孫 珍, 劉雅文, 王 迪, 孫玉梅
大連工業(yè)大學 生物工程學院, 遼寧 大連 116034
對產(chǎn)胞內(nèi)脂肪酶的發(fā)酵性絲孢酵母超聲波透性化處理的條件優(yōu)化
孫珍,劉雅文,王迪,孫玉梅*
大連工業(yè)大學 生物工程學院, 遼寧 大連 116034
摘要:發(fā)酵性絲孢酵母產(chǎn)胞內(nèi)脂肪酶,為了把細胞整體作為脂肪酶催化劑,需對細胞進行透性化處理。利用超聲波進行細胞透性化的適宜條件為:超聲波輸出功率180 W,每次輻射時間2 s(間歇時間5 s),工作總時間1.2 min,菌體濃度40 g/L,此條件下細胞通透性可明顯改善,透性化細胞脂肪酶表現(xiàn)出較高活力。
關(guān)鍵詞:發(fā)酵性絲孢酵母; 脂肪酶; 超聲波; 細胞透性
脂肪酶是重要的工業(yè)酶制劑品種之一,能夠在非水相系統(tǒng)中催化酯化、轉(zhuǎn)酯、醇解和胺解等反應,催化效率高而副反應少,反應安全無毒,不需要輔助因子,這些優(yōu)點使得脂肪酶被廣泛應用在油脂加工、食品、醫(yī)藥、日化等領(lǐng)域[1-4]。發(fā)酵性絲孢酵母常用于發(fā)酵產(chǎn)油脂研究[5],其胞內(nèi)產(chǎn)脂肪酶。細胞透性化技術(shù)是指不造成細胞裂解,在不破壞細胞內(nèi)部有機結(jié)構(gòu)的情況下改變細胞膜的通透性,使小分子量物質(zhì)和一些較大分子物質(zhì)能夠自由進出細胞的技術(shù)。經(jīng)過透性化處理的細胞稱為透性化細胞,其在保持細胞整體結(jié)構(gòu)完整的情況下提高了細胞的通透性,從而可使胞內(nèi)酶在原位較好地發(fā)揮催化作用,又因胞內(nèi)酶有一定保護作用,可延長酶的使用壽命[6,7]。細胞透性化處理包括化學法,生物法和物理法。
為了使發(fā)酵性絲孢酵母的胞內(nèi)脂肪酶在不提取的情況下直接催化轉(zhuǎn)酯化反應,我們使用物理法中的超聲法對細胞進行透性化處理,以脂肪酶活力為考察指標,應用單因素實驗以及正交實驗進行透性化處理條件的優(yōu)化。
1材料與方法
1.1材料與儀器
722-型分光光度計,上海精密科學儀器有限公司; PHS-3C精密pH計,上海雷磁儀器廠;78-1型磁力加熱攪拌器,江蘇金壇國華儀器廠;超聲波破碎儀(JY99-2D),寧波新芝科器研究所。
實驗用發(fā)酵性絲孢酵母菌種(CICC1368)來自中國食品發(fā)酵工業(yè)研究院。
1.2試驗方法
1.2.1培養(yǎng)基配制
1.2.1.1固體斜面培養(yǎng)基(g/L)
葡萄糖20,酵母浸粉10,蛋白胨10,瓊脂20,pH自然。于0.1 MPa滅菌15 min。
1.2.1.2種子培養(yǎng)基(g/L)
葡萄糖100,蛋白胨5.3,酵母浸粉2,尿素2,MgSO4·7H2O 0.5,pH自然。除尿素外的其余成分于0.08 MPa 滅菌20 min,尿素在0.05 MPa 滅菌15 min。
1.2.1.3發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L)
葡萄糖100,蛋白胨1.8,酵母浸粉0.5,KH2PO42,植物油8.5,吐溫-80 4.6,pH自然。于0.08 MPa 滅菌20 min。
1.2.2細胞的培養(yǎng)與處理
將4℃保存的菌種接種于固體斜面培養(yǎng)基上,于30 ℃培養(yǎng)48 h。取兩環(huán)斜面培養(yǎng)的菌絲接入種子培養(yǎng)基中,于30 ℃、160 r/min 搖床培養(yǎng)24 h。向發(fā)酵培養(yǎng)基中接入10% (v/v)的液體種子,于30 ℃、160 r/min搖床發(fā)酵60 h,所得發(fā)酵液于4 ℃、10 000 r/min離心10 min,收集菌體,用0.067 mol/L、pH 6.8的磷酸鹽緩沖液洗滌菌體3次,離心收集菌體。
1.2.3超聲波法細胞透性化條件的研究
1.2.3.1透性化細胞的制備
按“1.2.2”所述方法,收集菌體,再與磷酸鹽緩沖液混合,制得20 g/L的菌懸液。于冰水浴中,在設(shè)定條件下進行超聲處理,溫度設(shè)置4 ℃,10 000 r/min離心10 min,收集上清液。用磷酸鹽緩沖液洗滌菌體沉淀2次,即為透性化細胞。
1.2.3.2超聲波輸出功率對細胞透性化的影響
設(shè)置超聲波輻射時間為2 s、間隙時間為5 s、工作總時間為2 min,考察超聲波輸出功率分別為80 W、120 W、160 W、200 W和240 W的條件下進行透性化處理的效果。離心洗滌后得到上清液和透性化細胞,分別測定上清液和透性化細胞脂肪酶活力。
1.2.3.3超聲波每次輻射時間對細胞透性化的影響
設(shè)置超聲波輸出功率為160 W、間隙時間為5 s,工作總時間為2 min,考察超聲輻射時間分別為1 s、1.5 s、2 s、2.5 s和3 s的條件下進行透性化處理的效果。離心洗滌后得到上清液和透性化細胞,分別測定上清液和透性化細胞脂肪酶活力。
1.2.3.4超聲波工作總時間對細胞透性化的影響
設(shè)置超聲波輸出功率為160 W、超聲波每次輻射時間為2 s,間隙時間為5 s,考察超聲工作總時間分別為0.2 min、0.5 min、1 min、2 min和3 min的條件下進行透性化處理的效果,離心洗滌后得到上清液和透性化細胞,分別測定上清液和透性化細胞脂肪酶活力。
1.2.3.5菌體濃度對細胞透性化的影響
按“1.2.2”所述方法,稱取5份不同克數(shù)的菌體分別與25 mL磷酸鹽緩沖液混合,制成菌體濃度為20 g/L、25 g/L、30 g/L、50 g/L和100 g/L的菌懸液,置于冰水浴中,在超聲輸出功率為160 W、輻射時間為2 s,間隙時間為5 s,工作總時間為1 min的條件下進行透性化處理,離心洗滌后得到上清液和透性化細胞,分別測定上清液和透性化細胞脂肪酶活力。
1.2.3.6細胞透性化正交試驗
在單因素試驗的基礎(chǔ)上,以透性化細胞脂肪酶活性大小為考察指標,采用L9(34)正交表,進行4因素3水平的正交試驗[8]。
1.2.4測定方法
1.2.4.1脂肪酶活力測定
(1) 反應底物(PVA)的制備:40 g聚乙烯醇(PVA)加熱溶解在800 mL水中,冷卻后定容至1 000 mL。用干凈的雙層紗布過濾。量取上述濾液150 mL,加入50 mL橄欖油,用高速勻漿機處理6 min(分兩次處理,間隔5 min,每次3 min),即得乳白色PVA乳化液。該溶液現(xiàn)用現(xiàn)配[9]。
(2) 脂肪酶活力測定:采用酸堿滴定法定量測定。取兩個100 mL三角瓶,分別于空白瓶(A)和樣品瓶(B)中加入4 mL PVA橄欖油乳化液和5 mL磷酸鹽緩沖液(0.067 mol/L,pH 6.8),再于A瓶中加入95%乙醇15 mL,于38 ℃水浴中預熱5 min,然后于A、B瓶中各加入1 mL待測酶液,立即混勻,反應10 min,于B瓶中加15 mL 95%乙醇終止反應。于空白和樣品溶液中各加兩滴酚酞指示劑,用0.01 mol/L NaOH溶液滴定水解產(chǎn)生的脂肪酸[10]。
(3) 脂肪酶活力定義:在38 ℃、pH 6.8的反應條件下,將每分鐘脂肪酶催化橄欖油水解產(chǎn)生1 μmol脂肪酸所需酶量,即被定義為一個脂肪酶活力單位[11]。
2結(jié)果與討論
2.1細胞透性化單因素試驗
2.1.1超聲波輸出功率對細胞透性化的影響
如圖1可見,超聲波輸出功率對細胞透性化的影響較大。隨著輸出功率的增加,透性化細胞脂肪酶活力先升高后降低,在160 W達到極大值。輸出功率反映了超聲波能量的大小,輸出功率的增加,有利于改善細胞通透性;但是輸出功率過大,則會引起細胞破碎,導致細胞內(nèi)脂肪酶釋放到胞外,從而降低了透性化細胞的脂肪酶活力[12]。因此,選定超聲波透性化的輸出功率為160 W。
圖1 超聲波輸出功率對透性化細胞脂肪
2.1.2超聲波每次輻射時間對細胞透性化的影響
如圖2所示,透性化細胞脂肪酶活性隨每次輻射時間的增加呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢,每次輻射時間為2 s的透性化效果最好。每次輻射時間太短,空化效應起不到透性化作用;但輻射時間過長,空化效應增加細胞破碎,使細胞內(nèi)的脂肪酶釋放到胞外,降低了透性化細胞的脂肪酶活力[13]。因此,選定超聲波透性化的每次輻射時間為2 s。
圖2 超聲波每次輻射時間對透性化細胞脂肪
2.1.3超聲波工作總時間對細胞透性化的影響
由圖3可見,透性化細胞脂肪酶活性隨工作總時間的增加而增加,工作總時間為1 min的脂肪酶表現(xiàn)出最大活力,透性化效果最好。進一步提高工作總時間,透性化細胞脂肪酶活力則顯著下降[12]。因此,選定超聲波透性化的工作總時間為1 min。
2.1.4菌體濃度對細胞透性化的影響
由圖4可知,透性化細胞脂肪酶活性隨菌體濃度的增加先升高后降低,菌體濃度為50 g/L的酶活力最大。這是因為菌體濃度較低時,總蛋白量較小,并且超聲波在水中傳遞的損失較大,透性化效果相應較差;菌體濃度的提高使液體總蛋白質(zhì)的量增大,在超聲波作用后透性化細胞蛋白質(zhì)的量也就增大。但菌液濃度過高時,液體粘稠度的增加,不利于空化作用,導致透性化效果較差[14]。因此,選定超聲波透性化的菌體濃度為50 g/L。
圖3 超聲波工作總時間對透性化細胞脂肪
圖4 菌體濃度對透性化細胞脂肪酶活性的影響
2.2細胞透性化正交試驗結(jié)果
2.2.1細胞透性化正交試驗
在單因素試驗的基礎(chǔ)上,以透性化細胞脂肪酶活性大小為考察指標,采用L9(34)正交表,進行4因素3水平的正交試驗。試驗設(shè)計見表1,正交試驗設(shè)計與結(jié)果見表2。
對試驗結(jié)果進行數(shù)據(jù)分析,根據(jù)表3的方差分析可以看出,C的平方和非常小,則用其作為誤差估計項。在所設(shè)計的水平范圍內(nèi),A和B對透性化細胞酶活有顯著的影響(p < 0.05)。各因素對酶活的影響程度依次為D > A > B > C,綜合表2的K值并直接比較可知,最佳工藝參數(shù)為D3A3B2C3,即菌體濃度為40 g/L,超聲波輸出功率為180 W,每次輻射時間2 s(間歇時間5 s),工作總時間1.2 min時透性化效果最好。
表1 細胞透性化L9(34)正交因素設(shè)計水平表
表2 細胞透性化正交試驗的設(shè)計與結(jié)果
表3 細胞透性化正交試驗的方差分析
2.2.1細胞透性化驗證試驗
按正交試驗確定的最佳透性化條件D3A3B2C3,以透性化細胞脂肪酶活性為指標,進行驗證試驗。在此最優(yōu)條件下三次測得酶活的平均值為30.12 U/g,高于正交試驗結(jié)果的最大值,因此認為正交試驗得出的最優(yōu)水平是可靠的。在這里要說明一下,因為單因素試驗和正交試驗所用非同一批次細胞,不同批次細胞的生長狀態(tài)存在差異,因此細胞經(jīng)透性化處理后的脂肪酶活力也會有差異,從而導致單因素試驗中透性化細胞的脂肪酶活力較正交試驗的還要高的現(xiàn)象。
3結(jié)論
發(fā)酵性絲孢酵母產(chǎn)胞內(nèi)脂肪酶,本實驗利用超聲波技術(shù)對細胞進行透性化處理,通過單因素實驗以及正交實驗確定了利用超聲波進行細胞透性化的適宜條件為:超聲波輸出功率180 W,每次輻射時間2 s(間歇時間5 s),工作總時間1.2 min,菌體濃度40 g/L,在上述工藝條件下可以使發(fā)酵性絲孢酵母透性化并使其中的脂肪酶活力較高。
參考文獻
[1]Trimukhe KD, Mahadik ND, Gokhale DV,etal. Environment friendly crosslinked chitosan as a matrix for selective adsorption and purification of lipase ofAspergillusniger[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2008, 43(5): 422-425.
[2]Bussamara R, Fuentefria AM, Oliveira ES,etal. Isolation of a lipase-secreting yeast for enzyme production in a pilot-plant scale batch fermentation[J]. Bioresource Technology, 2010, 101(1): 268-275.
[3]Wang X, Yu XW, Xu Y. Homologous expression, purification and characterization of a novel high-alkaline and thermal stable lipase fromBurkholderiacepaciaATCC 25416[J]. Enzyme and Microbial Technology, 2009, 45(2): 94-102.
[4]Demir BS., Tükel SS. Purification and characterization of lipase fromSpirulinaplatensis[J]. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 2010, 64(s 3-4): 123-128.
[5]王莉,孫玉梅,劉英新等.發(fā)酵性絲孢酵母(Trichosporonfermentans)發(fā)酵產(chǎn)油脂的研究[J]. 工業(yè)微生物,2007,37(1):39-42.
[6]王舒,毛相朝,張魯嘉等.應用細胞透性化技術(shù)快速提取氧化葡萄糖桿菌胞內(nèi)右旋糖酐糊精酶[J].生物加工過程, 2010, 8(3): 35-39.
[7]周帥,王鳳山.細胞透性化技術(shù)及其應用[J].生命的化學, 2008, 28(4): 481-484.
[8]張荊,童群義.超聲波破碎提取D-甘露糖異構(gòu)酶條件的研究[J].食品工業(yè)科技, 2009, 30(10): 247-249.
[10]Sundaram J, Mellein BR, Mitragotri S. An experimental and theoretical analysis of ultrasound-induced permeabilization of cell membranes[J]. Biophysical Journal, 2003, 84(5): 3087-3101.
[11]中國輕工業(yè)聯(lián)合會. GB/T 23535-2009.脂肪酶制劑.北京:張蔚等, 2009-04-27 發(fā)布.
[12]姚詠嫦.插入式超聲對酵母細胞膜通透性影響的研究[J].廣東化工, 2006, 33(1): 42-44.
[13]盧群,劉曉艷,丘泰球等.超聲對酵母細胞膜通透性的影響[J].食品與發(fā)酵工業(yè), 2005, 31 (9): 14-17.
[14]Gaete-Garretón L, Vargas-Hernández Y, Cares-Pacheco MG,etal. Ultrasonically enhanced extraction of bioactive principles from Quillaja Saponaria Molina[J]. Ultrasonics, 2011, 51(5): 581-585.
Optimization of conditions of ultrasonic permeabilization for intracellular lipase-producingTrichosporonfermentans
SUN Zhen, LIU Ya-wen, WANG Di, SUN Yu-mei
School of Biological Engineering, Dalian Polytechnic University, Dalian 116034, China
AbstractThe lipase from Trichosporon fermentans was intracellular enzyme. The permeability of Trichosporon fermentans cell was improved by treating cells with ultrasonication. The intracellular lipase activity after permeabilization was enhanced under the optimal treating conditions: output power 180 W, irradiation duration 2 s per each time (with a 5 s interval), total irradiation time 1.2 min, cell concentration 40 g/L.
Key wordsTrichosporon fermentans; lipase; ultrasonication; cell permeabilization
基金項目:國家自然科學基金(31401681),遼寧省教育廳科學研究一般項目(L2015049)。
作者簡介:孫珍(1986~),女,博士,講師。E-mail: sunzhen@dlpu.edu.cn。 *通訊作者:孫玉梅(1962~),女,博士,教授。電話:0411-86318692,E-mail: sunyumei62@163.com。