李海云，袁志林，李子院，阮貴華，郝再彬，，韓衛(wèi)東（1.桂林理工大學(xué)廣西礦冶與環(huán)境科學(xué)實(shí)驗(yàn)中心，廣西桂林541004；.桂林理工大學(xué)化學(xué)與生物工程學(xué)院，廣西桂林541004；.廣西壯藥產(chǎn)業(yè)化工程院，廣西柳州54500）

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培養(yǎng)條件對(duì)八角內(nèi)生真菌發(fā)酵液抗氧化活性的影響

李海云1，2，袁志林2，李子院2，阮貴華2，郝再彬2，3，韓衛(wèi)東3
（1.桂林理工大學(xué)廣西礦冶與環(huán)境科學(xué)實(shí)驗(yàn)中心，廣西桂林541004；2.桂林理工大學(xué)化學(xué)與生物工程學(xué)院，廣西桂林541004；3.廣西壯藥產(chǎn)業(yè)化工程院，廣西柳州545200）

摘要：對(duì)八角內(nèi)生真菌Chaetomiumglobosum BJEF13產(chǎn)抗氧化活性物質(zhì)的培養(yǎng)條件進(jìn)行了研究。在篩選確定基礎(chǔ)培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上，采用單因素試驗(yàn)方法考察了培養(yǎng)基組成及搖瓶發(fā)酵條件對(duì)菌株發(fā)酵液抗氧化活性、菌株生長的影響。基礎(chǔ)培養(yǎng)基的篩選結(jié)果表明，馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基、察氏培養(yǎng)基、馬丁培養(yǎng)基、豆芽汁蔗糖培養(yǎng)基等4種常用真菌培養(yǎng)基中，察氏培養(yǎng)基優(yōu)于其他3種。培養(yǎng)基組成和發(fā)酵條件的研究結(jié)果表明，當(dāng)以4 %葡萄糖、0.4 %的蛋白胨、0.1 %K2HPO4、0.05 %KCl、0.05 %MgSO4和0.001 %FeSO4作為搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基時(shí)，接種量為10 %，裝液量為100 mL/250 mL，在初始pH 為7.5、28℃、150 r/min條件下振蕩培養(yǎng)7 d，該菌株的生長和培養(yǎng)液的抗氧化活性可以達(dá)到較好的水平，其生物量平均干重達(dá)0.6826g/100mL，5倍稀釋的乙酸乙酯萃取液對(duì)DPPH自由基的清除率可達(dá)57.51%。

關(guān)鍵詞：內(nèi)生真菌；球毛殼菌；八角；抗氧化；培養(yǎng)條件

內(nèi)生菌是指一類在其部分或全部生活史中存活于健康植物組織內(nèi)部，而不使宿主植物表現(xiàn)出明顯感染癥狀的微生物[1]，是具有新活性或新結(jié)構(gòu)的天然物質(zhì)的潛在資源庫，在生物制藥、農(nóng)業(yè)生產(chǎn)及發(fā)酵工業(yè)等領(lǐng)域的應(yīng)用前景非常廣闊[2-3]。目前，已在鹽生海蘆筍[4]、蒺藜[5]、銀杏[6]、木豆[7]及其他藥用植物[8]中分離出可產(chǎn)抗氧化活性物質(zhì)的內(nèi)生菌。

球毛殼菌Chaetomium globosum是子囊菌中毛殼菌屬的模式種[9]，廣泛分布于自然界中，具有產(chǎn)纖維素酶、分解纖維素的能力，在植物病害生物防治的研究和應(yīng)用上也占有比較重要的地位[10]。研究表明，球毛殼菌也是一種較常見的植物內(nèi)生真菌，目前已從多種植物中分離出活性各異的內(nèi)生球毛殼菌，如鳶尾[11]、美登木[12-13]、油菜[14]、杜仲[15-16]、青檀[17]等。本課題組前期從八角內(nèi)生真菌中分離獲得一株抗氧化活性較強(qiáng)的菌株BJEF13[18]，經(jīng)鑒定為Chaetomium globosum。本文對(duì)該菌株產(chǎn)抗氧化活性物質(zhì)的培養(yǎng)條件進(jìn)行研究，初步獲得該菌株的較優(yōu)培養(yǎng)工藝條件，為后續(xù)研究奠定基礎(chǔ)。

1材料與方法

1.1材料

1.1.1菌株

內(nèi)生真菌Chaetomium globosum BJEF13：分離自八角枝，2009年4月采自南寧高峰林場(chǎng)。

1.1.2培養(yǎng)基

斜面及平板培養(yǎng)基：馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基（PDA：馬鈴薯200g，葡萄糖20g，瓊脂20g，水1000mL，pH自然）。

液體培養(yǎng)基：馬鈴薯葡萄糖液體培養(yǎng)基（PD：馬鈴薯200 g，葡萄糖20 g，水1 000 mL，pH自然）；察氏培養(yǎng)基（Czapek：NaNO30.2 %，K2HPO40.1 %，KCl 0.05 %，MgSO40.05 %，F(xiàn)eSO40. 001 %，蔗糖3 %，水1 000 mL，自然pH）；馬丁培養(yǎng)基（Martin：葡萄糖10 g，蛋白胨5 g，磷酸二氫鉀1 g，七水合硫酸鎂0.5 g，蒸餾水1 000 mL，pH自然）；豆芽汁蔗糖培養(yǎng)基（BSS：黃豆芽100 g、蔗糖50 g、水1 000 mL、pH自然）。

1.1.3試劑

1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（DPPH）、K2HPO4、KCl、MgSO4、蔗糖、葡萄糖、瓊脂等，所用試劑均為分析純，所用水均為二次蒸餾水。

1.1.4儀器

YXQ.SG41.280B手提式壓力蒸汽滅菌器：上海華線醫(yī)用核子儀器有限公司；BS223S型電子天平：賽多利斯科學(xué)儀器有限公司；SW-CF-ZF型超凈工作臺(tái)：蘇凈集團(tuán)安泰公司；LRH-150-Z型振蕩培養(yǎng)箱：廣東省醫(yī)療器械廠；SPX-250B型生化培養(yǎng)箱：上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠；DL-5-B型離心機(jī)：上海安亭科學(xué)儀器廠；TU-1901紫外可見分光光度計(jì)：北京普析通用儀器有限責(zé)任公司等。

1.2方法

1.2.1菌株的培養(yǎng)及孢子懸液的制備

從內(nèi)生真菌Chaetomium globosum BJEF13保存斜面中挑取少量菌絲點(diǎn)種于PDA固體培養(yǎng)基上，置于28℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 d，轉(zhuǎn)接PDA試管斜面，同法培養(yǎng)。

取培養(yǎng)7 d的Chaetomium globosum BJEF13菌株斜面數(shù)支，分別加入5mL無菌水，用接種環(huán)將孢子輕輕刮下，置于已滅菌的250 mL三角瓶內(nèi)，瓶中預(yù)先放置數(shù)粒玻璃珠，充分振搖后，用無菌脫脂棉過濾，采用血球計(jì)數(shù)法計(jì)數(shù)并調(diào)節(jié)孢子濃度為106cfu/mL~108cfu/mL，得孢子懸浮液，置4℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2基礎(chǔ)培養(yǎng)基的篩選

以濃度為106cfu/mL~108cfu/mL孢子懸浮液作為接種液，按10 %接種量接種至盛有不同液體培養(yǎng)基（馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基PD、察氏培養(yǎng)基Czapek、馬丁培養(yǎng)基Martin和豆芽汁蔗糖培養(yǎng)基BSS）的250 mL三角瓶中，裝液量為100 mL。接種后，于28℃、150 r/min搖床培養(yǎng)。同時(shí)留取不接菌的液體培養(yǎng)基作陰性對(duì)照。培養(yǎng)7 d后，將Chaetomium globosum BJEF13菌株發(fā)酵液在4 500 r/min下離心20 min，分別收集上清液和菌體。

1.2.3培養(yǎng)基組成的影響

在前述所篩基礎(chǔ)培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上，分別考察碳源的種類及濃度、氮源的種類及濃度、無機(jī)鹽的用量等對(duì)Chaetomium globosum BJEF13菌體生長量和發(fā)酵液抗氧化活性的影響，確定培養(yǎng)基的組成。發(fā)酵條件為：初始pH7.0、發(fā)酵溫度28℃、接種量10%、裝液量100mL/ 250 mL、搖床轉(zhuǎn)速150 r/min、發(fā)酵時(shí)間7 d。

1.2.4發(fā)酵條件的影響

在確定培養(yǎng)基組成的基礎(chǔ)上，分別考察初始pH、發(fā)酵溫度、接種量、裝液量、搖床轉(zhuǎn)速、發(fā)酵時(shí)間等搖瓶發(fā)酵條件對(duì)Chaetomium globosum BJEF13菌體生長量和發(fā)酵液抗氧化活性的影響。

1.2.5抗氧化活性的測(cè)定

發(fā)酵上清液經(jīng)0.22 μm濾膜過濾，得發(fā)酵無菌濾液。為盡可能消除培養(yǎng)基成分差異對(duì)抗氧化活性測(cè)定的影響，吸取1 mL無菌濾液，加入5 mL乙酸乙酯進(jìn)行萃取，4 500 r/min下離心10 min以促進(jìn)分層，取上層乙酸乙酯萃取液進(jìn)行抗氧化活性測(cè)定。

以DPPH自由基清除性能作為抗氧化活性指標(biāo)，參照文獻(xiàn)[19]方法進(jìn)行測(cè)定：吸取0.1 mL發(fā)酵液乙酸乙酯萃取液，加入3.9 mL 1.0×10-4mol/L的DPPH溶液（乙醇為溶劑）。從加入DPPH溶液開始計(jì)時(shí)，室溫下避光放置90 min后，測(cè)定517 nm波長處吸光度，記為A1。另取0.1 mL乙酸乙酯代替乙酸乙酯萃取液同上操作，吸光度記為A0。按下式計(jì)算清除率：

1.2.6菌體生長量的測(cè)定

取發(fā)酵液離心后的沉淀（菌絲），用蒸餾水洗滌3次，置烘箱中80℃烘干至恒重后稱重，計(jì)算3次重復(fù)的平均值。

2結(jié)果與分析

2.1培養(yǎng)基對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

選擇馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基（PD）、察氏培養(yǎng)基（Czapek）、馬丁培養(yǎng)基（Martin）和豆芽汁蔗糖培養(yǎng)基（BSS）4種常見真菌培養(yǎng)基，考察了BJEF13在這4種培養(yǎng)基中的生長情況及產(chǎn)物的抗氧化活性，結(jié)果如圖1所示。

圖1不同培養(yǎng)基對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.1 Effect of different culture medium on DPPH·scavenging activity and the biomass of BJEF13

從菌體的生長情況看，菌株BJEF13在PD和Czapek兩種培養(yǎng)基中生長較好，經(jīng)過7 d的發(fā)酵培養(yǎng)，PD和Czapek兩種培養(yǎng)基培養(yǎng)物的菌絲干重分別為0.499 6 g/100 mL和0.501 4 g/100 mL。菌株BJEF13在Martin和BSS培養(yǎng)基中生長情況則略差，其菌絲干重分別只有0.464 5 g/100 mL和0.377 4 g/100 mL。從發(fā)酵產(chǎn)物對(duì)DPPH自由基的清除活性來看，Czapek培養(yǎng)基發(fā)酵液的活性最強(qiáng)，清除率可達(dá)33.95 %，而其余3種培養(yǎng)基發(fā)酵液的活性相差不大，清除率在23.12 % ~ 27.80 %之間。從菌體的生長情況和發(fā)酵液DPPH自由基清除活性綜合考慮，選擇Czapek培養(yǎng)基作為條件優(yōu)化的基礎(chǔ)培養(yǎng)基。

2.2碳源種類對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

在Czapek培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上，分別采用3 %葡萄糖、3 %可溶性淀粉、3 %麥芽糖、3 %乳糖、3 %果糖作為供試碳源代替原培養(yǎng)基中的蔗糖，其他組分不變，對(duì)菌株BJEF13進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng)，考察碳源種類對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生物量的影響，結(jié)果如圖2所示。

圖2不同碳源對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.2 Effect of different carbon source on DPPH·scavenging activity and biomass of BJEF13

由圖2可知，所選用的6種碳源中，葡糖糖和蔗糖較有利于菌株BJEF13的生長，平均干重分別可達(dá)0.507 8 g/100 mL和0.501 4 g/100 mL。DPPH自由基清除率結(jié)果表明，葡萄糖為碳源時(shí)，發(fā)酵液對(duì)DPPH自由基清除率最高（35.44 %），蔗糖和麥芽糖次之?？梢姡云咸烟菫樘荚醇扔欣诰闎JEF13的生長，又有利于代謝產(chǎn)生抗氧化活性物質(zhì)。因此選擇葡萄糖為碳源。

2.3氮源種類對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

分別以0.2 %的酵母膏、0.2 %牛肉膏、0.2 %蛋白胨、0.2 %尿素、0.2 %硫酸銨代替原培養(yǎng)基中的硝酸鈉作為供試氮源，以3 %葡萄糖為碳源，其余成分不變，對(duì)菌株BJEF13進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng)，考察不同氮源對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生物量的影響，結(jié)果如圖3所示。

圖3不同氮源對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.3 Effect of different nitrogen source on DPPH·scavenging activity and biomass of BJEF13

由圖3可知，酵母膏、牛肉膏和蛋白胨等有機(jī)氮源有利于菌體的生長和抗氧化活性物質(zhì)的合成，其中以蛋白胨作為氮源時(shí)，菌絲干重雖然略低于酵母膏，但其發(fā)酵液的DPPH自由基清除率卻最高。綜合考慮，選取蛋白胨作為氮源。

2.4碳源濃度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

在選擇葡萄糖為碳源的基礎(chǔ)上，考察不同濃度的葡萄糖對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響，結(jié)果如圖4所示。

圖4不同葡萄糖濃度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.4 Effect of different concentration of glucose on DPPH· scavenging activity and biomass of BJEF13

當(dāng)葡萄糖濃度為1 %~4 %時(shí)，生物量和DPPH自由基清除率均隨著葡萄糖濃度的變大而增大；葡萄糖濃度繼續(xù)增大時(shí)，菌體生物量略有增大，但DPPH自由基清除率反而下降。因此選擇4 %的葡萄糖濃度作為培養(yǎng)基碳源濃度。

2.5氮源濃度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

在選擇蛋白胨為氮源的基礎(chǔ)上，考察不同蛋白胨濃度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生物量的影響，結(jié)果如圖5所示。

圖5不同蛋白胨濃度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.5 Effect of different concentration of peptone on DPPH· scavenging activity and biomass of BJEF13

圖5結(jié)果表明，蛋白胨濃度在0.1 %~0.8 %范圍內(nèi)，生物量和DPPH自由基清除活性均隨蛋白胨濃度的增大而先增大后趨于穩(wěn)定。當(dāng)?shù)鞍纂藵舛葹?.4 %時(shí)，DPPH自由基清除率達(dá)最大（51.55 %）。因此，選擇0.4 %的蛋白胨濃度作為BJEF13發(fā)酵產(chǎn)抗氧化活性物質(zhì)的氮源。

2.6無機(jī)鹽濃度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

本試驗(yàn)按照察氏培養(yǎng)基無機(jī)鹽總濃度的倍數(shù)不添加或添加不同濃度（0.201 %、0.402 %、0.603 %、0.804 %、1.005 %）的無機(jī)鹽，以確定無機(jī)鹽濃度。結(jié)果見圖6。

圖6不同無機(jī)鹽濃度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.6 Effect of different concentration of salts on the biomass and DPPH·scavenging activity of BJEF13

圖6結(jié)果表明，當(dāng)不添加無機(jī)鹽時(shí)，BJEF13菌株的生長明顯受到影響，其菌絲干重只有0.472 1 g/100 mL；當(dāng)添加無機(jī)鹽總濃度為0.2 %時(shí)，菌絲干重達(dá)最大（0.651 6 g/100 mL）；繼續(xù)增大無機(jī)鹽用量，其對(duì)菌體的生長反而略有抑制。無機(jī)鹽對(duì)DPPH自由基清除活性影響與生物量類似。因此選擇原配方的無機(jī)鹽濃度，即0.1 %K2HPO4，0.05 %KCl，0.05 %MgSO4，0.001 %FeSO4（總濃度0.201 %）作為BJEF13發(fā)酵的無機(jī)鹽濃度。

2.7初始pH對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

液體培養(yǎng)基初始pH對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生物量的影響如圖7所示。

圖7初始pH對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.7 Effect of initial pH on DPPH·scavenging activity and biomass of BJEF13

由圖7可見，菌株生長及產(chǎn)抗氧化活性物質(zhì)的最適初始pH均為7.5。

2.8培養(yǎng)溫度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

液體培養(yǎng)基初始pH對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生物量的影響如圖8所示。

圖8培養(yǎng)溫度對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.8 Effect of culture temperature on DPPH·scavenging activity and biomass of BJEF13

圖8結(jié)果表明，當(dāng)培養(yǎng)溫度為28℃時(shí)，菌株生物量及發(fā)酵液抗氧化活性均可達(dá)最大值，因此選擇培養(yǎng)溫度為28℃。

2.9接種量對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

以BJEF13成熟孢子液作為種子液，不同接種量對(duì)菌體生物量和發(fā)酵液抗氧化活性的影響如圖9所示。

圖9接種量對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.9 Effect of inoculation amount on DPPH·scavenging activity and biomass of BJEF13

圖9結(jié)果表明，當(dāng)接種量低于10 %時(shí)，菌體生物量和發(fā)酵液抗氧化活性均隨接種量的增大而增大；當(dāng)接種量大于10 %時(shí)，隨著接種量的增大，菌體生物量變化不明顯，而抗氧化活性則逐漸降低。因此，選擇接種量為10 %為宜。

2.10裝液量和搖床轉(zhuǎn)速對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

分批培養(yǎng)中，裝液量和搖床轉(zhuǎn)速影響到發(fā)酵體系的供氧情況。在本體系中，在250 mL三角瓶中的裝液量及搖床轉(zhuǎn)速的影響分別如圖10、圖11所示。

由圖10、圖11可見，裝液量為100 mL/250 mL、搖床轉(zhuǎn)速為150 r/min時(shí)，最有利于菌體的生長及抗氧化活性物質(zhì)的合成。

圖10裝液量對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.10 Effect of liquid volume on DPPH·scavenging activity and biomass of BJEF13

圖11搖床轉(zhuǎn)速對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.11 Effect of shaking speed on DPPH·scavenging activity and biomass of BJEF13

2.11培養(yǎng)時(shí)間對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響

BJEF13菌株在不同培養(yǎng)時(shí)間下發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生物量量的變化如圖12所示。

圖12培養(yǎng)時(shí)間對(duì)BJEF13發(fā)酵產(chǎn)物抗氧化活性及菌體生長量的影響Fig.12 Effect of culture time on DPPH·scavenging activity and biomass of BJEF13

圖12結(jié)果表明，在7 d以內(nèi)，隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長，菌株的生物量及發(fā)酵液的抗氧化活性逐漸增大?？寡趸钚栽诘? d時(shí)達(dá)最大，而生物量則在7d~11 d達(dá)穩(wěn)定，其后開始減小。從抗氧化活性方面考慮，選擇培養(yǎng)時(shí)間為7 d。

3　結(jié)論

對(duì)前期所篩的一株八角內(nèi)生真菌Chaetomium globosum BJEF13發(fā)酵產(chǎn)抗氧化活性物質(zhì)的培養(yǎng)條件進(jìn)行了研究。單因素試驗(yàn)結(jié)果表明，碳源、氮源等培養(yǎng)基組分以及初始pH、溫度等發(fā)酵條件對(duì)該菌株產(chǎn)抗氧化活性物質(zhì)的影響較大。當(dāng)以4 %葡萄糖、0.4 %的蛋白胨、0.1 %K2HPO4、0.05 %KCl、0.05 %MgSO4和0.001 % FeSO4作為搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基時(shí)，接種量為10 %，裝液量為100 mL/250 mL，在初始pH為7.5、28℃、150 r/min條件下振蕩培養(yǎng)7 d，該菌株的生長和培養(yǎng)液的抗氧化活性可以達(dá)到較好的水平，其生物量平均干重達(dá)0.682 6 g/100 mL，5倍稀釋的乙酸乙酯萃取液對(duì)DPPH自由基的清除率可達(dá)57.51 %。

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Effect of Culture Conditions on Antioxidative Activity of Fermentation Broth of Endophytic Fungal Isolated from Illicium verum

LI Hai-yun1，2，YUAN Zhi-lin2，LI Zi-yuan2，RUAN Gui-hua2，HAO Zai-bin2，3，HAN Wei-dong3
（1. Guangxi Scientific Experiment Center of Minin，Metallurgy and Environment，Guilin University of Technology，Guilin 541004，Guangxi，China；2. College of Chemistry & Bioengineering，Guilin University of Technology，Guilin 541004，Guangxi，China；3. Guangxi Zhuang Medicine Industrial Engineering Institute，Liuzhou 545200，Guangxi，China）

Abstract：Influences of cultural conditions on the production of antioxidant materials by the endophytic fungal Chaetomium globosum BJEF13 isolated from Illicium verum were studied. After screening the basic culture medium，influences of compositions of the cultural medium and fermentation conditions to the dry weight of mycelia and DPPH·scavenging activity were investigated using single factor experiment. The basic culture medium screening results indicated that Czapek culture medium was more suitable for the strain than the other three media，the PD culture medium，Martin culture medium and BSS culture medium. The results of single factor experiments for components of Czapek culture medium indicated that the suitable cultural conditions for the mycelia growth and production of antioxidant materials were as followed：4 % glucose，0.4 % peptone，0.1 % K2HPO4，0.05 % KCl，0.05 % MgSO4，0.001 % FeSO4，initial pH 7.5，temperature 28℃，inoculation amount 10 %，liquid volume 100 mL/250 mL，shaking speed 150 r/min and cultural time 7 days. Under the suitable cultural conditions，the dry weight of mycelia and DPPH·scavenging activity of 5-fold dilution of acetate extract of the broth were 0.682 6 g/100 mL and 57.51 %，respectively.

Key words：endophytic fungal；Chaetomium globosum；Illicium verum；antioxidant activity；cultural condition

收稿日期：2014-08-09

DOI：10.3969/j.issn.1005-6521.2016.01.045

作者簡介：李海云（1975—），男（漢），副教授，研究生，主要從事天然活性物質(zhì)研究。

基金項(xiàng)目：國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目（31460409）；廣西礦冶與環(huán)境科學(xué)實(shí)驗(yàn)中心資助項(xiàng)目（KH2013YB013）；廣西壯藥產(chǎn)業(yè)化工程院科研項(xiàng)目（2014GXZYCYH03）