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        實時熒光PCR法快速檢測食用淀粉中的木薯成分

        2015-10-31 06:04:20韓建勛吳亞君王斌葛毅強陳穎
        質(zhì)量安全與檢驗檢測 2015年6期
        關(guān)鍵詞:檢測

        韓建勛吳亞君王斌葛毅強陳穎*

        (1.中國檢驗檢疫科學(xué)研究院 北京 100176;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與營養(yǎng)工程學(xué)院;3.中國農(nóng)村技術(shù)開發(fā)中心)

        實時熒光PCR法快速檢測食用淀粉中的木薯成分

        韓建勛1,2吳亞君1王斌1葛毅強2,3*陳穎1*

        (1.中國檢驗檢疫科學(xué)研究院 北京 100176;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與營養(yǎng)工程學(xué)院;3.中國農(nóng)村技術(shù)開發(fā)中心)

        基于木薯、紅薯及馬鈴薯g3pdh基因序列的差異,設(shè)計了木薯引物與探針,建立了木薯成分的實時熒光PCR檢測方法,特異性強,靈敏度達0.1%(W/W)。通過檢驗29種不同淀粉來源的市售樣品發(fā)現(xiàn):標簽中無木薯成分的5種紅薯淀粉、2種馬鈴薯淀粉及1種藕粉均檢出了木薯成分,標簽錯誤標識率達27.6%。

        淀粉;實時熒光PCR;木薯;g3pdh基因;檢測

        1 前言

        薯類淀粉是我國的主要食用淀粉,包括紅薯淀粉、馬鈴薯淀粉、木薯淀粉等,其中紅薯淀粉價格相對較高。由于不同種類淀粉顆粒的感官性狀和物化指標差別不大,消費者難以辨認,因此一些不法生產(chǎn)者便在紅薯淀粉中摻入低價的木薯淀粉出售,賺取非法利潤,損害消費者利益。近年來,國內(nèi)外學(xué)者針對淀粉種類摻假開展了廣泛研究。根據(jù)馬鈴薯淀粉與玉米淀粉在顆粒超微形貌上的明顯差別,運用掃描電鏡與穩(wěn)定碳同位素比法能夠準確鑒別馬鈴薯淀粉中摻假的玉米淀粉[1]。有研究報道采用紅外光譜技術(shù)可有效檢測藕粉中摻雜的馬鈴薯淀粉、紅薯淀粉、木薯淀粉、玉米淀粉等[2-5]。另有學(xué)者利用淀粉肽指紋圖譜區(qū)分了紅薯淀粉、木薯淀粉及馬鈴薯淀粉[6]。雖然上述方法可通過淀粉顆粒的形態(tài)、結(jié)構(gòu)等來區(qū)分鑒定淀粉種類,但在實際應(yīng)用過程中易受到儀器昂貴、取樣均勻性和代表性等問題的限制。實時熒光PCR技術(shù)通過分析物種DNA水平上的差異來鑒定物種真實屬性,結(jié)果準確、可靠,且不受環(huán)境因素等影響,儀器普及率高,目前在食品真實屬性鑒別方面有著越來越廣泛的應(yīng)用,例如鑒別肉制品中的鹿肉、豬肉成分[7,8],果汁中的水果成分[9],燕窩中摻雜的雞蛋清、瓊脂成分[10]等,部分已制定成檢測標準并推廣應(yīng)用。本研究擬基于木薯g3pdh基因,建立快速靈敏的木薯成分實時熒光PCR檢測方法,以期為規(guī)范食用淀粉市場和打擊假冒偽劣產(chǎn)品提供技術(shù)支持。

        2 材料與方法

        2.1材料

        2.1.1試驗樣品

        木薯(M.esculenta)、紅薯(I.batatas L.)、芋頭(C.esculenta L.)、山藥(D.opposita)、馬鈴薯(S. tuberosum L)、蓮藕(N.nucifera)、玉米(Z.mays)、小麥(T.aestivum L.)、大麥(H.vulgare L.)、黑麥(S. cereale L.)、大米(O.sativa)、蕎麥(F.esculentum)、高粱(Sorghum)、薏米(C.chinensis)、小米(S.italic L.)、綠豆(V.radiata L.)、赤小豆(V.umbellata)、豇豆(V.unguiculata)、扁豆(L.purpureus L.)、菜豆(P. vulgaris L.)、蠶豆(V.faba L.)、黃豆(G.max L.)等22種原料樣品以及29份市售淀粉樣品:均購自北京大型超市。

        2.1.2試劑

        NaCl、Tris-HCL、三氯甲烷、異丙醇:均為分析純,國藥集團化學(xué)試劑有限公司;CTAB:高純級,美國Amresco公司;Na2-EDTA:生物技術(shù)級,美國Amresco公司;TaqMan?Gene Expression Master Mix:美國AB公司;food proof?GMO Sample Preparation kit:德國BIOTECON Diagnostics公司。

        2.1.3引物及探針序列

        植物通用型引物及探針來自文獻[11],木薯特異性引物及探針基于木薯甘油醛-3-磷酸脫氫酶基因(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,g3pdh)自行設(shè)計。所有引物探針均由上海英駿生物技術(shù)有限公司合成。

        表1 引物及探針序列

        2.1.4主要儀器設(shè)備

        微量移液器(10 μL、100 μL、1000 μL):Eppendorf,Germany;烘箱VenticeⅡ:MMM,Germany;離心機5804R:Eppendorf,Germany;核酸蛋白分析儀DU640:Beckman,USA;ABI 7500實時熒光PCR儀:ABI,USA。

        2.2方法

        2.2.1自制淀粉

        選取約1000 g新鮮紅薯,洗凈切塊,用勻漿機打漿,漿液與紅薯渣一并倒入白紗布袋中,清水沖洗,用2000 mL燒杯接納濾液。邊倒?jié){液邊加清水,直至將渣中的漿液洗凈為止。將濾得的紅薯漿液于4℃冰箱中靜置,每天攪動2-3次。待沉淀后,將表面的清液與殘渣去除,取中間粉漿放入另一2 000 mL燒杯中,并加入適量清水使其懸浮,再次沉淀后去除上清液。待沉淀自然晾干即得粗制紅薯淀粉。木薯淀粉制備同上。

        2.2.2DNA提取

        原料樣品DNA提取參照文獻中的CTAB法[12],市售淀粉樣品DNA提取采用food proof?GMO Sample Preparation kit試劑盒提取。

        2.2.3木薯引物及探針設(shè)計

        選擇g3pdh基因為目標基因,根據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫中木薯(GenBank.FN551838.1)、紅薯(GenBank. EF119215.1)、馬鈴薯(GenBank.NM_001288415.1)的g3pdh基因序列,采用Clustal W軟件進行比對,根據(jù)差異性序列區(qū)域設(shè)計木薯特異性引物及探針。

        2.2.4實時熒光PCR反應(yīng)

        采用25 μL的反應(yīng)體系:TaqMan?Gene Expression Master Mix 12.5μL;上下游引物(10μmol/L)各0.5 μL;探針(10 μmol/L)0.5 μL;DNA模板5 μL,用無菌水補至總體系為25 μL。PCR擴增及結(jié)果分析在ABI 7500實時熒光PCR儀上進行。擴展程序為:95℃預(yù)變性10 min;95℃10 s,60℃60 s,共運行40個循環(huán)。

        2.2.5方法特異性分析

        采用木薯、紅薯、芋頭、山藥、馬鈴薯、蓮藕、玉米、小麥、大麥、黑麥、大米、蕎麥、高粱、薏米、小米、綠豆、赤小豆、豇豆、扁豆、菜豆、蠶豆、黃豆共22種樣品測試方法的特異性。

        2.2.6方法靈敏度分析

        將自制的木薯淀粉和紅薯淀粉混合,使木薯淀粉和紅薯淀粉的質(zhì)量比分別為50%、10%、5%、1%、0.1%、0.01%,進行實時熒光PCR擴增,每個濃度設(shè)置5個平行,實驗重復(fù)2次,即每個濃度得到10個對應(yīng)的Ct值,以滿足不小于95%置信區(qū)間的測試要求,計算陽性擴增的次數(shù)及檢出概率;計算Ct值的標準偏差(SD)和相對標準偏差(RSD),驗證方法的重復(fù)性。

        2.2.7市售樣品檢測

        對購買的2種木薯淀粉、6種紅薯淀粉、7種馬鈴薯淀粉、2種小麥淀粉、1種綠豆淀粉、1種豌豆淀粉、1種藕粉及9種玉米淀粉共29份實際樣品進行測試,每個樣品取樣2份,提取DNA后擴增18S rRNA基因以確保淀粉DNA提取的有效,避免假陰性;擴增木薯g3pdh基因判斷樣品中是否含有木薯成分。每個樣品重復(fù)擴增3次。

        3 結(jié)果與分析

        3.1木薯引物及探針設(shè)計結(jié)果

        采用Clustal W軟件比對NCBI數(shù)據(jù)庫中木薯(GenBank.FN551838.1)、紅薯(GenBank.EF119215.1)、馬鈴薯(GenBank.NM_001288415.1)的g3pdh基因序列,根據(jù)序列差異性區(qū)域設(shè)計了木薯特異性引物及探針,序列比對及引物、探針設(shè)計結(jié)果見圖1。

        圖1 木薯、紅薯與馬鈴薯g3pdh基因序列比對結(jié)果

        3.2方法特異性試驗結(jié)果

        利用植物通用型引物探針與木薯引物探針,分別對木薯、紅薯、芋頭、山藥、馬鈴薯、蓮藕、玉米、小麥、大麥、黑麥、大米、蕎麥、高粱、薏米、小米、綠豆、赤小豆、豇豆、扁豆、菜豆、蠶豆、黃豆22種樣品進行實時熒光PCR擴增,驗證樣品DNA的有效性以及木薯引物探針的特異性。利用18S rRNA植物通用型引物及探針擴增所有樣品,均可見典型S型熒光擴增曲線(圖2),說明所有樣品都提取到有效的DNA,可用于后續(xù)的特異性檢測。利用木薯引物探針擴增所有樣品,僅有木薯樣品產(chǎn)生顯著的熒光擴增,Ct值為26.49±0.04;而其他21種樣品以及空白對照(無菌水)均無熒光擴增信號(圖3),說明所設(shè)計的引物探針具有較好的特異性,可特異性地擴增木薯成分。

        圖2 植物通用型引物探針實時熒光PCR擴增結(jié)果

        圖3 木薯引物探針實時熒光PCR特異性擴增結(jié)果

        3.3方法靈敏度試驗結(jié)果

        分別對含50%、10%、5%、1%、0.1%、0.01%(W/W)木薯淀粉的紅薯淀粉樣品進行實時熒光PCR擴增。結(jié)果表明:50%、10%、5%、1%、0.1%紅薯淀粉樣品其Ct值在28.37-35.79之間,且重復(fù)性較好,10次擴增均能檢出;0.01%紅薯淀粉樣品10次重復(fù)擴增中有8次能夠檢出,檢出率為80%(表2)。由此確定該方法的檢測靈敏度為0.1%(W/W),即:能夠檢出摻假的木薯淀粉含量為0.1 g/100 g。

        表2 木薯成分實時熒光PCR靈敏度檢測結(jié)果

        3.4市售樣品檢測

        為進一步驗證方法的實用性及準確性,對來自北京超市的2種木薯淀粉、6種紅薯淀粉、7種馬鈴薯淀粉、2種小麥淀粉、1種綠豆淀粉、1種豌豆淀粉、1種藕粉及9種玉米淀粉等29種食用淀粉樣品進行了木薯成分檢測。檢測發(fā)現(xiàn),除2份木薯淀粉樣品檢測到木薯成分外,6份紅薯淀粉樣品中,有5份都檢出了木薯成分,摻假率達83.3%;7份馬鈴薯淀粉樣品中2份檢出了木薯成分,檢出率為28.6%;在購買的1份藕粉樣品中也檢測到了木薯成分。小麥淀粉、綠豆淀粉、豌豆和玉米淀粉中均未檢出木薯成分(表3)。上述檢測結(jié)果表明:由于外觀較為相近,紅薯淀粉、馬鈴薯淀粉是較容易被摻入木薯淀粉的產(chǎn)品,在產(chǎn)品質(zhì)量控制中應(yīng)對該類產(chǎn)品予以重點關(guān)注。

        表3 市售淀粉樣品中木薯成分檢測結(jié)果

        (續(xù)表3)

        4 結(jié)論

        本研究以木薯為研究對象,設(shè)計了基于木薯g3pdh基因的引物探針,建立了木薯成分實時熒光PCR檢測方法。該方法可有效區(qū)分木薯與其他21種淀粉植物成分,對木薯成分的檢測靈敏度達0.1%(W/W)。通過對市售的29種淀粉樣品中木薯成分的檢測,進一步驗證了方法的有效性。該方法將為打擊淀粉市場制假售假、規(guī)范市場秩序、保障消費者權(quán)益提供了有力的技術(shù)支撐。

        [1]王紹清,武士奎,穆同娜,等.掃描電鏡和穩(wěn)定碳同位素比質(zhì)譜法鑒別馬鈴薯淀粉中的摻假玉米淀粉[J].食品科學(xué),2010,31(22):332-335.

        [2]Niu X Y,Zhao Z L,Jia K J.Li X T.Feasibility study on quantitative analysis of glucose and fructose in lotus root powder by FT-NIR spectroscopy and chemometrics[J].Food Chemistry,2012,133:592-597.

        [3]Liu J,Wen Y,Dong N,et al.Authentication of lotus root powder adulterated with potato starch andor sweet potato starch using Fourier transform mid-infrared spectroscopy[J].Food Chemistry,2013,141:3103-3109.

        [4]Xu L,Shi P Tao,Ye Z H,et al.Rapid analysis of adulterations in Chinese lotus root powder(LRP)by near-infrared(NIR)spectroscopy coupled with chemometric class modeling techniques[J].Food Chemistry,2013,141:2434-2439.

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        [7]Druml B,Grandits S,Mayer W,et al.Authenticity control of game meat products–A single method to detect and quantify adulteration of fallow deer(Dama dama),red deer(Cervus elaphus)and sika deer(Cervus nippon)by real-time PCR[J]. Food chemistry,2015,170:508-517.

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        [10]Guo L,Wu Y,Liu M,et al.Authentication of Edible Bird's nests by TaqMan-based real-time PCR[J].Food Control,2014,44:220-226.

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        [12]Wang W,Han J,Wu Y,et al.Simultaneous detection of eight food allergens using optical thin-film biosensor chips[J]. Journalofagriculturalandfoodchemistry,2011,59(13):6889-6894.

        A Real-Time PCR Assay for Detection of Cassava Component in Edible Starch

        Han Jianxun1,2,Wu Yajun1,Wang Bin1,Ge YiQiang2,3*,Chen Ying1*
        (1.Chinese Academy of Inspection and Quarantine,Beijing,100176;2.College of Food Science and Nutritional Engineering,China Agricultural University;3.China Rural Technology Development Center)

        The cassava primers and probe were designed based on the sequence differences of g3phd gene among cassava,sweet potato and potato.And a real-time PCR method was established to detect cassava component.The sensitivity of the method could reach to 0.1%(W/W).Twenty-nine kinds of commercially samples were selected and detected.The detection result showed that cassava component was detected in 8 samples including 5 sweet potato starch,2 potato starch and 1 lotus root starch.The mislabeled rate was 27.6%.

        Starch;Real-Time PCR;Cassava;g3pdh Gene;Detection

        Q789

        E-mail:hanjianxun19830418@163.com;*通訊作者E-mail:68511009@163.com;chenyingcaiq@163.com

        中國檢科院基本科研業(yè)務(wù)費專項資金項目(2014JK029);863計劃項目(2011AA100807)

        2015-09-11

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