核,是一種適用于多參數(shù)分析的檢測細胞DNA含量的方法,而且實驗流程更簡單、快速,可做為具備紫外激光器的流式細胞儀上首選的DNA熒光染料。能夠準確的檢測細胞周期,為規(guī)模化細胞培養(yǎng)過程中監(jiān)控細胞生長狀態(tài)提供一種良好的檢測方法。

        [1]劉錫娟, 丁慧榮, 張宏. 用DAPI和Hoechast33342染色法檢測DNA的流式細胞方法探討[J]. 北京大學學報∶ 醫(yī)學版, 2010, 42(4)∶ 480-484.

        [2]賈永蕊. 流式細胞術(shù)在DNA檢測中的應用[J]. 中國醫(yī)學裝備, 2010 7(4)∶ 4-6.

        [3]閆虹. 流式細胞術(shù)的臨床應用[J]. 醫(yī)學檢驗與臨床, 2008, 19(5)∶ 4-6.

        [4]Camplejohn RS,Macartnery JC, Morris RW, et al. Measurement of phase fractions in lymphoid tissue com paring fresh verus paraffin embedded tissue and 4, 6-diamidino-2-phenylindoledihy drochlorde verus propiumiodide staining[J]. Cytometry, 1989, 10(4)∶ 410-416.

        [5]Urbich C, Dimmeler S. Endothelial progenitor cells∶characterization and role in vascular biology. Cire Res 2004, 95(4)∶ 343-353.

        [6]Krishan A,Dandekar PD. DAPI fluorescence in nuclei isolated from tumors[J]. JH islochem, 2005, 53(8)∶ 1033-1036.

        [7]Kapuscinsk J. a DNA-specfific fluorescence probe[J]. Bio-tech H istochem. 1995, 70(5)∶ 220-223.

        [8]Mclntire TL, Golgdey SH,Benson NA, et al. Flow cytometric analysis of DNA in cells obtained from deparaffinized fomalin fixed lymphoid tissues[J]. Cytometry, 1987, 8(5)∶ 474-478.

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        S818.9

        A

        1007-1733(2016)08-0010-02

        甘肅省科技計劃資助(1008FCCA006)

        2016-04-21)

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