亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        miR-141表達異常對人肝癌細胞惡性生物學表型的影響*

        2016-03-05 02:13:31賀興波黃才斌
        中國病理生理雜志 2016年2期
        關(guān)鍵詞:脂質(zhì)體細胞周期肝細胞

        劉 瑤, 賀興波, 舒 濤, 黃才斌

        (贛南醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院,江西 贛州 341000)

        ?

        miR-141表達異常對人肝癌細胞惡性生物學表型的影響*

        劉瑤,賀興波,舒濤,黃才斌△

        (贛南醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院,江西 贛州 341000)

        [摘要]目的: 研究微小RNA-141(miR-141)在人肝癌細胞和正常胎肝細胞中的表達,同時分析miR-141表達異常對人肝癌細胞惡性生物學表型的影響。方法: 分別提取人肝癌細胞SMMC-7721和正常肝細胞HL-7702的總RNA,采用實時熒光定量PCR法檢測miR-141的表達。采用脂質(zhì)體介導的轉(zhuǎn)染方法分別將miR-141 mimic轉(zhuǎn)染SMMC-7721細胞,將miR-141 inhibitor轉(zhuǎn)染HL-7702細胞;MTS試劑盒和BrdU-ELISA檢測細胞增殖能力,流式細胞術(shù)檢測轉(zhuǎn)染前后細胞周期和凋亡率的變化。Transwell實驗檢測miR-141表達變化對細胞體外遷移能力的影響。結(jié)果: miR-141在SMMC-7721細胞中的表達較HL-7702細胞明顯下降。與空白組、脂質(zhì)體組和陰性對照組相比,轉(zhuǎn)染25 nmol/L miR-141 mimic的SMMC-7721細胞中,細胞增殖速度減慢,S期細胞比例降低,凋亡細胞比例上升,細胞體外遷移能力下降;轉(zhuǎn)染50 nmol/L miR-141 inhibitor的HL-7702細胞中,細胞增殖速度加快,S期細胞比例上升,凋亡細胞比例下降,細胞體外遷移能力增強。結(jié)論: miR-141在人肝癌細胞中表達下降,上調(diào)miR-141表達可抑制肝癌細胞體外增殖活性和遷移能力,影響細胞周期和凋亡。在肝癌發(fā)病進程中,miR-141可能扮演抑癌基因的角色。

        [關(guān)鍵詞]微小RNA-141; 肝細胞癌; 細胞增殖; 細胞周期; 細胞凋亡

        miRNA是一類長度在20~25個核苷酸(nucleotide,nt)的內(nèi)源性非編碼單鏈小分子 RNA,在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控超過1/3基因的表達,參與真核生物體內(nèi)細胞增殖、分化凋亡、癌癥等一系列生命活動[1]。miR-141隸屬于miR-200家族,目前已有研究表明miR-141在結(jié)腸癌、前列腺癌等腫瘤中高表達[2-3],但在胃癌組織中低表達[4-5]。肝細胞癌中miR-141的表達水平如何以及miR-141表達異常對肝癌細胞生物學活性的影響未見文獻報道。本實驗通過loss-of-function和gain-of-function技術(shù)分析miR-141表達改變對肝癌細胞增殖、細胞周期、凋亡和體外侵襲能力的影響。

        材料和方法

        1材料

        人肝癌細胞株SMMC-7721和正常人肝細胞HL-7702由贛南醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院臨床科研中心保存。miR-141和內(nèi)參照U6 snRNA 特異逆轉(zhuǎn)錄及real-time PCR引物、miR-141 mimic和miR-141 inhibitor 購自廣州市銳博生物科技有限公司;RNA 提取試劑TRIzol、轉(zhuǎn)染試劑LipofectamineTMRNAiMAX和SYBR Green qPCR Super Mix購自Invitrogen;1640培養(yǎng)液和胎牛血清購自Gibco;MTS試劑盒購自Promega;BrdU-ELISA試劑盒購自Roche。細胞周期和凋亡檢測試劑盒購自南京凱基生物發(fā)展技術(shù)有限公司;Transwell 小室購自Corning。

        2方法

        2.1細胞培養(yǎng)和miR-141表達水平的檢測SMMC-7721細胞和HL-7702細胞在含10%胎牛血清的1640培養(yǎng)基(含1×105U/L青霉素和 100 mg/L鏈霉素)中培養(yǎng),于37 ℃、5% CO2及飽和濕度條件下培養(yǎng),每3 d傳代1次。TRIzol法提取細胞的總RNA。紫外分光光度法上機檢測RNA的濃度及純度。逆轉(zhuǎn)錄總RNA后在熒光定量PCR儀上進行PCR擴增,使用U6作為內(nèi)參照。

        2.2細胞分組和瞬時轉(zhuǎn)染 取對數(shù)生長期細胞,待融合度為30%~50%時進行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染4 h后更換新鮮的完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。SMMC-7721細胞分為空白(blank)組、脂質(zhì)體(Lipofectamine,Lipo)組、25 nmol/L miR-141 mimic組和陰性對照(negative control,NC)組;HL-7702細胞分為空白組、脂質(zhì)體組、50 nmol/L miR-141 inhibitor組和NC組。

        2.3MTS實驗檢測細胞活力 分別用0.25%的胰蛋白酶消化并收集SMMC-7721細胞和HL-7702細胞,調(diào)整細胞濃度為1×108/L,取每孔100 μL接種至96孔板。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染操作同前所述。各組細胞分別在轉(zhuǎn)染后24 h、48 h和72 h將對應96孔板換液并每孔加入100 μL 1640培養(yǎng)液及10 μL MTS。室溫、5% CO2及飽和濕度條件下培養(yǎng)4 h,酶標儀讀取490 nm處吸光度(A)值數(shù)據(jù)。

        2.4BrdU 法檢測細胞增殖 分別用0.25%的胰蛋白酶消化并收集SMMC-7721細胞和HL-7702細胞,調(diào)整細胞濃度為1×108/L,取每孔100 μL接種至96孔板,每組6個復孔。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染操作同前所述。各組細胞在轉(zhuǎn)染后72 h每孔加入20 μL BrdU工作液,繼續(xù)培養(yǎng)12 h后按照BrdU-ELISA 試劑盒操作說明書進行,酶標儀讀取450 nm處吸光度(A)值數(shù)據(jù),參照波長為690 nm。

        2.5細胞周期和凋亡率分析分別用0.25%的胰蛋白酶消化并收集轉(zhuǎn)染48 h后的各組細胞,調(diào)整細胞濃度為1×109/L。細胞周期分析時,制備的單細胞懸液用體積分數(shù)為70%的乙醇固定,4 ℃保存過夜,染色前用PBS洗去固定液; 加50 μL RNase A,37 ℃水浴30 min; 再加200 μL PI染色均勻,4 ℃避光30 min;上流式細胞儀檢測,記錄激發(fā)波長為488 nm處紅色熒光。細胞凋亡率分析時,加入200 μL的binding buffer懸浮細胞;再加5 μL Annexin V-FITC混勻,之后加5 μL PI混勻,室溫避光反應5~15 min;在1 h之內(nèi)上流式細胞儀檢測。

        2.6Transwell實驗檢測細胞遷移能力Transwell小室外室加入0.6 mL 完全培養(yǎng)基,放入37 ℃培養(yǎng)箱平衡1 h以上。用0.25%的胰蛋白酶消化并收集各組細胞,用無血清的1640培養(yǎng)液調(diào)整細胞濃度為1×109/L;小室上室加入適量細胞懸液(每孔0.1 mL);37 ℃培養(yǎng)24 h后取出小室,用PBS洗2遍,甲醇固定5 min。外室加入結(jié)晶紫(0.1%)染色,顯微鏡下觀察并計數(shù)多個視野下的細胞。

        3統(tǒng)計學處理

        采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件,實驗數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,兩組間均數(shù)比較采用兩獨立樣本資料的t檢驗,多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),組間兩兩比較采用SNK-q檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        結(jié)果

        1SMMC-7721細胞和HL-7702 細胞中miR-141的表達水平

        Real-time PCR結(jié)果顯示人肝癌細胞SMMC-7721中miR-141表達水平顯著低于正常人肝細胞HL-7702(P<0.05),見圖1。

        2miR-141對細胞活力的影響

        用MTS比色法檢測SMMC-7721細胞和HL-7702細胞24~72 h的生長情況,發(fā)現(xiàn)SMMC-7721細胞在miR-141 mimic轉(zhuǎn)染后各時點的吸光度值明顯低于空白組、脂質(zhì)體組和NC組(P<0.05),72 h的細胞活力抑制率最明顯??瞻捉M、脂質(zhì)體組和NC 組相比較,差異無統(tǒng)計學顯著性。HL-7702細胞在miR-141 inhibitor 轉(zhuǎn)染后各時點的吸光度值明顯高于空白組、脂質(zhì)體組和NC 組(P<0.05),轉(zhuǎn)染后48 h細胞活力明顯增加。空白組、脂質(zhì)體組和NC 組相比較,差異無統(tǒng)計學顯著性(P>0.05),見圖2。

        Figure 1.The expression of miR-141 in SMMC-7721 cells and HL-7702 cells measured by real-time PCR. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsHL-7702.

        圖1Real-time PCR檢測2株細胞中miR-141的表達

        3BrdU-ELISA 法檢測miR-141對細胞增殖的影響

        與空白組、脂質(zhì)體組和NC組相比,miR-141 mimic轉(zhuǎn)染能顯著抑制SMMC-7721細胞體外增殖速度(P<0.05)。與空白組、脂質(zhì)體組和NC 組相比,miR-141 inhibitor轉(zhuǎn)染能顯著加快HL-7702細胞體外增殖速度(P<0.05),見圖3。

        Figure 2.The viability of SMMC-7721 cells and HL-7702 cells measured by MTS assay. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsmimic;#P<0.05vsinhibitor.

        圖2MTS檢測miR-141表達變化對2株細胞活力的影響

        Figure 3.The proliferation of SMMC-7721 cells and HL-7702 cells measured by BrdU-ELISA. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsmimic;#P<0.05vsinhibitor.

        圖3BrdU-ELISA檢測miR-141表達變化對2株細胞體外增殖能力的影響

        4miR-141對細胞周期和凋亡的影響

        流式細胞術(shù)檢測結(jié)果表明,與空白組、脂質(zhì)體組和NC組相比,SMMC-7721細胞在miR-141 mimic 轉(zhuǎn)染后72 h G0/G1、S和G2/M期細胞分布發(fā)生了改變,S期細胞比例下降,G1期細胞比例上升,細胞凋亡率上升。而HL-7702細胞在miR-141 inhibitor轉(zhuǎn)染后72 h,S期比例上升,G1期細胞比例下降,細胞凋亡率下降,見圖4、5。

        Figure 4.The cell cycle of SMMC-7721 cells and HL-7702 cells analyzed by flow cytometry. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsmimic;#P<0.05vsinhibitor.

        圖4流式細胞術(shù)檢測miR-141表達變化對2株細胞細胞周期的影響

        5miR-141對細胞體外遷移能力的影響

        SMMC-7721細胞在miR-141 mimic轉(zhuǎn)染后,體外遷移能力明顯下降,穿膜細胞數(shù)減少,差異有統(tǒng)計學顯著性(P<0.05),見圖6。而HL-7702細胞在miR-141 inhibitor轉(zhuǎn)染后,體外遷移能力明顯增強,穿膜的細胞數(shù)增加,差異有統(tǒng)計學顯著性(P<0.05),見圖7。

        討論

        原發(fā)性肝細胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是一種嚴重威脅人類健康的疾病,死亡率居惡性腫瘤第3位,全世界每年新發(fā)肝癌患者近63萬,其中55%發(fā)生在我國[6]。大多數(shù)肝癌患者在發(fā)現(xiàn)癥狀時,已屆病程的中晚期階段,錯過了手術(shù)治療的最佳時機。過去人們對HCC的研究多集中在尋找腫瘤相關(guān)基因,分析基因突變后對肝癌惡性生物學表型及細胞信號通路的影響?,F(xiàn)已有學者分別從不同角度深入探討腫瘤的發(fā)病機制,比如:啟動子區(qū)域CpG島的甲基化/去甲基化導致的基因表達沉默/激活;泛素化、磷酸化等蛋白質(zhì)翻譯后化學修飾導致的蛋白功能活化/鈍化;miRNA轉(zhuǎn)錄調(diào)控靶mRNA表達等。

        miRNA是一類短小的非編碼RNA,由較長的初級轉(zhuǎn)錄物分別經(jīng)核酸酶Drosha和Dicer的剪切加工而產(chǎn)生的,隨后以相對低的穩(wěn)定性組裝進RNA誘導的沉默復合體(RNA-induced silencing complex,RISC),通過堿基互補配對結(jié)合的方式識別靶mRNA。當miRNA 5’端第2位到第 8位核苷酸序列構(gòu)成的種子區(qū)域與靶mRNA 3’非翻譯區(qū)堿基完全互補時,miRNA發(fā)揮類似小干擾RNA的功能,引導RISC降解靶mRNA;如果不完全互補則阻遏靶mRNA的翻譯[7]。

        Figure 5.The apoptotic rate of SMMC-7721 cells and HL-7702 cells detected by flow cytometry. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsmimic;#P<0.05vsinhibitor.

        圖5流式細胞術(shù)檢測miR-141表達變化對2株細胞凋亡的影響

        目前發(fā)現(xiàn)人類基因組編碼近700個miRNA,約50%分布在易發(fā)生染色體斷裂、擴增及融合的腫瘤相關(guān)基因組區(qū)域或脆性位點[8-9]。國內(nèi)外學者應用生物芯片技術(shù),在多種腫瘤組織中篩選出表達異常的miRNA,并對其功能和作用靶點進行了一系列研究[10-11]。miR-200家族是近年來研究比較集中的熱點,miR-141作為其中的一員,在維持上皮細胞表型穩(wěn)定方面發(fā)揮重要作用,但當其表達失調(diào)時可促進細胞表型上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)換并導致上皮來源腫瘤的增殖、侵襲、轉(zhuǎn)移[12-13]。已有文獻報道外周血中miR-141的高表達與結(jié)腸癌患者遠處轉(zhuǎn)移、預后不良相關(guān)[2]。Shinozaki等[4]的研究卻發(fā)現(xiàn)miR-141在胃癌組織和多種胃癌細胞中表達明顯減少。鑒于miR-141在消化系統(tǒng)腫瘤中表達的差異性,我們認為有必要對原發(fā)性肝細胞癌中miR-141的表達情況進行分析。

        通過實時熒光定量PCR檢測,我們發(fā)現(xiàn)肝癌細胞株SMMC-7721中miR-141表達水平顯著低于正常人肝細胞HL-7702。這和我們前期檢測的臨床切除肝癌和癌旁組織石蠟切片中miR-141的表達情況一致,且miR-141表達下調(diào)的程度與肝細胞癌惡性程度、腫瘤分化程度以及AFP有關(guān),miR-141的表達隨著臨床分期增加而下調(diào),分化程度越差、AFP表達越高的肝細胞癌組織中的miR-141的表達越低。為了進一步從體外水平研究miR-141表達異常對肝癌細胞株生物學活性的影響,我們通過gain-of-function技術(shù)上調(diào)肝癌細胞、loss-of-function技術(shù)下調(diào)正常肝細胞中miR-141的表達,SMMC-7721細胞在轉(zhuǎn)染miR-141 mimic后各時點的增殖抑制率均顯著上升,細胞周期S期比例下降,G1期比例上升,凋亡率上升,細胞體外遷移能力明顯下降,穿膜細胞數(shù)明顯減少;HL-7702細胞在miR-141 inhibitor 轉(zhuǎn)染后各時點的增殖率均顯著上升,細胞周期S期比例上升,G1期比例下降,凋亡率下降,細胞體外遷移能力明顯增強,穿膜細胞數(shù)明顯增多。

        Figure 6.The migration of SMMC-7721 cells detected by Trans-well assay (×200). Mean±SD.n=3.*P<0.05vsmimic.

        圖6Transwell檢測miR-141表達變化對SMMC-7721細胞體外遷移能力的影響

        Figure 7.The migration of HL-7702 cells detected by Transwell assay (×200). Mean±SD.n=3.#P<0.05vsinhibitor.

        圖7Transwell檢測miR-141表達變化對HL-7702細胞體外遷移能力的影響

        [參考文獻]

        [1]Wang J, Sen S. MicroRNA functional network in pancreatic cancer: from biology to biomarkers of disease[J]. J Biosci, 2011, 36(3):481-491.

        [2]吳慶宇,陳珂珂,高龍,等. 結(jié)腸癌中 miR-135b、miR-141的檢測意義[J]. 實用腫瘤學雜志,2014, 28(5):430-434.

        [3]廖于峰, 戴金華, 茅奇峰,等. 循環(huán) miRNA-141對前列腺癌的診斷和預后價值研究[J]. 中國病理生理雜志,2014, 30(10):1887-1890.

        [4]Shinozaki A, Sakatani T, Ushiku T, et al. Downregulation of microRNA-200 in EBV-associated gastric carcinoma[J]. Cancer Res, 2010, 70(11):4719-4727.

        [5]申發(fā)娟,蘇娟,張慶瑜,等. 上調(diào)miR-200a、miR-141表達對胃腺癌細胞生長的體外研究[J]. 天津醫(yī)藥,2013, 41(6):517-519.

        [6]Li LM, Hu ZB, Zhou ZX, et al. Serum microRNA profiles serve as novel biomarkers for HBV infection and diagnosis of HBV-positive hepatocarcinoma[J]. Cancer Res, 2010, 70(23):9798-9807.

        [7]Huang S, He X. The role of microRNAs in liver cancer progression[J]. Br J Cancer, 2011, 104(2):235-240.

        [8]程娜,王凱慧,孫樹漢. microRNA 在人類癌癥治療中的應用前景[J]. 分子診斷與治療雜志, 2010, 2(6):413-416.

        [9]藺新秀, 楊蔓, 夏天,等. 競爭性內(nèi)源RNA與腫瘤發(fā)生[J]. 中國病理生理雜志, 2014, 30(3):563-566.

        [10]Budhu A, Ji J, Wang XW.The clinical potential of microRNAs[J]. J Hematol Oncol, 2010, 3:37.

        [11]Ji J, Wang XW. New kids on the block: diagnostic and prognostic microRNAs in hepatocellular carcinoma[J]. Cancer Biol Ther, 2009, 8(18):1686-1693.

        [12]Snowdon J, Zhang X, Childs T, et al. The microRNA-200 family is upregulated in endometrial carcinoma[J]. PLoS One, 2011, 6(8):e22828.

        [13]Neves R, Scheel C, Weinhold S, et al. Role of DNA methylation in miR-200c/141 cluster silencing in invasive breast cancer cells[J]. BMC Res Notes, 2010, 3:219.

        (責任編輯: 盧萍, 羅森)

        Effect of abnormal expression of miR-141 on malignant biological behaviors of human hepatocarcinoma cells LIU Yao, HE Xing-bo, SHU Tao, HUANG Cai-bin

        (TheFirstAffiliatedHospitalofGannanMedicalCollege,Ganzhou341000,China.E-mail:hcbgmu@163.com)

        [ABSTRACT]AIM: To investigate the expression of microRNA-141 (miR-141) in human hepatocellular carcinoma (HCC) cell line SMMC-7721 and normal hepatocyte line HL-7702, and to analyze the effect of abnormal expression of miR-141 on the malignant biological behaviors of human hepatocarcinoma cells. METHODS: The RNA from SMMC-7721 cells and HL-7702 cells was extracted. SYBR Green real-time PCR was performed to detect the expression of miR-141. Synthetic miR-141 mimic and its negative control were transfected into the SMMC-7721 cells, and miR-141 inhibitor and its negative control were transfected into the HL-7702 cells by the method of Lipofectamine. After transfection, MTS assay and BrdU-ELISA were employed to evaluate the effect of miR-141 on the cell proliferation. Flow cytometry was used to detect cell cycle and apoptosis. The changes of migration ability were investigated by Transwell invasion assay. RESULTS: The expression of miR-141 in the SMMC-7721 cells was significantly lower than that in the HL-7702 cells (P<0.05). Compared with blank group, Lipofectamine group and negative control group, the proliferation of the SMMC-7721 cells transfected with 25 nmol/L miR-141 mimic was significantly inhibited in a time-dependent manner (P<0.05). The percentages of G1phase cells and early apoptotic rate were significantly increased when miR-141 was up-regulated, but the migration ability was inhibited (P<0.05). Compared with blank group, Lipofectamine group and negative control group, the proliferation of HL-7702 cells transfected with 50 nmol/L miR-141 inhibitor was significantly increased in a time-dependent manner (P<0.05). When miR-141 was down-regulated, the percentages of G1phase cells and early apoptotic rate were significantly decreased, but the migration ability was enhanced (P<0.05). CONCLUSION: miR-141 is down-regulated in human hepatocarcinoma cell line. Up-regulation of miR-141 will not only inhibit cell proliferation and migration ability, but also affect the cell cycle and apoptosis of SMMC-7721 cells. miR-141 may function as a tumor suppressor gene during HCC development.

        [KEY WORDS]MicroRNA-141; Hepatocellular carcinoma; Cell proliferation; Cell cycle; Apoptosis

        doi:10.3969/j.issn.1000- 4718.2016.02.004

        [中圖分類號]R730.23

        [文獻標志碼]A

        通訊作者△Tel: 0797-8283981; E-mail: hcbgmu@163.com

        *[基金項目]國家自然科學基金資助項目(No. 81160257); 江西省高校中青年教師發(fā)展計劃專項資金資助項目(贛財教指[2012]132號)

        [收稿日期]2015- 07- 15[修回日期] 2015- 11- 24

        [文章編號]1000- 4718(2016)02- 0215- 06

        猜你喜歡
        脂質(zhì)體細胞周期肝細胞
        PEG6000修飾的流感疫苗脂質(zhì)體的制備和穩(wěn)定性
        外泌體miRNA在肝細胞癌中的研究進展
        紅霉素聯(lián)合順鉑對A549細胞的細胞周期和凋亡的影響
        超濾法測定甘草次酸脂質(zhì)體包封率
        中成藥(2018年2期)2018-05-09 07:20:08
        TPGS修飾青蒿琥酯脂質(zhì)體的制備及其體外抗腫瘤活性
        中成藥(2017年3期)2017-05-17 06:08:52
        NSCLC survivin表達特點及其與細胞周期的關(guān)系研究
        X線照射劑量率對A549肺癌細胞周期的影響
        癌癥進展(2016年10期)2016-03-20 13:15:43
        肝細胞程序性壞死的研究進展
        肝細胞癌診斷中CT灌注成像的應用探析
        熊果酸對肺癌細胞株A549及SPCA1細胞周期的抑制作用
        人妻无码视频| 少妇愉情理伦片丰满丰满| 69sex久久精品国产麻豆| 国产精品高潮呻吟av久久无吗| 精品无码一区二区三区小说| 亚洲性感毛片在线视频| 亚洲s色大片在线观看| 朝鲜女子内射杂交bbw| 日本少妇按摩高潮玩弄| 久久国产精品精品国产色| 日韩在线永久免费播放| 麻豆亚洲av永久无码精品久久| 精品国产91久久综合| 国产一区二区三区成人av| 大地资源高清在线视频播放| 又黄又爽又色的视频| 国产精品欧美视频另类专区| 亚洲av色av成人噜噜噜| 免费视频成人片在线观看| 国产激情视频白浆免费| 成人影院免费观看在线播放视频| 白浆国产精品一区二区| 天天燥日日燥| 色窝窝无码一区二区三区2022| 国产丝袜美腿嫩模视频诱惑| 免费又黄又爽又色的视频| 色妞色综合久久夜夜| 亚洲av综合日韩精品久久久| 亚洲第一网站免费视频| 精品国产一区av天美传媒| 色窝窝无码一区二区三区2022| 清纯唯美亚洲经典中文字幕| 久爱www人成免费网站| 亚洲国产精品无码久久电影| 亚洲免费人成网站在线观看| 中文字幕在线亚洲三区| 国产伦精品一区二区三区免费| 亚洲无AV码一区二区三区| 亚州中文热码在线视频| 欧美丰满熟妇xxxx性| 亚洲伊人久久成人综合网|