李曉月，張晶晶，張紅建，周 聰，肖安紅,2,*

（1.武漢輕工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院，湖北 武漢 430023；2.湖北省農(nóng)產(chǎn)品加工與轉(zhuǎn)化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，湖北 武漢 430023）

菊粉對(duì)反式脂肪酸致小鼠胰島素抵抗的影響

李曉月1，張晶晶1，張紅建1，周 聰1，肖安紅1,2,*

（1.武漢輕工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院，湖北 武漢 430023；2.湖北省農(nóng)產(chǎn)品加工與轉(zhuǎn)化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，湖北 武漢 430023）

目的：研究菊粉對(duì)反式脂肪酸所致小鼠胰島素抵抗的影響。方法：采用反式脂肪酸飼料誘導(dǎo)建立小鼠高脂血癥模型，分別給予低、中、高3 種劑量的菊粉，測(cè)定小鼠胰島素抵抗相關(guān)指標(biāo)。結(jié)果：反式脂肪酸的攝入導(dǎo)致小鼠血糖、血清胰島素水平和胰島素抵抗指數(shù)極顯著增加（P＜0.01），胰島素敏感指數(shù)、胰島β細(xì)胞功能指數(shù)和總超氧化物歧化酶活性極顯著降低（P＜0.01）。菊粉干預(yù)能夠降低小鼠血糖水平和胰島素抵抗指數(shù)，提高胰島素敏感指數(shù)和增強(qiáng)胰島β細(xì)胞功能，且菊粉高劑量干預(yù)組與反式脂肪酸組相比，差異均極顯著（P＜0.01），效果最好。結(jié)論：反式脂肪酸能夠?qū)е滦∈笠葝u素抵抗，菊粉干預(yù)能夠改善小鼠的胰島素抵抗?fàn)顩r，且高劑量組效果最好。

反式脂肪酸；菊粉；小鼠；胰島素抵抗；高脂血癥

胰島素抵抗（insulin resistance，IR）是指胰島素靶器官如脂肪組織、肝臟、肌肉對(duì)胰島素的敏感性降低[1]?！肮餐寥缹W(xué)說(shuō)”[2-4]認(rèn)為IR普遍存在于糖尿病、高血壓、血脂紊亂及肥胖等疾病中[2-5]，是多種代謝性疾病的共同危險(xiǎn)因素，是代謝紊亂的重要表現(xiàn)。氧化應(yīng)激是指機(jī)體在遭受各種有害刺激時(shí)，體內(nèi)高活性分子如活性氧自由基（reactive oxygen species，ROS）和活性氮自由基（reactive nitrogen species，RNS）產(chǎn)生過(guò)多，氧化程度超出氧化物的清除速度，氧化系統(tǒng)和抗氧化系統(tǒng)失衡，從而導(dǎo)致組織損傷[6]。氧化應(yīng)激與IR關(guān)系密切，是IR的病理學(xué)基礎(chǔ)之一[7]。反式脂肪酸（trans fatty acids，TFA）是具有反式構(gòu)象碳-碳雙鍵的所有非共軛不飽和脂肪酸的總稱。研究表明，TFA的過(guò)多攝入會(huì)導(dǎo)致機(jī)體血脂異常及糖尿病等疾病[8]。

菊粉又稱菊糖，主要來(lái)源于菊芋塊根，是D-呋喃果糖經(jīng)β-1,2-糖苷鍵聚合而成的一種果聚糖。菊粉是自然界中天然存在的可溶性膳食纖維之一，廣泛存在于約3.6萬(wàn) 種植物中[9]。研究表明，每日攝食2 g菊粉對(duì)控制人的體質(zhì)量，改善腸道功能，控制血糖水平及防止機(jī)體失調(diào)有很大幫助[10]，因此，研究菊粉對(duì)IR的改善作用具有重要意義。

本實(shí)驗(yàn)以高脂血癥-IR-氧化應(yīng)激為主線，探討菊粉對(duì)反式脂肪酸致高脂血癥小鼠IR的影響。首先用反式脂肪酸飼料喂養(yǎng)小鼠，建立小鼠高脂血癥模型，按人體推薦量[11]的5、10、20 倍設(shè)計(jì)菊粉低、中、高3 個(gè)劑量組對(duì)高脂血癥模型小鼠進(jìn)行灌胃，研究菊粉對(duì)反式脂肪酸誘導(dǎo)小鼠IR的影響。

1 材料與方法

1.1 動(dòng)物、材料與試劑

昆明種雄性小鼠90 只，體質(zhì)量（20±2）g，湖北省疾病預(yù)防控制中心提供，動(dòng)物合格許可證編號(hào)：SCXK（鄂）2008-0005。

菊粉（純度94.46%）基本成分（質(zhì)量分?jǐn)?shù)，下同）：水分4.37%、蛋白質(zhì)0.02%、脂肪1.1%、灰分0.13%、總糖98.24%、還原糖3.78%。

高密度脂蛋白膽固醇（high density lipoprotein cholesterol，HDL-C）試劑盒、低密度脂蛋白膽固醇（low density lipoprotein cholesterol，LDL-C）試劑盒、甘油三酯（triglyceride，TG）試劑盒、總膽固醇（total cholesterol，TC）試劑盒、總超氧化物歧化酶（total superoxide dismutase，T-SOD）試劑盒 南京建成生物工程研究所；胰島素酶聯(lián)免疫吸附試劑盒 上海博古生物科技有限公司。

小鼠飼料：普通基礎(chǔ)飼料由湖北省疾病預(yù)防控制中心提供，高脂飼料和10% TFA飼料均為本實(shí)驗(yàn)自制[12]。飼料配方見(jiàn)表1。

表1 飼料配方及成分Table 1 Formula and ingredients of feeds %

1.2 儀器與設(shè)備

ELX800型酶標(biāo)儀 美國(guó)Bio-Tek公司；血糖試紙、便攜式血糖儀 北京怡成生物電子技術(shù)有限公司。

1.3 方法

1.3.1 高脂血癥小鼠模型建立

實(shí)驗(yàn)采用普通高脂模型[13]和10% TFA高脂模型兩種方法[14]。造模成功的標(biāo)志為：血清TC含量＞5.72 mmol/L，或血清TG含量＞1.70 mmol/L，或TC含量＞5.72 mmol/L且TG含量＞1.70 mmol/L，或HDL-C含量＜0.9 mmol/L[12]。

1.3.2 分組及喂養(yǎng)方法

實(shí)驗(yàn)初期小鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)，1 周后隨機(jī)分為9 組，每組10 只（分組及飼養(yǎng)方法見(jiàn)表2）。4 周后，小鼠空腹24 h后取血測(cè)TG、TC、HDL-C、LDL-C水平，T-SOD活性、空腹血糖（fasting blood glucose，F(xiàn)BG）含量和空腹胰島素（fasting insulin，F(xiàn)IN）水平。實(shí)驗(yàn)過(guò)程中小鼠自由飲水?dāng)z食，每日上午灌胃。飼養(yǎng)環(huán)境：溫度18～22 ℃，相對(duì)濕度45%～60%、明暗12 h/12 h。

表2 實(shí)驗(yàn)小鼠分組Table 2 Experimental groups

1.3.3 各項(xiàng)指標(biāo)的測(cè)定及計(jì)算方法

1.3.3.1 血清學(xué)指標(biāo)的測(cè)定

禁食24 h后，小鼠眼眶取血，離心取上清液，測(cè)TC、TG、HDL-C、LDL-C水平，T-SOD活性及FIN水平。

1.3.3.2 FBG含量的測(cè)定

小鼠空腹24 h后，鼠尾取血，采用怡成血糖儀和血糖試紙進(jìn)行測(cè)定。

1.3.3.3 胰島素抵抗指數(shù)（homeostasis model assessmentinsulin resistance， HOMA-IR）測(cè)定

根據(jù)已測(cè)定的FBG和FIN水平，由公式（1）計(jì)算HOMA-IR。

1.3.3.4 胰島β細(xì)胞功能指數(shù)（homeostasis model assessment-β，HOMA-β）測(cè)定

根據(jù)已測(cè)定的FBG和FIN水平，由公式（2）計(jì)算HOMA-β。

1.3.3.5 小鼠胰島素敏感指數(shù)（insulin sensitivity index，ISI）測(cè)定

根據(jù)已測(cè)定的FBG和FIN水平，由公式（3）計(jì)算ISI。

1.4 數(shù)據(jù)處理

2 結(jié)果與分析

2.1 高脂血癥小鼠造模結(jié)果

表3 高脂血癥小鼠造模結(jié)果Table 3 Successful establishment of hyperlipidemia mouse model

由表3可知，HF組TC＞5.72 mmol/L、TG＞1.70 mmol/L；TFA組TC＞5.72 mmol/L，TG＞1.70 mmol/L，HDL-C＜0.9 mmol/L。因造模成功的標(biāo)志為：血清TC＞5.72 mmol/L，或血清TG＞1.70 mmol/L，或TC＞5.72 mmol/L且TG＞1.70 mmol/L，或HDL-C＜0.9 mmol/L[12]。由以上結(jié)果可知，HF組和TFA組高脂血癥小鼠造模成功。且TFA組各項(xiàng)指標(biāo)與HF組相比差異極顯著（P＜0.01），說(shuō)明TFA與HF相比對(duì)高脂血癥有加劇作用。

2.2 TFA對(duì)高脂血癥小鼠IR的影響

正常血糖鉗夾技術(shù)是目前國(guó)際公認(rèn)的檢測(cè)胰島素敏感性的方法，被認(rèn)為是檢測(cè)胰島素抵抗的金標(biāo)準(zhǔn)[15]。但由于其操作過(guò)程復(fù)雜、費(fèi)用昂貴而使得其應(yīng)用受限。穩(wěn)態(tài)模型和胰島素敏感指數(shù)[16-17]由于操作和測(cè)定過(guò)程簡(jiǎn)單、準(zhǔn)確性高而成為臨床上評(píng)價(jià)IR的主要標(biāo)準(zhǔn)。穩(wěn)態(tài)模型的兩個(gè)主要指標(biāo)HOMA-IR和HOMA-β分別與機(jī)體IR程度和胰島β細(xì)胞功能存在良好的相關(guān)性[18]，HOMA-IR升高說(shuō)明IR程度增強(qiáng)，HOMA-β降低表明胰島β細(xì)胞功能減弱。

人體代謝活動(dòng)可以產(chǎn)生少量ROS，當(dāng)機(jī)體受到損傷時(shí)，ROS產(chǎn)生過(guò)多或清除減少，導(dǎo)致機(jī)體抗氧化防御系統(tǒng)失衡，造成機(jī)體氧化應(yīng)激。高脂飲食能誘導(dǎo)機(jī)體處于氧化應(yīng)激狀態(tài)，導(dǎo)致機(jī)體氧化損傷，干擾骨骼肌組織對(duì)葡萄糖的攝取而誘導(dǎo)IR[19-21]。T-SOD是機(jī)體內(nèi)酶類(lèi)主要自由基清除劑之一，可減輕自由基對(duì)生物膜和其他組織造成的損傷。因此可以利用T-SOD活力高低間接反映機(jī)體抗氧化系統(tǒng)的功能水平[22]。

表4 TFA對(duì)高脂血癥小鼠IR的影響Table 4 Effects of transtrans fatty acids on insulin resistance in mice

由表4可知，HF、TFA兩組與C組相比，F(xiàn)BG、FIN水平和HOMA-IR顯著升高（P＜0.01），ISI、HOMA-β和T-SOD活力顯著降低（P＜0.01）。說(shuō)明高脂血癥小鼠產(chǎn)生了IR。TFA組與HF組相比，F(xiàn)BG水平，HOMA-IR、ISI和T-SOD活力差異均極顯著（P＜0.01），HOMA-β顯著降低（P＜0.05），F(xiàn)IN水平升高但差異并不顯著（P＞0.05）?？赡苁怯捎谖桂B(yǎng)時(shí)間過(guò)短，在FBG水平極顯著升高的情況下，胰島β細(xì)胞無(wú)須分泌大量的胰島素來(lái)滿足機(jī)體代謝的需要[23]。以上結(jié)果說(shuō)明TFA更易導(dǎo)致高脂血癥小鼠IR。

2.3 菊粉對(duì)高脂血癥小鼠IR影響的結(jié)果及分析

2.3.1 菊粉對(duì)小鼠血糖水平的影響

表5 菊粉對(duì)反式脂肪酸致高脂血癥小鼠IR的影響Table 5 Effect of inulin on insulin resistance in trans fatty acids-fed mice

由表5可知，采用低、中、高3 種劑量的菊粉對(duì)高脂血癥小鼠進(jìn)行干預(yù)，均能不同程度地降低小鼠的FBG水平。其中，高劑量組的效果最好（P＜0.01）。Kim等[24]使用含10 mmol/L葡萄糖和10 g/L菊粉的等滲電解質(zhì)溶液（pH 7.4）對(duì)大鼠進(jìn)行灌腸實(shí)驗(yàn)，結(jié)果表明灌注液中的菊粉能明顯抑制空腸對(duì)葡萄糖的吸收（P＜0.05），研究人員指出可能是菊粉提高了黏度，導(dǎo)致腸黏膜厚度增加，從而降低葡萄糖吸收的程度。

2.3.2 菊粉對(duì)小鼠血清胰島素水平的影響

由表5可知，菊粉干預(yù)能夠降低小鼠的FIN水平，但是差異并不顯著（P＞0.05）。Causey等[25]證明菊粉可以降低血糖水平（P＜0.05），但是對(duì)胰島素水平?jīng)]有顯著影響（P＞0.05），其原因可能是菊粉添加量低且喂養(yǎng)時(shí)間短，不足以改善嚴(yán)重受損的胰島β細(xì)胞的功能。

2.3.3 菊粉對(duì)小鼠ISI、HOMA-IR和HOMA-β的影響

由表5可知，菊粉干預(yù)增強(qiáng)了小鼠的ISI和HOMA-β，降低了小鼠的HOMA-IR。其中高劑量組效果最佳。Kumar等[26]發(fā)現(xiàn)麥麩和瓜爾膠能增強(qiáng)糖尿病大鼠的ISI，降低HOMA-IR，與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果基本一致。

2.3.4 菊粉對(duì)小鼠抗氧化能力的影響

由表5可知，菊粉干預(yù)使小鼠的T-SOD活力極顯著升高（P＜0.01），增強(qiáng)了小鼠的抗氧化能力，且高劑量組的效果最好。原因可能是菊粉能夠清除體內(nèi)積累的自由基，減輕了過(guò)多自由基對(duì)機(jī)體的損傷。

3 結(jié) 論

添加10% TFA的高脂飼料可致小鼠高脂血癥并能夠誘導(dǎo)小鼠產(chǎn)生IR。菊粉能夠改善小鼠的IR狀況，且高劑量組效果優(yōu)于中、低劑量組。菊粉可使高脂血癥小鼠的抗氧化能力提高，從而緩解IR程度。

[1] 石梅蘭, 李強(qiáng)翔. 大黃素在糖尿病胰島素抵抗中的作用[J]. 中國(guó)老年學(xué)雜志, 2012, 32(19): 4351-4353.

[2] RESNICK H E, HOWARD B V. Diabetes and cardiovascular disease[J]. Annual Review of Medicine, 2002, 53(1): 245-267.

[3] ZEYDA M, STULNIG T M. Obesity, inflammation, and insulin resistance-a mini-review[J]. Gerontology, 2009, 55(4): 379-386.

[4] 楊暉, 李藝, 程玲, 等. 電針與飲食調(diào)整對(duì)營(yíng)養(yǎng)性肥胖大鼠胰島素抵抗的影響[J]. 中西醫(yī)結(jié)合學(xué)報(bào), 2007, 5(5): 546-549.

[5] CHEUNG O, SANYAL A J. Recent advances in nonalcoholic fatty liver disease[J]. Current Opinion in Gastroenterology, 2010, 26(3): 202-208.

[6] 趙麗. Nrf2/HO-1途徑對(duì)高脂飲食誘導(dǎo)的大鼠胰島素抵抗的保護(hù)作用和機(jī)制研究[D]. 西安: 第四軍醫(yī)大學(xué), 2012: 25-26.

[7] SUCIU I, NEGREAN V, SAMPELEAN D. The oxidative stress in the development of diabetes chronic complications in the elderly[J]. Romanian Journal of Internal Medicine, 2003, 42(2): 395-406.

[8] 李璇, 鄭建仙. 脂肪與心血管疾病相互關(guān)系最新進(jìn)展及對(duì)食品工業(yè)的指導(dǎo)意義[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 1998, 24(1): 74-79.

[9] 許勤虎. 菊粉的功能及應(yīng)用研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2002, 23(增刊1): 141-145.

[10] 湯鋒, 楊武, 王麗, 等. 菊粉功能特性的研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2010, 31(5): 318-320.

[11] World Health Organization. Diet, nutrition and the prevention of chronic disease[R]. Geneva: WHO, 1991.

[12] 李曉月, 張晶晶, 張紅建, 等. 玉米皮膳食纖維對(duì)反式脂肪酸致高脂血癥小鼠脂代謝的影響[J]. 中國(guó)釀造, 2013, 32(11): 32-35.

[13] 張世卿, 佟麗. 胰島素抵抗作用發(fā)生機(jī)制及實(shí)驗(yàn)?zāi)Ｐ偷难芯窟M(jìn)展[J].中藥新藥與臨床藥理, 2012, 23(3): 364-368.

[14] 席路. 玉米皮膳食纖維對(duì)TFA致高脂血癥小鼠血脂調(diào)節(jié)及抗氧化能力的研究[D]. 武漢: 武漢工業(yè)學(xué)院, 2011: 51-58.

[15] 柏建清. 有氧運(yùn)動(dòng)對(duì)大鼠胰島素敏感性的時(shí)相性影響[J]. 中國(guó)老年學(xué)雜志, 2012, 32(20): 4467-4469.

[16] 李光偉, 潘孝仁, LILLIOJASS S, 等. 檢測(cè)人群胰島素敏感性的一項(xiàng)新指數(shù)[J]. 中華內(nèi)科雜志, 1993, 32(10): 656-660.

[17] DUNCAN M H, SINGH B M, WISE P H, et al. A simple measure of insulin resistance[J]. The Lancet, 1995, 346: 120-121.

[18] 崔慶榮, 安小平, 康學(xué)東, 等. 黃金膠囊改善2型糖尿病胰島素抵抗大鼠胰島素敏感性研究[J]. 中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志, 2010(5): 150-152.

[19] MATSUZAWA-NAGATA N, TAKAMURA T, ANDO H, et al. Increased oxidative stress precedes the onset of high-fat diet-induced insulin resistance and obesity[J]. Metabolism, 2008, 57(8): 1071-1077.

[20] REBOLLEDO O R, MARRA C A, RASCHIA A, et al. Abdominal adipose tissue: early metabolic dysfunction associated to insulin resistance and oxidative stress induced by an unbalanced diet[J]. Hormone and Metabolic Research, 2008, 40(11): 794-800.

[21] LI Lanfang, LI Jian. Link between oxidative stress and insulin resistance[J]. Chinese Medical Sciences Journal, 2007, 22(4): 254-259.

[22] 高丹紅. 葉黃素改善高脂飼料喂養(yǎng)大鼠動(dòng)脈粥樣硬化危險(xiǎn)因素的初步研究[D]. 武漢: 華中科技大學(xué), 2012: 36-38.

[23] MUNIYAPPA R, LEE S, CHEN H, et al. Current approaches for assessing insulin sensitivity and resistance in vivo: advantages, limitations, and appropriate usage[J]. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism, 2008, 294(1): E15-E26.

[24] KIM M, SHIN H K. The water-soluble extract of chicory reduces glucose uptake from the perfused jejunum in rats[J]. The Journal of Nutrition, 1996, 126(9): 2236-2242.

[25] CAUSEY J L, FEIRTAG J M, GALLAHER D D, et al. Effects of dietary inulin on serum lipids, blood glucose and the gastrointestinal environment in hypercholesterolemic men[J]. Nutrition Research, 2000, 20(2): 191-201.

[26] KUMAR C M, RACHAPPAJI K S, NANDINI C D, et al. Modulatory effect of butyric acid-a product of dietary fiber fermentation in experimentally induced diabetic rats[J]. The Journal of Nutritional Biochemistry, 2002, 13(9): 522-527.

Effect of Inulin on Insulin Resistance Prevention in Trans Fatty Acids-Fed Mice

LI Xiaoyue1, ZHANG Jingjing1, ZHANG Hongjian1, ZHOU Cong1, XIAO Anhong1,2,*
(1. College of Food Science and Engineering, Wuhan Polytechnic University, Wuhan 430023, China; 2. Hubei Key Laboratory for Agro-processing and Transformation, Wuhan 430023, China)

Objective: To evaluate the effect of inulin on insulin resistance in trans fatty acids-fed mice. Methods: Inulin was given at low, medium and high doses. Results: The intake of trans fatty acids elevated fasting blood glucose, fasting serum insulin, insulin resistance index signifi cantly (P < 0.01), and reduced insulin sensitivity index, islet β-cell function and T-SOD signifi cantly (P < 0.01). Inulin reduced fasting blood glucose and insulin resistance index, and increased insulin sensitivity index and islet β-cell function, especially at the high dose, showing signifi cant differences (P < 0.01) when compared with the trans fatty acid group. Conclusion: Trans fatty acids can lead to insulin resistance in mice, and the intervention of inulin can improve the symptoms, in particular at the high dose.

trans fatty acids; inulin; mice; insulin resistance; hyperlipidemia

TS202.3；TS201.4

A

1002-6630（2015）01-0201-04

10.7506/spkx1002-6630-201501038

2014-03-04

國(guó)家高技術(shù)研究發(fā)展計(jì)劃（863計(jì)劃）項(xiàng)目（2010AA023003-01）；武漢市科技計(jì)劃項(xiàng)目（201220837298-5）；武漢工業(yè)學(xué)院研究生創(chuàng)新基金項(xiàng)目（2012cx016）

李曉月（1989—），女，碩士研究生，研究方向?yàn)槭称房茖W(xué)。E-mail：lixiaoyue-540@163.com

*通信作者：肖安紅（1963—），女，教授，博士，研究方向?yàn)榧Z食油脂及植物蛋白。E-mail：1090106395@qq.com