莊金秋，張　穎，梅建國，劉吉山，姚春陽

（山東省濱州畜牧獸醫(yī)研究院，山 東濱州　256600）

牛支原體檢測方法研究進(jìn)展

莊金秋，張穎，梅建國，劉吉山，姚春陽

（山東省濱州畜牧獸醫(yī)研究院，山 東濱州256600）

隨著規(guī)?；B(yǎng)牛業(yè)的不斷發(fā)展，牛支原體已經(jīng)成為危 害養(yǎng)牛業(yè)的一種重要致病性支原體。本文介紹了牛支原體病原學(xué)、血清學(xué)及分子生物學(xué)方面實(shí)驗(yàn)室檢測方法的研究進(jìn)展，為我國牛支原體病的防治提供了參考。

牛支原體；檢測方法；病原學(xué)；血清學(xué)；分子生物學(xué)；研究進(jìn)展

牛支原體（M. bovis）屬支原體科支原體屬，是一種介于細(xì)菌和病毒之間的無細(xì)胞壁的原核微生物。M. bovis可引起犢牛肺炎、乳腺炎、關(guān)節(jié)炎、角膜結(jié)膜炎、耳炎、生殖道炎，甚至流產(chǎn)與不孕等多種疾病。這些疾病常統(tǒng)稱為牛支原體相關(guān)疾病（MbAD）。牛傳染性胸膜肺炎（CBPP），簡稱牛肺疫，就是由與M. bovis同屬的絲狀支原體絲狀亞種SC型（MmmSC）引起的烈性傳染病，被世界動(dòng)物衛(wèi)生組織（OIE）列為須通報(bào)的動(dòng)物疫病。MmmSC和M. bovis都是對牛致病力較強(qiáng)的支原體，可導(dǎo)致相似的臨床癥狀和病理剖檢變化，不易鑒別診斷。1961年，Hale［1］在美國首次從一例患乳腺炎的牛乳中分離出M. bovis；1976年，美國首次報(bào)道由M. bovis引起的肺炎；1983年，黎濟(jì)申等［2］首次從我國患乳腺炎的牛乳中分離到該病原；2008年，辛九慶等［3］首次從患肺炎的犢牛肺臟中分離到該病原。M. bovis是危害犢牛健康的重要致病性病原體，具有較高的感染率和死亡率，即使是治療后癥狀緩解的牛，一般都發(fā)育遲緩甚至成為廢牛，嚴(yán)重影響了牛奶的產(chǎn)量和質(zhì)量。近年來，MbAD已經(jīng)在世界范圍內(nèi)廣泛傳播，且M. bovis可明顯增加其他病原的繼發(fā)感染，給世界養(yǎng)牛業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。牛支原體感染后無特殊癥狀，因此很難對該病進(jìn)行感官判斷，需借助實(shí)驗(yàn)室診斷確診。本文綜述了近年來M. bovis感染的最新實(shí)驗(yàn)室檢測方法研究進(jìn)展，以期對該病的預(yù)防和控制提供參考。

1　牛支原體分離鑒定

支原體分離鑒定方法應(yīng)嚴(yán)格按照無菌操作規(guī)程，將患病動(dòng)物的組織病料接種于培養(yǎng)基中。支原體培養(yǎng)的營養(yǎng)需求較高，通常要在培養(yǎng)基中加入10%～20%馬血清，置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3～5 d。在類胸膜肺炎微生物（PPLO）固體培養(yǎng)基中進(jìn)行分離培養(yǎng)時(shí)，在光學(xué)顯微鏡下，菌落呈現(xiàn)典型的“煎蛋狀”、邊緣整齊、表面光滑、中間厚周邊薄的菌膜斑點(diǎn)。如若7 d未發(fā)現(xiàn)生長跡象，可判斷為陰性。初步鑒定后，在含酚紅的液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)，觀察培養(yǎng)基顏色是否由紅變黃，且稍渾濁，之后根據(jù)配套的生化反應(yīng)進(jìn)行鑒定。鑒定為支原體后，需應(yīng)用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（PCR）等方法來鑒別診斷是否為M. bovis或者其他支原體。常用的液體培養(yǎng)基包括Hayfi ick、Edward、Frey、MEM-KMZ、SP-4等。M. bovis對外界環(huán)境要求較高，采集的病料如未能及時(shí)送往實(shí)驗(yàn)室，極易導(dǎo)致病原死亡。一般病料需冷藏運(yùn)輸，運(yùn)輸時(shí)間不要超24 h，也可將其凍存于運(yùn)輸培養(yǎng)基中進(jìn)行運(yùn)輸。對于病料的采集，一般在下呼吸道比上呼吸道分離出病原的概率大。雖然牛支原體分離鑒定可以確診是否有M. bovis的感染，但是分離難度大，分離周期長，不能作為快速診斷M. bovis感染的有效方法來使用。

2　血清學(xué)方法

血清學(xué)方法是檢測M.bovis感染的可靠方法，尤其對于經(jīng)抗生素治療或慢性的病例。血清抗體檢測方法比病原培養(yǎng)方法更敏感，包括酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)、間接血凝試驗(yàn)、膠體金免疫層析試紙條和免疫組化技術(shù)等。

2.1 酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)（ELISA）

利用全菌抗原或重組抗原建立的間接ELISA方法是檢測血清抗體的首選方法，應(yīng)用最為廣泛。用處理過的M.bovis全菌蛋白作為包被抗原的間接ELISA方法，不僅能夠檢測血清抗體，還可以檢測患有乳腺炎奶牛的乳清抗體，被廣泛應(yīng)用于M.bovis感染的流行病學(xué)調(diào)查。但是由于建立該方法的抗原為全菌蛋白，其特異性有待提高。鑒于此，研究者先后建立了以M.bovis的VSP重組蛋白和膜脂蛋白P48作為包被抗原的間接ELISA方法，用以檢測對應(yīng)抗體。2014年，F(xiàn) u等［4］利用P48重組蛋白作為包被抗原，其相應(yīng)的單克隆抗體用HRP進(jìn)行標(biāo)記，建立了直接競爭ELISA方法檢測M.bovis抗體。以P48蛋白作為包被抗原的ELISA方法能檢測M.bovis的所有分離株，且不與感染牛的其他六種支原體反應(yīng)，對于檢測M.bovis感染有很好的應(yīng)用前景。2014年，Wawegama等［5］鑒別出一種可以具有脂肪酶活性的膜蛋白（MilA）。該蛋白氨基末端與M. bovis抗體有很強(qiáng)的免疫反應(yīng)。利用大腸桿菌誘導(dǎo)表達(dá)的該段蛋白建立了間接ELISA方法，其敏感性達(dá)到92.86%，特異性高達(dá)98.7%。2014—201 5年，金云云等［6］、Han等［7］以M.bovis全菌蛋白作為包被用抗原，建立了檢測M.bovis血清抗體的間接ELISA方法。該方法可以區(qū)分出感染牛和免疫牛，從而可以判斷牛感染程度高低以及疫苗是否有效。國外商品化檢測M. bovis抗體的ELISA試劑盒有瑞士、加拿大和比 利時(shí)等國家研制的試劑盒。2011年，劉洋等［8］將純化后的P28重組蛋白作為抗原建立了檢測M.bovis血清抗體的間接ELISA方法，并組裝成試劑盒，填補(bǔ)了國內(nèi)ELISA試劑盒的空白。該試劑盒具有良好的敏感性、特異性和穩(wěn)定性，能在一次反應(yīng)中對M.bovis和MmmSC作出鑒別診斷，與加拿大商品化試劑盒Kit 1的檢測結(jié)果符合率高達(dá)92%，各種技術(shù)指標(biāo)相當(dāng)，可作為進(jìn)口試劑盒的替代品，用于M.bovis的臨床診斷與流行病學(xué)調(diào)查。

2.2 間接血凝試驗(yàn)（IHA）

IHA是一種經(jīng)典的免疫學(xué)診斷技術(shù)，因具有操作簡單、穩(wěn)定、成本低、敏感性和特異性較高，且對試驗(yàn)條件要求低等優(yōu)點(diǎn)，被廣泛應(yīng)用于獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室檢測、田間血清學(xué)調(diào)查和基層獸醫(yī)部門的輔助診斷。2015年，簡瑩娜等［9］以純化的P48重組蛋白致敏醛化-鞣酸化的綿羊紅細(xì)胞并對其工藝進(jìn)行優(yōu)化，建立了檢測M. bovis抗體的IHA方法。該方法與國外商品化的ELISA試劑盒比較，平均符合率為96.15%。對833份田間血清和1 084份乳清進(jìn)行檢測，陽性率分別是15.37%和19.56%。該方法敏感性高、特異性強(qiáng)重復(fù)性好，可用于M. bovis抗體水平監(jiān)測、牛支原體病的輔助診斷和流行病學(xué)調(diào)查。

2.3 膠體金免疫層析試紙條

2015年，簡瑩娜［10］利用牛支原體P48重組蛋白，建立了檢測M. bovis抗體的膠體金免疫層析試紙條。應(yīng)用該試紙條檢測臨床血清200份和乳清108份，陽性率分別是21.50%和17.59%，與IHA方法相比符合率為96.53%，表明該試紙條敏感、特異、快速，適合于M. bovis抗體的快速檢測。

2.4 免疫組化技術(shù)

免疫組化技術(shù)是一門將免疫學(xué)與組織化學(xué)相結(jié)合的技術(shù)，在組織細(xì)胞原位通過抗原-抗體特異性結(jié)合反應(yīng)和組織化學(xué)顯色反應(yīng)，借助可見的標(biāo)記物對相應(yīng)抗原或抗體進(jìn)行定位、定性和定量檢測，不僅能準(zhǔn)確判斷是否有病原感染，而且能清晰反映病原在組織器官和細(xì)胞中的定位及分布。該方法操作簡便、不需要專門的儀器設(shè)備，適合于基層臨床的快速診斷，并且對于研究病原在機(jī)體內(nèi)的致病機(jī)制及分布規(guī)律也有一定的輔助作用。1995年，Adegboye等基于單克隆抗體建立了免疫組化方法，檢測犢牛肺組織中的M.bovis。2001年，Haines等建立的免疫組化技術(shù)，對牛場M.bovis感染所致的急、慢性呼吸道疾病、肺炎、乳腺炎等進(jìn)行了病原體檢測。2004年，Khodakaram-Tafti等采用免疫組化方法進(jìn)行M.bovis的診斷，不僅能對福爾馬林固定的組織進(jìn)行M.bovis檢測，還能清楚地顯示出M.bovis在病灶內(nèi)的具體位置，直觀地觀察病變組織的病理變化以及M.bovis侵襲機(jī)體后的分布情況。2013年，金云云等［11］以雞抗M.bovis IgY為一抗，以HRP標(biāo)記的羊抗雞IgG為二抗，建立了檢測M.bovis的間接免疫組化法。該方法可用于檢測臨床病例組織樣本及培養(yǎng)物中的M.bovis，為探究該病原在機(jī)體內(nèi)的定位、動(dòng)態(tài)分布規(guī)律及致病機(jī)理提供了手段。

2.5 其他血清學(xué)方法

如應(yīng)用兔源高免疫血清鑒定M.bovis的抗體檢測方法，其包括生長抑制試驗(yàn)（GI）、生物膜形成抑制試驗(yàn)（FI）、熒光抗體試驗(yàn)（FA）和新陳代謝抑制試驗(yàn)（MI）等。由于這些試驗(yàn)無商品化抗血清，需在實(shí)驗(yàn)室自行制備，因此操作時(shí)較為費(fèi)時(shí)費(fèi)力。

3　分子生物學(xué)方法

由于牛在養(yǎng)殖場環(huán)境中停留2～4周后都存在可檢測滴度的M.bovis抗體，所以血清學(xué)檢測方法無法準(zhǔn)確診斷牛肺炎病例是否由M.bovis引起。分子生物學(xué)方法相對快捷方便，而且靈敏度高，已被廣泛應(yīng)用于M.bovis的實(shí)驗(yàn)室檢測。分子生物學(xué)方法包括PCR技術(shù)、熒光定量PCR技術(shù)、環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)（LAMP）和雙向電泳技術(shù)等。

3.1 PCR技術(shù)

早期國外研究者利用PCR方法擴(kuò)增16S rRNA用來檢測M. bovis的感染，但是由于其與無乳支原體（M. agalactiae）的16S rRNA同源性高達(dá)99.8%，在不結(jié)合其他方法的情況下無法區(qū)分這兩種病原的感染。于是研究者又通過16S rRNA的PCR和酶切系統(tǒng)來鑒別這兩種支原體。后 來，研究者先后選取DNA修復(fù)基因uvrC、ATP結(jié)合蛋白o(hù)ppD/F基因、p81基因作為靶基因進(jìn)行特異性擴(kuò)增，應(yīng)用于臨床患病牛的病原學(xué)檢測，并對M.bovis和M. agalactiae作鑒別診斷。我國自2008年開始對M. bovis進(jìn)行深入研究，p81蛋白是M.bovis和M. agalactiae共有的蛋白，但兩者的同源性僅為67%。2009年，李媛等［12］根據(jù)P81基因引物建立了PCR方法，可以從人工感染牛的鼻拭子和臨床發(fā)病牛肺中擴(kuò)增出目的片段，與分離培養(yǎng)結(jié)果完全符合，為國內(nèi)首次建立的敏感、特異、快速的牛支原體PCR檢測方法。同年李媛等利用oppD/F為靶基因設(shè)計(jì)引物，建立了套式PCR方法，成功鑒別了M.bovis和M. agalactiae。2009年，李彥芹［13］利用通用引物擴(kuò)增16S rRNA建立了能夠快速鑒別診斷MmmSC、M.bovis、M. agalactiae和綿羊肺炎支原體的多重PCR方法。2010年，劉洋等［14］建立了可以同時(shí)鑒別檢測M.bovis和MmmSC的雙重PCR方法。2011年，李大偉等［15］建立了一種可一次性區(qū)分上述三種支原體的三重PCR方法，用于臨床診斷和流行病學(xué)調(diào)查。2015年，胡國明［16］根據(jù)牛支原體P48基因設(shè)計(jì)引物，建立了M.bovis與M. agalactiae、MmmSC、滑液支原體、雞毒支原體等病原的PCR鑒別診斷方法，具有很高的特異性和敏感性，對M.bovis感染的臨床快速、準(zhǔn)確的診斷具有較高的實(shí)用價(jià)值。

3.2 熒光定量PCR技術(shù)

實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)也被用于M.bovis檢測的研究。2005年，Cai等應(yīng)用雜交探針和退火溫度建立了擴(kuò)增16S rRNA基因序列的實(shí)時(shí)定量PCR方法，用以檢測奶牛乳以及肺組織中的M.bovis，在檢測牛乳時(shí)其敏感性達(dá)100%，檢測肺組織時(shí)其敏感性達(dá)96.6%。2000年，Sachse等針對OppD基因，設(shè)計(jì)了實(shí)時(shí)定量PCR引物及探針，在患乳腺炎及呼吸道疾病的病牛中，能夠靈敏特異地鑒別出M.bovis，檢測限能夠達(dá)到100 cfu/mL。2010年，Rossetti等根據(jù)uvrC基因設(shè)計(jì)引物，建立了實(shí)時(shí)定量PCR方法。該方法不需要處理牛乳及組織樣品獲取純化的DNA，可直接用于實(shí)時(shí)定量PCR檢測，具有良好的特異性高度敏感性，方便用于M.bovis的檢測。

3.3 環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)（LAMP）

LAMP方法具有操作簡便、快速、高效、敏感、特異、經(jīng)濟(jì)等特點(diǎn)，適于基層實(shí)驗(yàn)室的監(jiān)測。2005年，Saito等利用LAMP方法對肺炎支原體進(jìn)行檢測，相同時(shí)間內(nèi)LAMP檢測法的靈敏度遠(yuǎn)高于實(shí)時(shí)定量PCR法，在對70例患者及25例正常人咽試紙檢測中的陽性率為100%，無假陽性。2012年，Churchward等同時(shí)用競爭性ELISA、套式PCR及LAMP對絲狀支原體進(jìn)行診斷，結(jié)果顯示LAMP法的敏感性遠(yuǎn)高于競爭性ELISA和套式PCR。2011—2012年，白智迪［17］、侯軒等［18］先后根據(jù)M.bovis的uvrC基因設(shè)計(jì)引物，建立了LAMP方法，其敏感性較PCR方法高100倍。在對167個(gè)臨床鼻拭子樣本的檢測中，LAMP方法檢測結(jié)果的陽性率（26.95%）高于PCR檢測陽性率（19.16%）。2014年，金云云等［19］根據(jù)P81基因設(shè)計(jì)引物建立了LAMP方法，其最低檢出限為1.1 ng/L。LAMP方法方便快速，成本低廉，可被大范圍推廣使用。

3.4 雙向電泳技術(shù)

2012年，陳維等［20］成功建立了M.bovis蛋白質(zhì)組學(xué)雙向電泳技術(shù)。由于國際上目前尚無M.bovis蛋白組學(xué)的相關(guān)報(bào)道，所以該方法可以鑒定出相應(yīng)的致病性蛋白，為M.bovis致病機(jī)理的研究提供蛋白質(zhì)組信息。

4　小結(jié)

隨著養(yǎng)牛業(yè)的不斷發(fā)展，牛支原體病的流行范圍越來越廣，發(fā)生頻率也越來越高，嚴(yán)重威脅了我國養(yǎng)牛業(yè)的發(fā)展。我國對于本病的研究起步較晚，國內(nèi)外對該病原的研究不透徹，特別是對牛支原體疫苗及其遺傳穩(wěn)定性的研究資料非常缺乏，國際上也尚無公認(rèn)的特異性診斷方法，對于該病致病機(jī)制的研究尚未達(dá)成共識，從而給該病的預(yù)防控制帶來了不便。因此，建立快速、準(zhǔn)確的檢測方法，開發(fā)新型疫苗等防控產(chǎn)品，具有十分重要的意義。上述各種檢測方法各有優(yōu)點(diǎn)和實(shí)用性，實(shí)際中需根據(jù)不同的場合、條件等選擇使用其中的一種或者多種方法。隨著人們對M.bovis的深入研究，相信該病的檢測方法將不斷得到改進(jìn)，更加簡便化、快速化和準(zhǔn)確化。

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（責(zé)任編輯：杜憲）

Research Progress on Detection Methods of Mycoplasma Bovis

Zhuang Jinqiu，Zhang Ying，Mei Jianguo，Liu Jishan，Yao Chunyang
（Binzhou Animal Husbandry and Veterinary Academy，Binzhou，Shandong 256600）

With the development of the large scale cattle industry，Mycoplasma bovis has been becoming one of the most important pathogenic Mycoplasma species causing serious damage. In order to offer reference for its prevention and control in our country，the research progress of laboratory detection methods for Mycoplasma bovis was introduced，which included etiology，serology and molecular biology.

Mycoplasma bovis；detection method；etiology；serology；molecular biology；research progress

S852.65

A

1005-944X（2016）11-0066-05

10.3969/j.issn.1005-944X.2016.11.019

山東省現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系牛產(chǎn)業(yè)創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)項(xiàng)目（SDAIT-09-12）；山東省重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目（2015GSF121027）