左肖肖,陸利霞,2,李 壹,2,熊曉輝,2
(1.南京工業(yè)大學(xué)食品與輕工學(xué)院,江蘇南京211800;2.江蘇省食品安全快速檢測公共技術(shù)服務(wù)中心,江蘇南京211800)
微生物高密度培養(yǎng)策略
左肖肖1,陸利霞1,2,李壹1,2,熊曉輝1,2
(1.南京工業(yè)大學(xué)食品與輕工學(xué)院,江蘇南京211800;
2.江蘇省食品安全快速檢測公共技術(shù)服務(wù)中心,江蘇南京211800)
微生物高密度培養(yǎng)具有發(fā)酵周期短、生產(chǎn)率高、成本低等優(yōu)點,已成為發(fā)酵工程領(lǐng)域的研究重點。筆者從營養(yǎng)物質(zhì)、環(huán)境因素、補料方式及反應(yīng)器、代謝調(diào)控策略等方面分析如何提高微生物發(fā)酵密度效果,表明微生物高密度發(fā)酵必須從菌體本身、代謝特點、營養(yǎng)需求等多角度、綜合設(shè)計才更有效,便于降低發(fā)酵成本。
高密度培養(yǎng);生物反應(yīng)器;代謝調(diào)控
微生物的高密度培養(yǎng)以低成本獲得高生產(chǎn)率和高產(chǎn)品效益,已成為食品、藥品等方面的研究熱點。微生物采油將微生物及其營養(yǎng)物注入地下油層,使其在油層中繁殖代謝,利用微生物對原油作用及其代謝產(chǎn)物來提高原油采收率。由于油層孔隙體積一般高達幾百萬立方米,為提高增油效果,現(xiàn)場需要注入大量的微生物菌體培養(yǎng)物。在工業(yè)化生產(chǎn)中,保證生產(chǎn)效果的同時必須控制投入成本。因此,低成本、高效率的高密度培養(yǎng)技術(shù)有望大幅降低微生物培養(yǎng)液的成本,在微生物采油領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景。高密度培養(yǎng)(high celldensity culture,HCDC),一般是指微生物在液體培養(yǎng)中,細胞群體密度超過常規(guī)細胞10倍以上時的生長狀態(tài)或培養(yǎng)狀態(tài)[1]。高密度培養(yǎng)與常規(guī)培養(yǎng)相比,優(yōu)點如下[2]:1)實現(xiàn)微生物的高密度和高生產(chǎn)率;2)可使生物反應(yīng)器的體積縮小,過程更加安全;3)簡化下游產(chǎn)物的分離純化步驟;4)縮短發(fā)酵周期,實現(xiàn)產(chǎn)物的高效價;5)減少設(shè)備投資,縮小成本。高密度培養(yǎng)技術(shù)也可用于工程菌發(fā)酵,以盡可能低的成本實現(xiàn)規(guī)模化生產(chǎn)[3]。
影響高密度培養(yǎng)的因素包括營養(yǎng)物質(zhì)種類、培養(yǎng)條件、培養(yǎng)方式、生物反應(yīng)器的選擇以及培養(yǎng)體系等,本文就微生物高密度培養(yǎng)策略進行綜述。
碳源、氮源、無機鹽、生長因子等是細胞生長所必需的營養(yǎng)成分,在高密度培養(yǎng)時,這些營養(yǎng)成分必須比例恰當(dāng),且濃度不會抑制細胞的生長[4]。
碳源是微生物培養(yǎng)基的關(guān)鍵組成部分,主要為微生物或細胞的正常生長提供物質(zhì)基礎(chǔ),而不同的碳源種類和濃度對生物量有不同的影響。郭漢卿等[5]通過對石油開采功能菌株瓊氏不動桿菌5-6高密度發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化,發(fā)現(xiàn)以葵花籽油作為碳源時,明顯優(yōu)于其他幾種碳源,菌密度高達1.2×109CFU/mL,較優(yōu)化前基礎(chǔ)培養(yǎng)基的6.0×108CFU/mL提高了2倍。Posada-Uribe等[6]在研究培養(yǎng)基組成和培養(yǎng)條件對枯草芽胞桿菌EA CB0575產(chǎn)芽胞的影響中發(fā)現(xiàn),最優(yōu)的碳源是葡萄糖,最佳無機鹽為MgSO4·7H2O。整體優(yōu)化后得到的芽胞數(shù)為8.78× 109CFU/mL,芽胞率為94.2%,芽胞數(shù)量和芽胞率分別提高了17.2倍和1.9倍。
氮源是構(gòu)成生物體的蛋白質(zhì)、核酸及其他含氮化合物的基礎(chǔ),在微生物生產(chǎn)目標(biāo)產(chǎn)物過程中起著至關(guān)重要的作用,最常用的氮源是有機氮源。但是,微生物利用不同氮源,其相應(yīng)的產(chǎn)物和菌密度差別較大。Fei等[7]利用葡萄糖和木糖作為碳源,高密度培養(yǎng)一種工程紅球菌屬菌株,發(fā)現(xiàn)當(dāng)(NH4)2SO4作為氮源時,OD600為28.8±1.3,其他無機氮源的OD也比有機氮源的高,脂質(zhì)濃度和脂質(zhì)質(zhì)量分數(shù)都達到最大,分別為(4.05±0.66)g/L和44.3%,脂質(zhì)的最高產(chǎn)量為0.137 g/g。這與文獻[8]報道的用葡萄糖作為碳源的結(jié)果一致,這說明葡萄糖和木糖作為混合碳源時,選擇(NH4)2SO4作為氮源最佳。
無機鹽是許多微生物生長不可缺少的營養(yǎng)元素,主要是構(gòu)成菌體的細胞成分,作為酶的激活劑或者抑制劑。常用的無機鹽有磷酸鹽、鎂鹽、鐵鹽及鉀鹽等。臧超群等[9]通過對生防細菌SY286發(fā)酵條件優(yōu)化,得出以NaCl作為無機鹽時,生防細菌SY286菌懸液密度和產(chǎn)生抑菌物質(zhì)的活性均最大,分別為1.5×109CFU/mL和92.37%,明顯優(yōu)于MgSO4、ZnSO4等其他幾種無機鹽,因此選擇NaCl作為最佳無機鹽。
因此,選擇營養(yǎng)物質(zhì)時需要分析菌體代謝及產(chǎn)物特點、原料供應(yīng)優(yōu)勢等,使微生物細胞快速生長,以提高菌體密度,這也是解決高密度培養(yǎng)問題的策略之一。
溫度主要是通過改變酶的反應(yīng)速度來控制微生物的生長。選擇適宜的培養(yǎng)溫度對菌體的濃度和產(chǎn)物的產(chǎn)量至關(guān)重要。王西祥等[10]在響應(yīng)面法優(yōu)化枯草芽胞桿菌NS178產(chǎn)芽胞發(fā)酵工藝中發(fā)現(xiàn),當(dāng)培養(yǎng)溫度為33℃時,NS178發(fā)酵液菌落密度為3.45×109CFU/mL,是優(yōu)化前的7倍左右。周斌等[11]在重組菌肝素黃桿菌高密度生產(chǎn)肝素酶Ⅱ中發(fā)現(xiàn),只有在37℃條件下最終OD600可以達到98,酶活可以高達9 436 U/L。
pH是影響高密度培養(yǎng)的重要因素之一。目前大多數(shù)的研究都是針對起始pH對生物量和代謝產(chǎn)物的影響,培養(yǎng)液中pH的變化和菌體自身的生長代謝會影響培養(yǎng)液的pH,從而影響菌體的生長。發(fā)酵過程中,主要通過定時補料加入酸或堿。Jallouli等[12]利用溫帶發(fā)光桿菌突變菌體K122生產(chǎn)生物殺蟲劑,通過分批發(fā)酵和補料發(fā)酵的方法,未控制pH時,活菌密度為1.8×109CFU/mL;當(dāng)發(fā)酵pH被控制為7.0時,活菌密度為2.5×109CFU/mL。與不控制pH相比,活菌密度提高了38.8%。由此可知,pH是影響細胞生長和代謝產(chǎn)物形成的重要參數(shù)之一[13]。
培養(yǎng)方式的選擇對菌體的生長有著重要的作用,高密度發(fā)酵生產(chǎn)的過程主要是補料分批發(fā)酵[14-15]。這種類型的方法包括指數(shù)流加和傳統(tǒng)的在線補料方法,比如pH、溶氧(DO)等[16-17]。補料分批發(fā)酵是在發(fā)酵過程中補入新鮮發(fā)酵液,以免造成營養(yǎng)成分不足而導(dǎo)致菌體生長不好甚至死亡,同時可以稀釋部分代謝有害物。補料分批發(fā)酵能維持較低的基質(zhì)濃度,避免碳源的阻遏效應(yīng),并能減緩代謝有害物的不利影響。Sohoni等[18]在大腸桿菌中優(yōu)化高密度發(fā)酵工藝生產(chǎn)重組腈水解酶,利用連續(xù)補料的方法,細胞干質(zhì)量濃度達到19.5 g/L,腈水解酶產(chǎn)量為4.19×105U/L;而Liu等[19]在利用甘油補料時,腈水解酶的產(chǎn)量為1.93×104U/L。與普通的分批培養(yǎng)相比,這種補料分批的策略使生物量提高了8倍,腈水解酶的產(chǎn)量提高了2.4倍。在補料分批培養(yǎng)過程中,需結(jié)合菌體自身的特征,確定最佳的補料策略和補料方式,從而實現(xiàn)微生物的高密度和產(chǎn)物的高產(chǎn)量。
3.1溶氧補料策略
培養(yǎng)基中營養(yǎng)物質(zhì)消耗殆盡時,細菌的有氧代謝活動下降,導(dǎo)致環(huán)境溶氧持續(xù)上升,加入營養(yǎng)物質(zhì)后溶氧又會下降。通過溶氧反饋控制限制性營養(yǎng)物質(zhì)的補加速率,使限制性營養(yǎng)物質(zhì)保持在一定的濃度,同時也避免了溶氧的抑制。當(dāng)碳源消耗,溶氧開始上升時,需要對生物反應(yīng)器設(shè)計一個預(yù)定的補料方案[20]。40%的溶氧水平最適合嗜酸氧化亞鐵硫桿菌的高密度培養(yǎng)[21],但是O2是一種難溶氣體,因此在實驗中常常會用搖床、發(fā)酵罐和通氣設(shè)備來增加溶氧[22],但是也有Matsui等[23]研究在高密度培養(yǎng)重組大腸桿菌過程中發(fā)現(xiàn),溶氧并不是越多越好。好氧型菌體需要較高的DO才能生長,但厭氧型菌體在高DO時不適宜生長,應(yīng)根據(jù)菌體類型控制好DO的上下限。張鋒等[24]研究枯草芽胞桿菌谷氨酰胺合成酶工程菌利用溶氧反饋補料策略時,成功進行了工程菌的高密度培養(yǎng),將溶氧的上限設(shè)為50%,高于DO時開始流加補料培養(yǎng)基,直到DO達到下限停止流加,最終細菌干質(zhì)量濃度達到48.1 g/L,目的蛋白的表達量占菌體蛋白總量的55%,粗體物酶比活為10.35 U/mg。
3.2底物反饋流加策略
葡萄糖濃度的控制在補料式發(fā)酵中的重要性已經(jīng)受到了很多的關(guān)注[25-27]。在發(fā)酵過程中,微生物的性能和微生物產(chǎn)物的合成極大地影響了葡萄糖的濃度[28]。當(dāng)葡萄糖濃度充足時,會積累不必要的代謝產(chǎn)物,例如,乙醇和醋酸。為了避免產(chǎn)生不必要的代謝產(chǎn)物,必須控制葡萄糖的濃度[27-33]。葡萄糖是目前最常用的碳源,但糖的濃度過高,會對菌體的生長產(chǎn)生一定的抑制作用。初始葡萄糖質(zhì)量濃度超過20 g/L,大腸桿菌生長就會受到抑制[34]。閔偉紅等[35]在堿性中和與補料分批高密度培養(yǎng)保加利亞乳桿菌的研究中發(fā)現(xiàn):當(dāng)每次加入2 g/L的8 mL葡萄糖時,最終菌密度達到9.0×1011CFU/mL,菌體干質(zhì)量濃度達14.266 g/L。
3.3代謝物的抑制
就傳統(tǒng)建筑項目而言,不僅價格昂貴,而且大部分建筑材料也會造成環(huán)境污染,給生活環(huán)境造成毒害,危害人類健康。從環(huán)保的角度來看,綠色節(jié)能材料能夠很好地解決這些問題。對人體無害,讓用戶更自信地生活,極大地增強了建筑的綠色環(huán)保性。從而為人們打造了更加舒適的居住環(huán)境,建設(shè)過程中的污染問題也得到了解決。
在高密度培養(yǎng)過程中,會產(chǎn)生一些有害的代謝產(chǎn)物,對菌體的生長有抑制作用。比如,甲醇積累會對酵母細胞的生長產(chǎn)生一定的抑制作用,Brunel等[36]提出采用補料分批培養(yǎng)策略對平滑假絲酵母生產(chǎn)脂肪酶進行高細胞密度培養(yǎng)。發(fā)酵終點時,菌體質(zhì)量濃度達到了74.30 g/L左右,脂肪酶的活力為1.02×106U/L左右。因此,通過補料分批培養(yǎng),可以有效避免甲醇積累對菌體生長的抑制。
3.4兩階段補料策略
微生物細胞快速生長時期與產(chǎn)物合成期處于一個動態(tài)平衡的過程,并不完全吻合,為了同時獲得高細胞密度和高產(chǎn)率,兩段式補料策略被引入。魯明波等[37]研究發(fā)現(xiàn):法夫酵母在發(fā)酵的延遲期和對數(shù)生長早期,通過流加控制葡萄糖質(zhì)量濃度為25 g/L左右,在對數(shù)生長后期和穩(wěn)定期,控制糖質(zhì)量濃度為5 g/L。采用這種發(fā)酵方式,發(fā)酵終點細胞干質(zhì)量濃度為23.8 g/L,蝦青素產(chǎn)量最大達到29.05 g/L,分別比分批發(fā)酵提高了52.8%和109%,蝦青素的產(chǎn)量也比脈沖流加和恒pH流加高。該兩段式補料優(yōu)化控制方式基本達到產(chǎn)物合成最優(yōu)化和產(chǎn)物合成效率最高化。
3.5指數(shù)流加補料策略
指數(shù)流加是一種開環(huán)補料式的策略以去達到某種預(yù)定的值[20]。當(dāng)葡萄糖被消耗完之后,應(yīng)用指數(shù)流加策略將葡萄糖流加到培養(yǎng)基中(葡萄糖為最主要的限制性底物),葡萄糖流加量可以用下面的方程[38-39]計算。
式中:Ft是連續(xù)流加速率(L/h),X0和V0分別表示在補料分批培養(yǎng)的開始階段干細胞質(zhì)量濃度(g/L)和培養(yǎng)體積(L),Sf是流加中的葡萄糖質(zhì)量濃度(g/L),μset是預(yù)定的生長速率,YX/S是增長的生物量和葡萄糖的量的比值(g/g)。在研究過程中,F(xiàn)t每個小時都會被改變?nèi)ツM指數(shù)流加過程。
Korz等[40]采用指數(shù)流加的補料方式,當(dāng)重組大腸桿菌分別以葡萄糖和甘油為碳源時,菌體質(zhì)量濃度分別達到了128 g/L和148 g/L。謝婷等[41]在指數(shù)流加補料發(fā)酵提高魯氏酵母β-1,3-葡聚糖酶產(chǎn)量中發(fā)現(xiàn),15~23 h開始進行指數(shù)流加補料,細胞維持了對數(shù)生長至21 h(對應(yīng)最大生物量為12.86 g/L),而YEPD批培養(yǎng)33 h生物量達到10.78 g/L,相比之下,前者周期縮短了12 h,生物量提高了19.29%。
生物反應(yīng)器是指包含了底物和酶或者細胞作為生物催化劑的一種設(shè)備或者系統(tǒng),在這個環(huán)境中,生物催化劑可以執(zhí)行他們的功能。生物反應(yīng)器的結(jié)構(gòu)、操作方式和操作條件對高密度培養(yǎng)的產(chǎn)物和產(chǎn)率有著重要的影響。
4.1攪拌式生物反應(yīng)器
攪拌式生物反應(yīng)器的混合程度較高,但其較大的剪切力并不利于絲狀菌和動植物細胞的培養(yǎng),不過可以改變槳葉的尺寸和形狀,或者加入一些物質(zhì)來減小剪切力。其具有操作簡單、應(yīng)用范圍廣、容易放大培養(yǎng)等特點,所以,目前這種傳統(tǒng)的攪拌式生物反應(yīng)器應(yīng)用最為廣泛,也是高密度培養(yǎng)最常用的生物反應(yīng)器[42]。李佳偉等[43]采用3 L機械攪拌式發(fā)酵罐研究黑曲霉發(fā)酵生產(chǎn)檸檬酸的培養(yǎng)條件。結(jié)果顯示,在固定控制條件下,固定轉(zhuǎn)速500 r/min時,發(fā)酵情況最好,產(chǎn)酸均達到12.9 g/L,糖酸轉(zhuǎn)化率為86%,生物量為42.6 g/L。
4.2氣升式生物反應(yīng)器
氣升式生物反應(yīng)器與其他生物反應(yīng)器相比,設(shè)備的密封性好,有更強的抗雜菌污染能力。但是氣升式生物反應(yīng)器在發(fā)酵過程中容易起泡,這可能是由于培養(yǎng)基中的糖濃度較高引起的。氣升式生物反應(yīng)器適用于流體黏度相對不高、攪拌溫和[44]和氧傳質(zhì)要求較低[45-46]情況,但是其操作彈性小、軸向梯度高徑比大、高黏度時相間傳質(zhì)差等不利因素制約了其發(fā)展。鄭裕國等[47]在甘薯原料氣升式生物反應(yīng)器發(fā)酵生產(chǎn)單細胞蛋白中發(fā)現(xiàn),采用10 L機械攪拌發(fā)酵罐發(fā)酵48 h后,發(fā)酵液中干物質(zhì)量為37.2 g/L,蛋白產(chǎn)量為17.7 g/L;10 L帶2塊篩板氣升式生物反應(yīng)器發(fā)酵48 h后,發(fā)酵液中干物質(zhì)量為39.6 g/L,蛋白產(chǎn)量為18.9 g/L。可以得出,氣升式生物反應(yīng)器在甘薯原料發(fā)酵生產(chǎn)單細胞蛋白中的發(fā)酵性能優(yōu)于機械攪拌發(fā)酵罐。
4.3膜生物反應(yīng)器
膜生物反應(yīng)器是生物處理法與膜技術(shù)相結(jié)合的一種先進技術(shù)。按照生物反應(yīng)器和膜組件之間的相對位置,可將膜生物反應(yīng)器分為以下3種:分置式膜生物反應(yīng)器,一體式膜生物反應(yīng)器,復(fù)合式膜生物反應(yīng)器。Inloes等[48-49]固定化酵母屬和大腸桿菌生產(chǎn)乙醇,但中空纖維膜生物反應(yīng)器不適用于有氧微生物,會導(dǎo)致供養(yǎng)不足。為了使需氧細胞生長,雙中空纖維膜生物反應(yīng)器被運用。在凝結(jié)芽胞桿菌TQ33高細胞密度培養(yǎng)過程中,戚薇等[50]采用中空纖維膜生物反應(yīng)器過濾乳酸,最終菌體密度達到1.6×1010CFU/mL,芽胞密度達到1.2×1010CFU/mL,分別是分批培養(yǎng)的21倍和37倍。Tashiro等[51]在利用高細胞密度培養(yǎng)的方法生產(chǎn)丙酮丁醇乙醇(ABE)的過程中,使用中空纖維膜生物反應(yīng)器進行培養(yǎng),經(jīng)過48 h培養(yǎng)后,最終菌體質(zhì)量濃度高于100 g/L,ABE的產(chǎn)率為7.55 g/(L·h),分別是傳統(tǒng)連續(xù)培養(yǎng)的20倍和4倍。
普通的補料分批培養(yǎng)是指在一個生物反應(yīng)器內(nèi)進行多次補料,而MSC- HCDC是指多個生物反應(yīng)器中單獨補料。MSC-HCDC體系包括多個串聯(lián)的中空纖維細胞循環(huán)或者用于細胞固定的高細胞密度培養(yǎng)的連續(xù)攪拌反應(yīng)器。Chang等[52]在一個8級MSC-HCDC系統(tǒng)中生產(chǎn)青霉素,生產(chǎn)率為149%(0.085 g/(L·h)),細胞質(zhì)量濃度為40 g/L;在一個7級MSC-HCDC系統(tǒng)中生產(chǎn)青霉素,生產(chǎn)率為289%(0.165 g/(L·h)),細胞質(zhì)量濃度為60 g/L。一般來說,一個帶有2個或者3個生物反應(yīng)器的MSC -HCDC系統(tǒng),可以代替補料式生物反應(yīng)器去獲得較高產(chǎn)率的細胞外和細胞內(nèi)的產(chǎn)物?,F(xiàn)在這種體系已經(jīng)被廣泛地運用,它的高產(chǎn)率和高效價成為其發(fā)展優(yōu)勢。
高密度培養(yǎng)是實現(xiàn)微生物產(chǎn)品高生產(chǎn)率和高效率的關(guān)鍵技術(shù),現(xiàn)已成為生化工程的重要研究領(lǐng)域。高密度培養(yǎng)策略的優(yōu)化是完善高密度培養(yǎng)技術(shù)的首要問題,同時,需要加強研究高密度培養(yǎng)的發(fā)酵動力學(xué)、多級連續(xù)高細胞密度培養(yǎng)技術(shù)并解決培養(yǎng)過程中的膜污染等問題,盡早實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)。由于微生物高密度培養(yǎng)的巨大優(yōu)勢,高密度培養(yǎng)技術(shù)在食品、藥品、微生物采油領(lǐng)域的應(yīng)用將越來越廣泛。
[1] 劉子宇,李平蘭,鄭海濤,等.微生物高密度培養(yǎng)的研究進展[J].中國乳業(yè),2005(12):47-51.
[2] KIM M,JANG I C,KIM J A,et al.Embryogenesis and plantregeneration of hot pepper(Capsicum annuum L.)through isolated microspore culture[J].Plant Cell Reports,2008,27(3): 425-434.
[3] 陳保立,王世立,韓金祥.重組大腸桿菌高密度培養(yǎng)的研究進展[J].中國生物制品學(xué)雜志,2009,22(11):1156-1159.
[4] KIM M S,NAM Y K,PARK C,et al.Establishment condition and characterization of heart-derived cell culture in Siberian sturgeon(Acipenser baerii)[J].In vitro Cell Develop Biol Anim,2014,50(10):909-917.
[5] 郭漢卿,王雪梅,熊曉輝,等.瓊氏不動桿菌5-6高密度發(fā)酵培養(yǎng)基優(yōu)化[J].科學(xué)技術(shù)與工程,2014,14(29):121-124.
[6] POSADA-URIBE L F,ROMERO-TABAREZ M,VILLEGASESCOBAR V.Effect of medium components and culture conditions in Bacillus subtilis EA-CB0575 spore production[J].Bioproc Biosys Eng,2015,38(10):1879-1888.
[7] FEI Q,WEWETZER S J,KUROSAWA K,et al.High-cell-density cultivation of an engineered Rhodococcus opacus strain for lipid production via co-fermentation of glucose and xylose[J].Process Biochem,2015,50(4):500-506.
[8] KUROSAWA K,BOCCAZZI P,de ALMEIDA N M,et al.Highcell-density batch fermentation of Rhodococcus opacus PD630 using a high glucose concentration for triacylglycerol production[J].J Biotechnol,2010,147(3/4):212-8.
[9] 臧超群,安福濤,劉長遠,等.生防細菌SY286發(fā)酵條件優(yōu)化[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2015(25):157-163.
[10] 王西祥,丁延芹,杜秉海,等.響應(yīng)面法優(yōu)化枯草芽孢桿菌NS178產(chǎn)芽孢發(fā)酵工藝[J].山東農(nóng)業(yè)科學(xué),2015(4):59-65.
[11] 周斌,程詠梅,鄧超,等.黃桿菌肝素酶Ⅱ重組菌培養(yǎng)條件的優(yōu)化及高密度發(fā)酵[J].生物工程學(xué)報,2014,30(4):674-678.
[12] JALLOULIiW,JAOUAS,ZOUARIN.Improvementof Photorhabdus temperata strain K122 bioinsecticide production by batch and fed-batch fermentations optimization[J].Bioproc Biosyst Eng,2012,35(9):1505-1513.
[13] ZHU B F,XU Y.Production of tetramethylpyrazine by batch culture of Bacillus subtilis with optimal pH control strategy[J].J Ind Microbiol Biotechnol,2010,37(8):815-821.
[14] SALEHMIN M N I,ANNUAR M S M,CHISTI Y.High cell density fed-batch fermentations for lipase production:feeding strategies and oxygen transfer[J].Bioproc Biosyst Eng,2013,36(11):1527-1543.
[15] LAU J,TRAN C,LICARI P,et al.Development of a high celldensity fed-batch bioprocess for the heterologous production of 6-deoxyerythronolide B in Escherichia coli[J].J Biotechnol,2004,110(1):95-103.
[16] KIM B S,LEE S C,LEE S Y,et al.High cell density fed-batch cultivation of Escherichia coli using exponential feeding combined with pH-stat[J].Bioproc Biosys Eng,2004,26(3):147-50.
[17] YANO T,KUROKAWA M,NISHIZAWA Y.Optimum substrate feed rate in fed-batch culture with the DO-stat method[J].J Ferment Bioeng,1991,71(5):345-349.
[18] SOHONI S V,NELAPATI D,SATHE S,et al.Optimization of high celldensityfermentationprocessforrecombinantnitrilase production in E.coli[J].Bioresour Technol,2015,188:202-208.
[19] LIU J F,ZHANG Z J,LIA T,et al.Significantly enhanced production of recombinant nitrilase by optimization of culture conditions and glycerol feeding[J].Appl Microbiol Biotechnol,2011,89(3):665-72.
[20] CHOI J H,KEUM K C,SANG Y L.Production of recombinant proteins by high cell density culture of Escherichia coli[J].Chem Eng Sci,2006,61(3):876-885.
[21] 羅林,康瑞娟,馬曉楠,等.氧化亞鐵硫桿菌在氣升式反應(yīng)器中培養(yǎng)條件對其生長特性的影響[J].過程工程學(xué)報,2001,1(4):365-368.
[22] Ca′RCAMO,M,SAA P A,TORRES J,et al.Effective dissolved oxygen control strategy for high-cell-density cultures[J].IEEE Latin Am Transac,2014,12(3):389-394.
[23] MATSUI T,SHINZATO N,YOKOTA H,et al.High cell density cultivation of recombinant E.coli with a pressurized culture[J].J Biotechnol,2006,41(4):920-924.
[24] 張鋒,王期,李桂蘭等.溶氧反饋分批補料高密度培養(yǎng)枯草桿菌谷氨酰胺合成酶工程菌[J].南京師大學(xué)報(自然科學(xué)版),2010,33(2):96-103.
[25] LULI G W,STROHL W R.Comparison of growth,acetate production,and acetate inhibition of Escherichia coli strains in batch and fed-batch fermentations[J].Appl Environ Microbiol,1990,56(4):1004-1011.
[26] AKESSON M,HAGANDER P,AXELSSON J P.Avoiding acetate accumulation in Escherichia coli cultures using feedback control of glucose feeding[J].Biotechnol Bioen,2001,73(3):223-230.
[27] HEWITT C J,NEBE-VON CARON G,AXELSSON B,et al. Studies related to the scale-up of high-cell-density E.coli fedbatch fermentations using multiparameter flow cytometry:effect of a changingmicroenvironmentwithrespecttoglucoseand dissolved oxygen concentration[J].Biotechnol Bioeng,2000,70(4):381-390.
[28] XU B,JAHIC M,ENFORS S O.Modeling of overflow metabolism in batch and fed-batch cultures of Escherichia coli[J].Biotechnol Progr,1999,15(1):81-90.
[29] GEORGE S,LARSSON G,ENFORS S O.A scale-down twocompartmentreactorwithcontrolledsubstrateoscillations: metabolic response of Saccharomyces cerevisiae[J].Bioproc Biosyst Eng,1993,9(6):249-257.
[30] JOBE A M,HERWIG C,SURZYN M,et al.Generally applicable fed-batch culture concept based on the detection of metabolic state by on-line balancing[J].Biotechnol Bioeng,2003,82(6): 627-639.
[31] PANDA A K,KHAN R H,RAO K B,et al.Kinetics of inclusion body production in batch and high cell density fed-batch culture of Escherichia coli expressing ovine growth hormone[J].J Biotechnol,1999,75(2/3):161-172.
[32] HELLMUTH K,KORZ D J,SANDERS E A,et al.Effect of growth rate on stability and gene expression of recombinant plasmidsduring continuous and high cell density cultivation of Escherichia coli TG1[J].J Biotechnol,1994,32(3):289-298.
[33] ARNDT M,HITZMANN B.Kalman filter based glucose control at small set points during fed-batch cultivation of Saccharomyces cerevisiae[J].Biotechnol Progr,2004,20(1):377-383.
[34] LI Y,CHEN J,MAO Y,et al.Effect of additives and fed-batch culture strategies on the production of glutathione by recombinant Escherichia coli[J].Process Biochem,1998,33(98):709-714.
[35] 閔偉紅,崔學(xué)祥,方麗,等.堿性中和與補料分批高密度培養(yǎng)保加利亞乳桿菌的研究[J].食品科學(xué),2009,30(1):217-221.
[36] BRUNEL L,NEUGNOT V,LANDUCCI L,et al.High-level expression of Candida parapsilosis lipase/acyltransferase in Pichia pastoris[J].J Biotechnol,2004,111(1):41-50.
[37] 魯明波,紀磊,劉永勝,等.基于動力學(xué)模型的法夫酵母發(fā)酵生產(chǎn)蝦青素的補料策略優(yōu)化[J].生物工程學(xué)報,2008,24(11):1937-1942.
[38] SHIN H S,LIM H C.Cell-mass maximization in fed-batch cultures[J].Bioproc Biosyst Eng,2006,29(5/6):335-347.
[39] LIANG G B,DU G C,CHEN J.A novel strategy of enhanced glutathione production in high cell density cultivation of Candida utilis:cysteineadditioncombinedwithdissolvedoxygen controlling[J].Enzyme Microb Technol,2008,42(3):284-289.
[40] KORZ D J,RINAS U,HELLMUTH K,et al.Simple fed-batch technique for high cell density cultivation of Escherichia coli[J]. J Biotechnol,1995,39(1):59-65.
[41] 謝婷,劉飛,李敏,等.指數(shù)補料發(fā)酵提高魯氏酵母β-1,3-葡聚糖酶產(chǎn)量[J].現(xiàn)代食品科技,2015(6):205-210.
[42] 李寅,高海軍,陳堅.高細胞密度發(fā)酵技術(shù)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2006.
[43] 李佳偉,劉龍,李江華,等.兩階段攪拌轉(zhuǎn)速控制策略發(fā)酵生產(chǎn)檸檬酸[J].食品與生物技術(shù)學(xué)報,2014,33(2):131-136.
[44] CHISTI Y.Encyclopedia of bioprocess technology:fermentation,biocatalysis,and bioseparation[J].Biotechnol Adv,1999,17(8): 689-690.
[45] NICOLELLA C,LOOSDRECHT M C M V,HEIJNEN J J. ChemInformabstract:wastewatertreatmentwithparticulate biofilm reactors[J].Cheminform,2000,31(36):1-33.
[46] CHISTI Y.Pneumatically agitated bioreactors in industrial and environmentalbioprocessing:hydrodynamics,hydraulics,and transport phenomena[J].Appl Mech Rev,1998,51(1):33.
[47] 鄭裕國.甘薯原料氣升式生物反應(yīng)器發(fā)酵生產(chǎn)單細胞蛋白[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報,1999(1):223-226.
[48] INLOES D S,TAYLOR D P,COHEN S N,et al.Ethanol production by Saccharomyces cerevisiae immobilized in hollowfiber membrane bioreactors[J].Appl Environ Microbiol,1983,46(1):264-278.
[49] DOUGLAS S I,SMITH W J,DEAN P T,et al.Hollow-fiber membrane bioreactors using immobilized E.coli for protein synthesis[J].Biotechnol Bioeng,1983,25(11):2653-2681.
[50] 戚薇,劉馨磊,王建玲,等.中空纖維膜過濾法高密度培養(yǎng)凝結(jié)芽孢桿菌TQ33[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2003(4):15-18.
[51] TASHIRO Y,TAKEDA K,KOBAYASHI G,et al.High production of acetone-butanol-ethanol with high cell density culture by cellrecycling and bleeding[J].J Biotechnol,2005,120(2):197-206.
[52] CHANG H N,KIM N J,KANG J,et al.Multi-stage high cell continuous fermentation for high productivity and titer[J].Bioproc Biosyst Eng,2010,34(4):419-431.
(責(zé)任編輯 管珺)
Strategy of high cell-density culture of microorganisms
ZUO Xiaoxiao1,LU Lixia1,2,LI Yi1,2,XIONG Xiaohui1,2
(1.College of Food Science and Light Industry,Nanjing Tech University,Nanjing 211800,China;2.Jiangsu Public Technical Service Center for Rapid Detection of Food Safety,Nanjing 211800,China)
High cell-density culture could shorten total production period,increase productivity and decrease cost.It has been currently a hot issue in research of fermentation engineering.In this review,we summarized the strategies of nutrients,feeding,environmental factors,bioreactor,metabolic regulation to analyze how to improve high cell-density culture.We also demonstrate that high cell-density fermentation can become more effective by considering multiple factors in process design and implementation,such as microbial strains,their metabolic characteristics and nutritional requirements.
High cell-density culture;bioreactor;metabolic regulation
TQ920.1
A
1672-3678(2016)03-0081-06
10.3969/j.issn.1672-3678.2016.03.015
2016-03-09
國家高技術(shù)研究發(fā)展計劃(863計劃)(2013AA064402)
左肖肖(1991—),女,江蘇邳州人,研究方向:發(fā)酵工程;陸利霞(聯(lián)系人),副教授,E-mail:lixialu@njtech.edu.cn