孫 巖,郭慶興,童群義,*
(1.江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇無錫214122;2.百威英博(佛山)啤酒有限公司,廣東佛山528100)
油菜蜂花粉黃酮體外降糖活性研究
孫巖1,郭慶興2,童群義1,*
(1.江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇無錫214122;2.百威英博(佛山)啤酒有限公司,廣東佛山528100)
以總黃酮含量為考察指標(biāo),利用溶劑萃取和大孔樹脂對(duì)油菜蜂花粉乙醇提取物進(jìn)行分離純化,富集黃酮,然后對(duì)不同極性組分進(jìn)行抑制α-葡萄糖苷酶實(shí)驗(yàn),并利用紅外光譜(IR)和液-質(zhì)聯(lián)用(LC-MS)對(duì)體外降糖活性最高的組分進(jìn)行化學(xué)成分分析。結(jié)果表明,黃酮類物質(zhì)在抑制α-葡萄糖苷酶活性中起主要作用;AB-8大孔樹脂純化得到的PEFS-3組分總黃酮含量為68.77%,IC50為72.16μg/mL,遠(yuǎn)小于阿卡波糖的IC50(1124.86μg/mL),表明其抑制效果強(qiáng)于阿卡波糖;PEFS-3組分中共鑒定出5種主要物質(zhì),其中4種為槲皮素-3-O-β-D-吡喃葡萄糖基-(1→2)-O-β-D-吡喃葡萄糖苷、山奈酚-3,4’-雙-O-β-D-吡喃葡萄糖苷、異鼠李素-3-O-β-D-吡喃葡萄糖基-(1→2)-β-D-吡喃葡萄糖苷、山奈酚-3-O-β-D-吡喃葡萄糖基-(1→2)-β-D-吡喃葡萄糖苷,第5種推斷為亥茅酚苷或黃烷醇,具體結(jié)果還需進(jìn)一步研究。
油菜蜂花粉,α-葡萄糖苷酶,黃酮,液-質(zhì)聯(lián)用
α-葡萄糖苷酶是影響飲食中碳水化合物消化和吸收的關(guān)鍵酶,抑制其活性可以延緩人體對(duì)碳水化合物的降解及葡萄糖的吸收,從而抑制餐后血糖的快速升高。因此,α-葡萄糖苷酶抑制劑常被用于治療Ⅱ型糖尿病,可有效降低餐后血糖水平和減少糖尿病并發(fā)癥的發(fā)生。糖尿病尚無理想的治療方法,傳統(tǒng)磺酰脲類和雙胍類降糖藥,長期食用會(huì)產(chǎn)生依賴性和毒副作用[1]。所以,從天然產(chǎn)物中尋找高效的α-葡萄糖苷酶抑制劑成為近年的研究熱點(diǎn),且已報(bào)道天然產(chǎn)物如柑橘皮、甘草、桑葉、地榆、胡柚、降香、普洱茶、苦瓜、銀杏等大多富含黃酮、多酚、多糖等成分[2-9]。
油菜蜂花粉素有“完全營養(yǎng)庫”之稱,富含豐富的黃酮、多酚、多糖、多肽、核酸等活性成分,有多種藥用價(jià)值,能夠增強(qiáng)免疫力、抗氧化、抗輻射、降血糖等[10-11]。但鮮有關(guān)于油菜蜂花粉黃酮對(duì)α-葡萄糖苷酶抑制作用的報(bào)道。本文以油菜蜂花粉乙醇提取物不同極性組分進(jìn)行抑制α-葡萄糖苷酶實(shí)驗(yàn),旨在研究其體外降糖作用,并應(yīng)用IR和LC-MS對(duì)體外降糖活性最高的組分進(jìn)行鑒定,明確油菜蜂花粉黃酮中體外降糖的主要化學(xué)成分,為尋找更好的α-葡萄糖苷酶抑制劑提供理論依據(jù)。
1.1材料與儀器
油菜蜂花粉烘干粉碎,過100目篩,低溫保藏,江蘇省慶緣康生物科技有限公司提供;蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,≥98%,阿拉丁試劑有限公司;無水乙醇、石油醚(30~60℃)、Al(NO3)3、NaNO2、NaOH、KH2PO4、K2HPO4·3H2O、Na2CO3分析純,國藥試劑有限公司;α-葡萄糖苷酶G-5003 100UN,4-硝基苯-α-D-吡喃葡萄糖苷(PNPG) Sigma公司;阿卡波糖(“拜糖平”批號(hào)H19990205) 德國拜耳公司。
CW-2000型超聲-微波協(xié)同萃取儀超聲波固定頻率40kHz,功率50W,上海新拓分析儀器科技有限公司;UV-2100型紫外可見分光光度計(jì)尤尼柯(上海)儀器有限公司;AB104-N型電子天平Mettler-ToledoInstr(ShangHai)Ltd;FA1004型電子天平上海天平儀器廠;SHZ-D(Ⅲ)型循環(huán)水式真空泵鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;FW-80-I型高速萬能粉碎機(jī)天津泰斯特儀器有限公司;101-2-BS型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠;HHS型電熱恒溫水浴鍋上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;ES-2030型冷凍干燥儀日立公司。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制參照中國藥典[12]描述的方法并加以改進(jìn)測(cè)定總黃酮含量。準(zhǔn)確稱取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品30.00mg,用無水乙醇溶解,50W條件下超聲10min使其完全溶解,然后轉(zhuǎn)移入100mL容量瓶,用無水乙醇定容至刻度線,配制成0.3000mg/mL的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別取0、1、2、3、4、5mL蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液,依次加入0~5號(hào)25mL容量瓶中,并用蒸餾水補(bǔ)足體積到6mL;加入1mL 5.0%NaNO2,搖勻,靜置6min;然后加入1mL 10%Al(NO3)3,搖勻,靜置6min;再加入10mL 4.0%NaOH,用50%乙醇定容至刻度,搖勻,靜置10min;于510nm下測(cè)定吸光值。
1.2.2黃酮的制備及純化稱取2kg過篩的油菜蜂花粉,用超聲-微波協(xié)同萃取法[13]提取黃酮類物質(zhì),過濾提取液,減壓濃縮得浸膏,加適量蒸餾水混懸,依次用石油醚、乙酸乙酯、正丁醇溶液萃取,直至有機(jī)溶劑層無色,收集有機(jī)溶劑層溶液,分別減壓濃縮得浸膏,然后加適量水配制成適宜濃度,用AB-8大孔吸附樹脂進(jìn)行純化,先用去離子水洗脫至流出液無色,再依次用20%、35%、55%、75%、95%的乙醇進(jìn)行洗脫,分別收集每個(gè)梯度的洗脫液,減壓濃縮,然后再反復(fù)上樣,梯度洗脫,最終得20%、35%、55%、75%、95%乙醇洗脫層,減壓濃縮得浸膏,分別命名為PEFS-1組分、PEFS-2組分、PEFS-3組分、PEFS-4組分和PEFS-5組分,冷藏備用。
1.2.3黃酮含量的測(cè)定按1.2.1方法分別測(cè)定石油醚萃余層、乙酸乙酯層、正丁醇層、剩余水層、PEFS-1組分、PEFS-2組分、PEFS-3組分、PEFS-4和PEFS-5組分總黃酮濃度,并取適量溶液依照GB 5009.3-2010[14]測(cè)定固體物質(zhì)干重,并按下式計(jì)算提取得到的總黃酮含量。
式中:C—測(cè)得提取液濃度,mg/mL;V—干燥提取液體積,mL;M—干燥后樣品質(zhì)量,g。
1.2.4黃酮對(duì)α-葡萄糖苷酶活性的影響在蘇堯堯[15]的基礎(chǔ)上稍做修改,具體方法如下:在一定量0.1mol/L pH6.8的磷酸鉀緩沖液中,加入100μL待測(cè)樣品溶液和100μL的0.5U/mL的α-葡萄糖苷酶(溶解于0.1mol/L pH6.8的磷酸鉀緩沖液),混勻后在37℃預(yù)熱5min,然后加入100μL 4-硝基苯-α-D-吡喃葡萄糖苷(20mmol/L,溶解于0.1mol/L pH6.8的磷酸鉀緩沖液),混勻后在37℃反應(yīng)10min,加入0.1mol/L Na2CO3溶液5mL終止反應(yīng),用分光光度計(jì)測(cè)定反應(yīng)液在410nm處的吸光值。用等量的0.1mol/L pH6.8的磷酸鉀緩沖液代替α-葡萄糖苷酶溶液作為背景組。同時(shí)以阿卡波糖作陽性參照物。每個(gè)樣品做3個(gè)平行,取平均值,計(jì)算抑制率。
式中:A空白為不加待測(cè)樣品反應(yīng)后的吸收值;A樣品為加入待測(cè)樣品反應(yīng)后的吸收值;A背景為只加待測(cè)樣品的吸收值。
1.2.5黃酮類物質(zhì)的IR檢測(cè)將以上制備PEFS-3組分,經(jīng)冷凍干燥后取少量于瑪瑙研缽中,加入適量溴化鉀,研磨至細(xì)后壓片。把壓好的透明薄片放入紅外光譜儀中,在400~4000cm-1范圍內(nèi)掃描,記錄PEFS-3組分的紅外吸收光譜。
1.2.6黃酮類物質(zhì)的LC-MS檢測(cè)取適量經(jīng)冷凍干燥的PEFS-3組分,用色譜純甲醇溶解,再用0.45μm微孔濾膜過濾,制成澄清透明的液體,用于LC-MS分析。
色譜條件:流速0.3mL/min;進(jìn)樣體積:0.3μL;檢測(cè)波長:200~400nm;色譜柱:Waters Acquity UPLC BEH Shield RP C18柱(100mm×2.1mm,1.7μm);柱溫:45℃;樣品溫度20℃;流動(dòng)相:乙腈/0.1%甲酸;梯度洗脫:0~8min,乙腈10%~60%;8~15min,60%~100%。
質(zhì)譜條件:離子源:ESI電離源;電噴霧離子化負(fù)離子采集模式(ESI-);m/z范圍:50~1000;毛細(xì)管電壓:3.0kV;錐孔電壓:20.0V;碰撞能量:4.0eV,離子源溫度:100℃;脫溶劑溫度:400℃。
2.1蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
以蘆丁溶液濃度為橫坐標(biāo)x,吸光值為縱坐標(biāo)y,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。標(biāo)準(zhǔn)曲線為:y=11.4572x-0.0023,R2= 0.9995。
2.2黃酮對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用
通過實(shí)驗(yàn)結(jié)果表1可知,使用不同極性的溶劑分級(jí)萃取提取液,隨著萃取溶劑極性變大,黃酮類化合物的含量逐漸升高,但對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用無明顯規(guī)律,可能是因?yàn)闃悠分锌傸S酮含量較低,其中富含的多糖、皂苷等也起到了一定的作用。其中,正丁醇層的總黃酮含量最高,可知使用正丁醇能充分地富集油菜蜂花粉中的黃酮類化合物。
樣品經(jīng)AB-8大孔吸附樹脂進(jìn)行純化后,得到的PEFS-1組分、PEFS-2組分、PEFS-3組分總黃酮含量明顯提高,并且對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制程度與各組分總黃酮含量呈正相關(guān),因此,可認(rèn)為當(dāng)油菜蜂花粉提取分離物中總黃酮含量達(dá)到一定程度后,對(duì)α-葡萄糖苷酶起到主要抑制作用的活性因子為黃酮類物質(zhì)。PEFS-3組分含量為68.77%,IC50為72.16μg/mL,遠(yuǎn)小于阿卡波糖的IC50(1124.84μg/mL),表明其抑制效果強(qiáng)于阿卡波糖。
表1 不同含量的黃酮對(duì)α-葡萄糖苷酶的抑制作用Table 1 The inhibitory effect of flavonoids in different purity on α-glucosidase
2.3黃酮類物質(zhì)的IR檢測(cè)
圖1 黃酮的紅外光譜圖Fig.1 IR Spectrum of flavonoids
由圖1可知,3422.83cm-1處寬而強(qiáng)的吸收峰是黃酮類物質(zhì)中酚羥基或者雜質(zhì)糖中的羥基的伸縮振動(dòng)峰,信號(hào)值較強(qiáng)說明羥基數(shù)目較多;2927.80cm-1處的弱吸收峰是芳環(huán)上碳?xì)滏I的伸縮振動(dòng)峰,信號(hào)值較弱表明飽和碳上的氫較少;1646.65cm-1處出現(xiàn)羰基的特征吸收峰,這是由于其伸縮振動(dòng)引起的,信號(hào)值強(qiáng)說明伸縮振動(dòng)較強(qiáng);1384.36、1155.99、1080.68、1021.51cm-1是碳氧鍵的伸縮振動(dòng)峰,信號(hào)值較強(qiáng);1000~600cm-1之間的峰是苯環(huán)上取代基位置引起的特征吸收峰[16-18]。
2.4黃酮類物質(zhì)的LC-MS檢測(cè)
黃酮類化合物是具有兩個(gè)苯環(huán)(A-環(huán)與B-環(huán))通過中央三碳相互連接而成的C6-C3-C6基本結(jié)構(gòu)的天然產(chǎn)物。由于它們的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)使得多數(shù)黃酮類化合物在紫外區(qū)300~350nm和240~285nm有兩個(gè)特征吸收峰[17-18]。如圖2和圖3所示,經(jīng)AB-8純化的提取液主要含有5種化合物,前4種化合物在284nm和350nm處都有特征吸收峰,可能為黃酮類物質(zhì),第5種化合物僅在284nm處有特征吸收峰,可能是異黃酮或二氫黃酮(醇)。
圖2 PEFS-3組分的液相圖Fig.2 HPLC diagram of PEFS-3
圖3 PEFS-3組分在284nm(a)和350nm(b)處的液相圖Fig.3 HPLC diagram PEFS-3 at 284nm(a)and 350nm(b)
實(shí)驗(yàn)利用飛行時(shí)間質(zhì)譜對(duì)液相色譜圖中出峰的5種主要物質(zhì)進(jìn)行了研究,分別得到其1、2級(jí)質(zhì)譜圖(圖4~圖8)。其化合物1~4的MS圖中分子離子峰及特征峰明顯,主要是分子離子丟失1個(gè)和2個(gè)葡萄糖的碎片離子峰,根據(jù)阿布拉江·克依木[19]、郭娟麗[20]及本課題組之前的研究報(bào)告[13],分析結(jié)果如表2所示。
對(duì)于化合物5,1級(jí)質(zhì)譜給出準(zhǔn)分子離子峰[M-2H]-436.1814,可知該化合物的分子量為438;2級(jí)質(zhì)譜給出[M-2H]-丟失1個(gè)葡萄糖的碎片離子峰[(M-3H)-162]-273.1564,推斷可能為亥茅酚苷[21-23]或黃烷醇[17]。楊潔[24]、邢建軍等[25]也曾從油菜蜂花粉中提取得到該物質(zhì),推斷為黃酮苷類,并未做出具體判斷。目前也鮮有關(guān)于從油菜蜂花粉中分離得到亥茅酚苷的報(bào)道,具體結(jié)果有待進(jìn)一步研究。
表2 樣品的質(zhì)譜分析結(jié)果Table 2 Analysis results of the sample obtained by MS
圖4 化合物1的質(zhì)譜圖及結(jié)構(gòu)式Fig.4 The mass spectrum and structural formula of compound 1
圖5 化合物2的質(zhì)譜圖及結(jié)構(gòu)式Fig.5 The mass spectrum and structural formula of compound 2
圖6 化合物3的質(zhì)譜圖及結(jié)構(gòu)式Fig.6 The mass spectrum and structural formula of compound 3
圖7 化合物4的質(zhì)譜圖及結(jié)構(gòu)式Fig.7 The mass spectrum and structural formula of compound 4
圖8 化合物5的質(zhì)譜圖及結(jié)構(gòu)式Fig.8 The mass spectrum and structural formula of compound 5
結(jié)果表明,正丁醇對(duì)油菜蜂花粉黃酮有很好的富集作用;當(dāng)油菜蜂花粉總黃酮含量達(dá)到一定值后,黃酮類物質(zhì)在抑制α-葡萄糖苷酶活性中起主要作用;AB-8大孔樹脂純化得到的PEFS-3組分總黃酮含量為68.77%,IC50為72.16μg/mL,遠(yuǎn)小于阿卡波糖的IC50,表明其抑制效果強(qiáng)于阿卡波糖。
利用IR和LC-MS對(duì)PEFS-3組分的化學(xué)成分進(jìn)行分析,共推斷出5種主要物質(zhì),其中4種為槲皮素-3-O-β-D-吡喃葡萄糖基-(1→2)-O-β-D-吡喃葡萄糖苷、山奈酚-3,4’-雙-O-β-D-吡喃葡萄糖苷、異鼠李素-3-O-β-D-吡喃葡萄糖基-(1→2)-β-D-吡喃葡萄糖苷、山奈酚-3-O-β-D-吡喃葡萄糖基-(1→2)-β-D-吡喃葡萄糖苷,第5種推斷為亥茅酚苷或黃烷醇,因目前還未見關(guān)于從油菜蜂花粉中分離得到亥茅酚苷或符合該質(zhì)譜裂解規(guī)律的黃烷醇的報(bào)道,具體結(jié)果還有待進(jìn)一步研究。
[1]肖更生,萬利秀,徐玉娟,等.柑橘皮黃酮降血糖作用的研究[J].現(xiàn)代食品科技,2013,29(4):698-799.
[2]孫佳明,宗穎,雷岱虹,等.甘草乙醇提取物的體外抑制α-葡萄糖、抗氧化活性及HPLC-MS分析[J].中成藥,2013,35(9):1943-1946.
[3]羅明琽.桑葉有效部位降血糖作用與JNK信號(hào)通路的關(guān)系[D].廣州:廣州中醫(yī)藥大學(xué),2013.
[4]陳麗華,潘自紅,曹云麗,等.地榆中α-葡萄糖苷酶抑制活性因子的篩選[J].食品研究與開發(fā),2013,34(9):30-36.
[5]張俊,何靜,周錦云,等.胡柚中抑制α-葡萄糖苷酶活性組分的研究[J].中國食品學(xué)報(bào),2013,13(2):79-82.
[6]崔秀月.降香乙酸乙酯部分黃酮化學(xué)成分及抑制α-葡萄糖苷酶活性研究[D].長春:吉林大學(xué),2013.
[7]陳浩.普洱茶多糖降血糖及抗氧化作用研究[D].杭州:浙江大學(xué),2013.
[8]常怡.苦瓜功能成分制備及降糖效果研究[D].長沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),2012.
[9]劉洋,周慧,劉舒,等.銀杏葉中α-葡萄糖苷酶抑制劑的超濾質(zhì)譜篩選[J].高等學(xué)?;瘜W(xué)學(xué)報(bào),2013,34(4):813-818.
[10]郭雪微,盧梃,鮑艷江,等.油菜蜂花粉黃酮類化合物抗氧化等作用的臨床觀察[J].北京中醫(yī)藥,2011,30(7):488-509.
[11]楊開.蜂花粉成分分析、功能物質(zhì)提取和體外活性研究[D].杭州:浙江大學(xué),2011.
[12]中國藥典委員會(huì).中華人民共和國藥典[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010.
[13]孫巖,郭慶興,童群義.油菜花粉的化學(xué)成分研究[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2014,40(10):238-244.
[14]中華人民共和國衛(wèi)生部.GB5009.3-2010食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中水分的測(cè)定[S].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,2010.
[15]蘇堯堯,童群義.超聲微波協(xié)同萃取垂柳葉中α-葡萄糖苷酶抑制劑的研究[J].食品工業(yè)科技,2014,35(2):235-238.
[16]侯留鑫,王華清,鄭鐵松,等.一種新型茶葉籽黃酮單體的分離鑒定及其抗氧化活性[J].食品科學(xué),2013,34(21):115-120.
[17]楊梅芳.柚子黃酮類物質(zhì)提取、分離及生物特性研究[D].廣州:華南理工大學(xué),2013.
[18]宋佳.蘆筍廢棄物中黃酮化合物的純化及其性質(zhì)研究[D].無錫:江南大學(xué),2012.
[19]阿布拉江·克依木.黃酮苷類天然產(chǎn)物的質(zhì)譜分析方法研究[D].北京:中國協(xié)和醫(yī)科大學(xué),2003.
[20]郭娟麗,張培成,張智武.油菜花粉的化學(xué)成分研究[J].中國中藥雜志,2009,34(10):1235-1237.
[21]Zhao-Guang Zheng,Ru-Shang Wang,Hui-Quan Cheng,et al.Isolated perfused lung extraction and HPLC-ESI-MSn analysis for predicting bioactive components of Saposhnikoviae Radix[J].Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis,2011,54:614-618.
[22]Yu-Ge Gui,Rong Tsao,Li Li,et al.Preparative separation of chromones in plant extract of Saposhnikovia divaricata by high-performance counter-current chromatography[J].Journal of Separation Science,2011,34(5):520-526.
[23]Li Li,Yu-Ge Gui,Jiang Wang,et al.Preparative separation of chromones in plant extract of saposhnikovia divaricata by reverse-phase medium-pressure liquid chromatography and high performance counter-current chromatography[J].Journal of Liquid Chromatography&Related Technologies,2013,36(8):1043-1053.
[24]楊潔,陳純,邢建軍,等.油菜蜂花粉中黃酮類化合物的提取與鑒[J].食品科學(xué),2010,33(22):273-278.
[25]邢建軍,楊潔,鄭國偉,等.XAD-2樹脂對(duì)油菜蜂蜜中黃酮類物質(zhì)分離條件的優(yōu)化[J].中國蜂業(yè),2010,61(12):9-12.
Study on hypoglycemic activities of flavonoids of Brassica napus L.bee pollen in vitro
SUN Yan1,GUO Qing-xing2,TONG Qun-yi1,*
(1.College of Food Science and Technology,Jiangnan University,Wuxi 214122,China;2.Anheuser-Busch InBev(Foshan)Brewery Co.,Ltd.,F(xiàn)oshan 528100,China)
The crude alcoholic extract of Brassica napus L.bee pollen was treated by solvent extraction and macroporous resin,and α-glucosidase inhibition test on the depurated flavonoids in vitro was carried out.The components which had the strongest inhibitory effect on α-glucosidase were analyzed by IR and LC-MS. Results showed that the flavonoids played a vital role in inhibiting α-glycosidase enzymes.The purity of PEFS-3 which was made by AB-8 macroporous resin was 68.77%,and its IC50was 72.16μg/mL,far less than the IC50of acarbose(1124.86μg/mL).Based on IR and LC-MS,five main components were identified in PEFS-3,and four kinds among them were flavonoid aglycones:Quercetin-3-O-β-D-pyranoid glucose base-(1→2)-β-D-pyranoid glycosidase,Kaempferol-3,4’-double-O-β-D-pyranoid glycosidase,Isohtamnetin-3-O-β-D-pyranoid glucose base-(1→2)-β-D-pyranoid glycosidase,Kaempferol-3-O-β-D-pyranoid glucose base-(1→2)-β-D-pyranoid glycosidase,and the fifth one was inferred to be sec-O-glucosylhamaudol or flavanol,its specific structure still need further confirmation.
Brassica napus L.bee pollen;α-glucosidase;flavonoids;LC-MS
TS201.1
A
1002-0306(2015)12-0122-05
10.13386/j.issn1002-0306.2015.12.017
2014-09-15
孫巖(1989-),女,碩士研究生,研究方向:碳水化合物科學(xué)與工程。
童群義(1963-),男,博士,教授,研究方向:碳水化合物科學(xué)與工程。