李姝雅,王伊龍,王春雪,劉改芬,王擁軍
腦缺血后局部炎性因子的表達(dá)顯著增加,且急性炎性因子的升高程度與臨床預(yù)后緊密相關(guān)[1]。Notch信號通路調(diào)控神經(jīng)干細(xì)胞的浸潤分化和血管新生[2-4],并參與炎癥反應(yīng)過程[5]。研究發(fā)現(xiàn),Notch 1可與經(jīng)典炎性因子NF-κB共活化參與炎癥反應(yīng)的調(diào)控。姜黃素(curcumin),黃色粉末,為姜黃根莖的生物活性成分,具有抗炎、抗氧化、抗癌、抗血管粥樣硬化及保護(hù)肝腎等多種生物學(xué)作用[6-7]。本研究擬通過公認(rèn)的線栓法建立穩(wěn)定的大鼠大腦中動脈梗死(middle cerebral artery occlusion,MCAO)模型,通過觀察姜黃素對Notch 1和NF-κB的作用,進(jìn)一步探討其神經(jīng)保護(hù)的作用機(jī)制。
成年健康雄性Sprague-Dawley大鼠93只,體重250~280 g,清潔級,由河北醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院動物實驗中心提供。姜黃素(Sigma-Aldrich,St. Louis,MO,USA):用含0.5 mol/L NaOH的0.01 PBS配制,濃度12.5 mg/ml。
1.2.1 姜黃素對Notch 1和NF-κB表達(dá)的影響 試驗動物分為三組(63只):①姜黃素組(CUR):參照Longa線栓法制作大鼠右側(cè)MCAO模型。在MCAO模型基礎(chǔ)上按80 mg/kg劑量腹腔注射配制好的姜黃素溶液。②溶劑對照組(vehicle-control):在MCAO模型基礎(chǔ)上按80 mg/kg劑量腹腔注射含0.5 mol/L NaOH的0.01 PBS。③假手術(shù)組(sham):除不在頸內(nèi)動脈插入線栓外,其余步驟同Longa線栓法操作,模型制作完成后按80 mg/kg劑量腹腔注射含0.5 mol/L NaOH的0.01 PBS。每組均按時間點分為對照、3 h、6 h、12 h、24 h、48 h、72 h共7個亞組,每個亞組3只大鼠。用免疫組化和Western blot的方法測定Notch 1和NF-κB的動態(tài)表達(dá)。
1.2.2 姜黃素急性腦缺血的神經(jīng)保護(hù)作用 30只大鼠隨機(jī)分配至CUR組、vehicle-control組、sham組,建模48 h評價神經(jīng)功能學(xué)評分,5只用于腦含水量測定,5只用于梗死體積測定。
1.3.1 神經(jīng)功能學(xué)評分 Longa改良評分法:0分:沒有神經(jīng)功能缺損;1分:左側(cè)(癱瘓側(cè))前爪不能完全伸展;2分:左側(cè)(癱瘓側(cè))前肢不能伸展;3分:行走時,大鼠向左側(cè)(癱瘓側(cè))轉(zhuǎn)大圈;4分:行走時,大鼠向左側(cè)(癱瘓側(cè))轉(zhuǎn)小圈;5分:行走時,大鼠身體向左側(cè)(癱瘓側(cè))傾倒[8]。
1.3.2 腦含水量的測定 將成功入組的大鼠在相應(yīng)時間點麻醉后斷頭處死,取出完整腦組織,前去額極,后去部分枕葉,留取腦組織中間部分厚約4 mm。將腦組織放入事先稱重的錫箔紙中包好稱重,減去錫箔紙重量即得濕重。將包有錫箔紙的腦組織放入95℃烤箱內(nèi)烘干24 h,取出待測腦組織恢復(fù)到室溫,反復(fù)稱量至恒重,減去錫箔紙重量即得干重。腦組織含水量:(濕重-干重)/濕重×100%。
1.3.3 腦梗死體積百分比測定 大鼠麻醉斷頭處死后,取出完整新鮮腦組織,連續(xù)切成2 mm厚的冠狀組織切片,置于新鮮配制的2%的2,3,5-三苯基四唑氮紅(triphenyltetrazolium chloride,TTC)中,37℃孵育30 min。用Olympus SP560數(shù)碼相機(jī)采取圖像,Image Pro-Plus 5.1分析系統(tǒng)對圖片進(jìn)行分析??偣K荔w積=總梗死面積×腦片的厚度。水腫修正后梗死體積=對側(cè)半球體積-(損傷側(cè)半球體積-損傷側(cè)半球梗死體積)。梗死體積百分比(%)=修正后梗死體積/對側(cè)半球體積。
1.3.4 免疫組織化學(xué)法檢測Notch 1和NF-κB陽性細(xì)胞 按照SP試劑盒說明書(北京中杉生物工程有限公司)進(jìn)行免疫組織化學(xué)染色。所用Notch 1兔抗大鼠多克隆抗體(1∶400,Abcam Biotechnology),NF-κB P65兔抗大鼠多克隆抗體(1∶150,Santa Cruz Biotechnology)。光鏡下胞質(zhì)中棕黃色顆粒為陽性產(chǎn)物。
1.3.5 Western blot法檢測Notch 1和NF-κB蛋白按照總蛋白提取試劑盒說明書(北京普利萊公司)提取蛋白,BCA蛋白檢測試劑盒(美國Novagen)測定蛋白濃度。取等質(zhì)量的樣本蛋白(30 μg),進(jìn)行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(初始電壓80 V 1 h,后100 V 1 h);將標(biāo)本蛋白轉(zhuǎn)移至PDVF膜上;TBST洗滌3次,每次5 min;加入TBST稀釋的一抗(兔抗大鼠Notch 1抗體,1∶300,Abcam Biotechnology,兔抗大鼠NF-κB P65抗體,1∶100,Santa Cruz Biotechnology),4℃搖床過夜。TBST洗滌3次,每次10 min;封閉2 h后加入熒光標(biāo)記的二抗工作液(1∶6000,Rockland),室溫下避光振蕩1 h。TBST洗滌3次,每次10 min;圖像掃描分析。
采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析。計量資料以表示,多組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA)和SNK-q檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
與vehicle-control組相比,CUR組中Notch 1和NF-κB表達(dá)下調(diào),比較差異有顯著性(P<0.05)。見表1、圖1和圖2。
與vehicle-control組相比,CUR組降低MCAO后48 h時神經(jīng)功能評分,比較差異有顯著性(P<0.05)。見圖3。
用干濕重法測得的腦組織含水量結(jié)果顯示:sham組為(78.16±8.00)%,vehicle-control組為(83.71±7.00)%,CUR組的腦組織含水量較vehicle-control組有所下降,為(80.42±9.00)%,比較差異有顯著性(P<0.05)。見圖4A。
腦梗死體積測定結(jié)果顯示,CUR組為(28.94±6.20)%,低于vehiclecontrol組的(40.08±3.66)%,比較差異有顯著性(P<0.05)。見圖4B。
表1 免疫組織化學(xué)陽性細(xì)胞數(shù)的動態(tài)表達(dá)
圖1 免疫組織化學(xué)陽性細(xì)胞數(shù)的動態(tài)表達(dá)
姜黃素是從姜科姜黃屬植物的根莖中提取的一種植物多酚,是姜黃發(fā)揮藥理作用最重要的活性成分,具有抗炎、抗氧化、抗腫瘤、保護(hù)肝腎功能等多種生物學(xué)功能。在宮頸癌的研究中發(fā)現(xiàn),姜黃素可通過降低Notch和NF-κB的表達(dá)起到抗癌作用,說明姜黃素與Notch通路間存在聯(lián)系[9-10]。姜黃素用于治療缺血性腦血管病,可減少腦水腫和梗死面積,改善神經(jīng)功能學(xué)評分,其作用機(jī)制尚未明確。研究證實,姜黃素能升高超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)水平,降低腦缺血病灶周圍的氧化應(yīng)激反應(yīng),挽救缺血半暗帶的神經(jīng)元,減輕缺血后腦損傷。炎癥反應(yīng)在缺血后腦損傷機(jī)制中的作用已得到共識,NF-κB作為炎癥反應(yīng)的核心因子,在缺血性腦損傷中起到重要作用。姜黃素通過抑制NF-κB的表達(dá),干擾下游基因的轉(zhuǎn)錄發(fā)揮抗炎作用。對于姜黃素的抗炎作用是否可作為其腦保護(hù)作用機(jī)制之一,本實驗結(jié)果提示,姜黃素可同步降低缺血后腦組織中NF-κB和Notch 1的表達(dá),推測Notch信號通路可能通過調(diào)節(jié)NF-κB的表達(dá)參與姜黃素的腦保護(hù)作用。
圖2 不同時間點測定Western blot蛋白表達(dá)水平
圖3 不同組別神經(jīng)功能學(xué)評分
圖4 姜黃素對腦含水量及梗死體積的影響
1 Lopes LR,Zekavati A,Syrris P,et al. Genetic complexity in hypertrophic cardiomyopathy revealed by high-throughput sequencing[J]. J Med Genet,2013,50:228-239.
2 Oya S,Yoshikawa G,Takai K,et al. Attenuation of Notch signaling promotes the differentiation of neural progenitors into neurons in the hippocampal CA1 region after ischimic injury[J]. Neuroscience,2009,158:683-692.
3 Chen J,Zacharek A,Li A,et al. Atorvastatin promotes presenilin-1 expression and Notch 1 activity and increases neural progenitor cell proliferation after stroke[J]. Stroke,2008,39:220-226.
4 Hellstr?m M,Phng LK,Hofmann JJ,et al. Dll4 signalling through Notch 1 regulates formation of tip cells during angiogenesis[J]. Nature,2007,455:776-780.
5 Arumugam TV,Chan SL,Jo DG,et al. Gamma secretase-mediated Notch signaling worsens brain damage and functional outcome in ischemic stroke[J].Nat Med,2006,12:621-623.
6 Chan WH,Wu HJ. Protective effects of curcumin on methylglyoxal-induced oxidative DNA damage and cell injury in human mononuclear cells[J]. Acta Pharmacol Sin,2006,27:1192-1198.
7 Tong QS,Zheng LD,Lu P,et al. Apoptosis-inducing effects of curcumin derivatives in human baldder cancer cells[J]. Anticancer Drugs,2006,17:279-287.
8 Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniotomy in rats[J]. Stroke,1989,20:84-91.
9 Hackler L Jr,ózsvári B,Gyuris M,et al. The curcumin analog C-150,influencing NF-κB,UPR and Akt/Notch pathways has potent anticancer activity in vitro and in vivo[J]. PLoS One,2016,11:e0149832.
10 Liu S,Cao Y,Qu M,et al. Curcumin protects against stroke and increases levels of Notch intracellular domain[J]. Neurol Res,2016,38:553-559.