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        嗜酸乳酸桿菌對(duì)自主活動(dòng)受限型應(yīng)激小鼠腸道黏膜免疫狀態(tài)的影響

        2015-10-29 02:47:26郝鳳奇李景梅楊桂連
        食品科學(xué) 2015年23期
        關(guān)鍵詞:乳酸桿菌小腸結(jié)腸

        郝鳳奇,李景梅,*,楊桂連*

        (1.長(zhǎng)春理工大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,吉林 長(zhǎng)春 130022;2.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,吉林 長(zhǎng)春 130118)

        嗜酸乳酸桿菌對(duì)自主活動(dòng)受限型應(yīng)激小鼠腸道黏膜免疫狀態(tài)的影響

        郝鳳奇1,李景梅1,*,楊桂連2,*

        (1.長(zhǎng)春理工大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,吉林 長(zhǎng)春130022;2.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,吉林 長(zhǎng)春130118)

        目的:探討嗜酸乳酸桿菌(Lactobacillus acidophilus,LA)對(duì)自主活動(dòng)受限型應(yīng)激小鼠腸道黏膜免疫狀態(tài)的影響。方法:以健康雌性BALB/c小鼠為受試動(dòng)物,分為常規(guī)飼養(yǎng)組(NC組)、常規(guī)飼養(yǎng)條件灌胃LA組(NC+LA組)、應(yīng)激組(S組)、應(yīng)激條件灌胃LA組(S+LA組),小鼠的LA灌胃劑量為108CFU/d;應(yīng)激組小鼠每天被限制自主活動(dòng)3 h;15 d后取材,采用流式細(xì)胞術(shù)、酶聯(lián)免疫吸附(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)等方法,對(duì)腸系膜淋巴結(jié)(mesenteric lymph nodes,MLN)中CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞和CD11c+樹(shù)突細(xì)胞(CD11c+dendritic cell,CD11c+DC)比例,結(jié)腸組織白細(xì)胞介素-10(interleukin-10,IL-10)和白細(xì)胞介素-17(interleukin-17,IL-17)水平,以及小腸總分泌型免疫球蛋白A(secreted immunoglobulin A,sIgA)水平進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果:常規(guī)飼養(yǎng)條件下,LA能極顯著提高小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞比例(P<0.01),顯著提高M(jìn)LN中CD11c+DC比例、小腸總sIgA水平和結(jié)腸組織IL-10水平(P<0.05),顯著降低結(jié)腸組織IL-17水平(P<0.05),而對(duì)MLN中CD8+T細(xì)胞比例無(wú)顯著影響(P>0.05);應(yīng)激條件能極顯著降低小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞比例和CD11c+DC比例(P<0.01),顯著降低CD8+T細(xì)胞比例(P<0.05),極顯著降低小鼠結(jié)腸組織IL-10水平和小腸總sIgA水平(P<0.01),極顯著提高結(jié)腸組織IL-17水平(P<0.01);應(yīng)激條件下,LA能顯著提高小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞比例和CD11c+DC比例(P<0.05),顯著提高小鼠結(jié)腸組織IL-10水平和小腸總sIgA水平(P<0.05),并顯著降低結(jié)腸組織IL-17水平(P<0.05),而對(duì)小鼠MLN中CD8+T細(xì)胞比例無(wú)顯著影響(P>0.05)。結(jié)論:給予自主活動(dòng)受限型應(yīng)激小鼠LA干預(yù),可提高小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞和CD11c+DC比例,上調(diào)結(jié)腸IL-10和小腸總sIgA分泌水平,下調(diào)結(jié)腸IL-17分泌水平,調(diào)節(jié)應(yīng)激小鼠的腸道黏膜免疫狀態(tài)。

        嗜酸乳酸桿菌;自主活動(dòng)受限;應(yīng)激;腸道黏膜免疫

        應(yīng)激是機(jī)體對(duì)外部或內(nèi)部刺激產(chǎn)生的一種生理性應(yīng)答,應(yīng)激過(guò)程中機(jī)體啟動(dòng)不同的防御機(jī)制對(duì)抗刺激以維持自身穩(wěn)態(tài)[1]。當(dāng)機(jī)體長(zhǎng)期處于某種或某幾種應(yīng)激條件下會(huì)增加罹患疾病的風(fēng)險(xiǎn),如癌癥、自身免疫性疾病和感染等[2-3]。動(dòng)物模型研究結(jié)果表明,重復(fù)性應(yīng)激會(huì)影響機(jī)體正常的細(xì)胞免疫和體液免疫狀態(tài)[4-5],甚至?xí)鹉c道微生物菌群結(jié)構(gòu)的變化[6-7],進(jìn)而影響腸道黏膜免疫功能。

        乳酸桿菌是人和動(dòng)物腸道內(nèi)重要的益生菌,通過(guò)增強(qiáng)黏膜屏障[8]、促進(jìn)腸道健康微生物群落結(jié)構(gòu)形成[9]、提高局部黏膜免疫應(yīng)答[10-11]、調(diào)節(jié)細(xì)胞因子分泌[12]等作用調(diào)控機(jī)體的免疫狀態(tài)。

        本研究以嗜酸乳酸桿菌(Lactobacillus acidophilus,LA)為研究對(duì)象,通過(guò)BALB/c小鼠自主運(yùn)動(dòng)受限的應(yīng)激模型,探討應(yīng)激條件下LA灌胃對(duì)小鼠腸系膜淋巴結(jié)(mesenteric lymph nodes,MLN)中CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞和CD11c+樹(shù)突細(xì)胞(CD11c+dendritic cell,CD11c+DC)比例,結(jié)腸組織白細(xì)胞介素-10(interleukin-10,IL-10)和白細(xì)胞介素-17(interleukin-17,IL-17)水平,以及小腸總分泌型免疫球蛋白A(secreted immunoglobulin A,sIgA)水平的影響,明確LA對(duì)該種應(yīng)激條件下小鼠腸道黏膜免疫的調(diào)節(jié)作用,以期為深入研究LA的腸道黏膜免疫調(diào)控作用機(jī)制及其信號(hào)傳導(dǎo)途徑提供有價(jià)值的參考,對(duì)LA應(yīng)用于功能性乳制品或腸道微生態(tài)制劑的開(kāi)發(fā)提供一定指導(dǎo)。

        1 材料與方法

        1.1材料

        1.1.1菌株

        嗜酸乳酸桿菌(LA),分離自健康嬰兒糞便,由長(zhǎng)春理工大學(xué)微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室保存。

        1.1.2培養(yǎng)基與試劑

        乳酸桿菌MRS培養(yǎng)基自行配制;DMEM培養(yǎng)基美國(guó)Gibco公司;Cooktail蛋白酶抑制劑瑞士羅氏公司;anti-mCD4-FITC、anti-mCD8-PE單克隆抗體美國(guó)BD公司;小鼠IL-10、IL-17、總sIgA酶聯(lián)免疫吸附(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒美國(guó)R&D公司。

        1.1.3Green-berger Lysis Buffer的配制

        基礎(chǔ)緩沖液含1 mmol/L MgCl2·6H2O、15 mmol/L Tris-HCl、150 mmol/L NaCl、1 mmol/L CaCl2、1% Triton,使用時(shí)按1∶100(V/V)加入Cooktail蛋白酶抑制劑。

        1.1.4動(dòng)物

        清潔級(jí)BALB/c雌性小鼠40 只,體質(zhì)量(17.080±0.972) g,購(gòu)自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司。

        1.2方法

        1.2.1LA菌體懸液的制備

        采用MRS液體培養(yǎng)基,37 ℃條件下靜止厭氧培養(yǎng)LA,待菌液OD600nm值為0.6~0.8時(shí),4 ℃、6 000 r/min離心2 min,菌體沉淀用1×磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)(pH 7.4)清洗3 次后,制成108CFU/mL菌體懸液。

        1.2.2動(dòng)物分組及處理

        BALB/c小鼠隨機(jī)平均分為4 組:常規(guī)飼養(yǎng)組(NC組)、常規(guī)飼養(yǎng)條件灌胃LA組(NC+LA組)、應(yīng)激組(S組)、應(yīng)激條件灌胃LA組(S+LA組),適應(yīng)性飼養(yǎng)7 d后進(jìn)行為期15 d的正式實(shí)驗(yàn)。

        正式實(shí)驗(yàn)期內(nèi),NC組:常規(guī)條件飼養(yǎng);NC+LA組:常規(guī)飼養(yǎng)條件下給每只小鼠灌胃LA菌體懸液,劑量為1 mL/d;S組:每天8:00—11:00將小鼠置于帶有通氣孔的透明容器中(內(nèi)部尺寸:長(zhǎng)×寬×高為10 cm×3 cm×3 cm),確保小鼠不能調(diào)頭,只能前后移動(dòng)。S+LA組:應(yīng)激處理后給每只小鼠灌胃LA菌體懸液,劑量為1 mL/d。各組小鼠均在清潔級(jí)條件下飼養(yǎng),自由飲水和采食,12 h光照/12 h黑暗,給予NC組和S組小鼠灌胃1×PBS(pH 7.4)1 mL/d。第16天對(duì)小鼠實(shí)行安樂(lè)死,無(wú)菌條件下取小腸、結(jié)腸、腸系膜淋巴結(jié)(MLN)用于指標(biāo)檢測(cè)。

        1.2.3MLN細(xì)胞懸液的制備及流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)

        將MLN置于盛放有DMEM培養(yǎng)基的平皿中,用注射器末端研磨后,過(guò)無(wú)菌篩網(wǎng)制成細(xì)胞懸液,2 000 r/min離心5 min,棄上清液,沉淀用PBS洗滌2 次,加入適量DMEM培養(yǎng)基計(jì)數(shù)。取細(xì)胞懸液200 μL分別加入2.0 mL FACS Buffer,2 000 r/min離心5 min,棄上清液,沉淀用PBS洗滌2 次后再用FACS Buffer混勻至106個(gè),加入到Tube管中,每管加入15 μL熒光標(biāo)記的單克隆抗體(CD4+T細(xì)胞檢測(cè)采用anti-mCD4-FITC單克隆抗體、CD8+T細(xì)胞檢測(cè)采用anti-mCD8-PE單克隆抗體),4 ℃避光作用30 min,F(xiàn)ACS Buffer洗滌2 次后重懸于100 μL FACS Buffer中,進(jìn)行BD Canto流式細(xì)胞儀檢測(cè)。

        1.2.4結(jié)腸組織IL-10、IL-17水平檢測(cè)

        采用預(yù)冷的Green-berger Lysis Buffer將結(jié)腸組織制成勻漿,采用ELISA試劑盒,按照說(shuō)明書方法操作,檢測(cè)IL-10、IL-17水平。

        1.2.5小腸總sIgA水平檢測(cè)

        取幽門下至回盲結(jié)合部約15 cm腸段,無(wú)菌1×PBS(pH 7.4)緩慢沖洗腸腔后,刮取腸黏膜表面黏液層,收集于1.5 mL無(wú)菌離心管中,加入0.5 mL無(wú)菌1×PBS(pH 7.4,含Cooktail蛋白酶抑制劑)混勻后,4 ℃、12 000 r/min離心10 min,取上清液,按照ELISA試劑盒說(shuō)明書方法操作,檢測(cè)總sIgA水平。

        1.3數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

        數(shù)據(jù)分析和作圖采用Graphpad Prism 6.0軟件,結(jié)果用±s表示。

        2 結(jié)果與分析

        2.1各組小鼠體質(zhì)量變化分析

        實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí),NC組、NC+LA組、S組、S+LA組小鼠體質(zhì)量分別為(20.81±0.56)、(21.13±0.23)、(19.94±0.48)、(20.17±0.33) g,各組小鼠體質(zhì)量變化無(wú)顯著差異(P>0.05)。

        2.2小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞和CD11c+DC比例變化分析

        圖1 各組小鼠MLN中CCDD44+T細(xì)胞、CCDD88+TT細(xì)胞比例Fig.1 Ratios of CD4+T cells and CD8+T cells in MLN from mice from each group

        圖2 各組小鼠MLN中CD1111cc+ DDCC比例Fig.2 Ratio of CD11c+DCs in MLN from mice from each group

        由圖1、2可知,NC組小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞和CD11c+DC比例分別為(34.46±1.76)%、(20.59±1.59)%和(33.97±2.15)%,NC+LA組分別為(41.12±3.03)%、(21.66±2.33)%和(37.95±1.98)%,S組分別為(25.28±2.41)%、(17.49±1.10)%和(25.52±1.53)%,S+LA組分別為(29.46±1.39)%、(17.24±1.42)%和(29.48±0.88)%。常規(guī)飼養(yǎng)條件下,LA極顯著提高了小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞比例(P<0.01),顯著提高了CD11c+DC比例(P<0.05),而對(duì)CD8+T細(xì)胞比例變化無(wú)顯著影響(P>0.05);給予小鼠自主活動(dòng)限制后,極顯著降低了小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞和CD11c+DC比例(P<0.01),顯著降低了CD8+T細(xì)胞比例(P<0.05),在此條件下,盡管灌胃LA可顯著提高小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞比例和CD11c+DC比例(P<0.05),但仍顯著或極顯著低于NC組(P<0.05或P<0.01),且給予LA不能提高自主活動(dòng)受限小鼠的MLN中CD8+T細(xì)胞比例。

        2.3小鼠結(jié)腸組織中IL-10、IL-17水平變化分析

        圖3 各組小鼠結(jié)腸組織中IL-10和IL-177水平Fig.3 Levels of IL-10 and IL-17 in colon tissue from mice from each group

        由圖3可知,NC組小鼠結(jié)腸組織中IL-10、IL-17水平分別為(60.07±2.25)、(61.04±2.15) pg/mL,NC+LA組分別為(65.86±3.60)、(55.27±2.13) pg/mL,S組分別為(49.08±2.26)、(77.88±1.59) pg/mL、S+LA組分別為(54.83±2.57)、(72.08±4.82) pg/mL。常規(guī)飼養(yǎng)條件下,LA顯著提高了小鼠結(jié)腸組織中IL-10水平(P<0.05),顯著降低了IL-17水平(P<0.05);給予小鼠自主活動(dòng)限制后,極顯著降低了小鼠結(jié)腸組織中IL-10水平(P<0.01),極顯著提高了IL-17水平(P<0.01),在該條件下,盡管灌胃LA可顯著提高小鼠結(jié)腸組織中IL-10水平(P<0.05),顯著降低IL-17水平(P<0.05),但仍與NC組有顯著或極顯著差異(P<0.05或P<0.01)。

        2.4小鼠小腸總sIgA水平變化分析

        圖4 各組小鼠小腸總sIgAA水平Fig.4 Level of small intestinal total sIgA in mice from each group

        由圖4可知,NC組小鼠小腸總sIgA水平為(31.67±1.59) μg/mL,NC+LA組為(35.93±2.17)μg/mL, S組為(23.18±2.18) μg/mL,S+LA組為(27.08±1.64) μg/mL。常規(guī)飼養(yǎng)條件下,LA顯著提高了小鼠小腸總sIgA水平(P<0.05);給予小鼠自主活動(dòng)限制后,極顯著降低了小鼠小腸總sIgA水平(P<0.01),在該條件下,盡管LA可顯著提高小鼠小腸sIgA水平(P<0.05),但仍極顯著低于NC組(P<0.01)。

        3 討 論

        近年來(lái),人類微生物組計(jì)劃(Human Microbiome Project,HMP)和人體腸道宏基因組研究(Metagenomics of the Human Intestinal Tract,MetaHIT)計(jì)劃的階段性研究成果表明,人類腸道中有約1014個(gè)共生微生物,種類多達(dá)1 000 種,稱之為“微生物組”,編碼的基因達(dá)100 萬(wàn)個(gè)以上,被譽(yù)為“人類的第二個(gè)基因組”。腸道微生物組與多種腸道外疾病相關(guān),如糖尿病、肥胖、類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎等[13-14]。機(jī)體70%的免疫細(xì)胞在腸道中發(fā)揮作用,腸道微生物組與腸道黏膜免疫間的互作穩(wěn)態(tài)對(duì)宿主的健康至關(guān)重要。乳酸桿菌作為人類和動(dòng)物腸道內(nèi)的益生菌,被公認(rèn)為“GRAS”(Generally Regarded as Safe)等級(jí)的微生物,對(duì)于緩解腸易激綜合征(irritablebowelsyndrome,IBS)、炎癥性腸?。╥nflammatory bowel disease,IBD)、抗生素引起的腹瀉等具有一定作用。

        關(guān)于應(yīng)激對(duì)健康的影響,傳統(tǒng)的思維關(guān)注于體液代謝和離子平衡方面,通常忽略了腸道微生態(tài)平衡調(diào)控機(jī)體健康的作用。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,應(yīng)激降低了腸道中擬桿菌屬的相對(duì)豐度,提高了梭菌屬的相對(duì)豐度[7]。因此,研究外源乳酸桿菌干預(yù)應(yīng)激條件下腸道黏膜的免疫狀態(tài)具有重要意義。本實(shí)驗(yàn)所采用的LA分離自健康嬰兒糞便,前期研究結(jié)果表明,該菌能顯著提高C57BL/6雌性小鼠結(jié)腸集合淋巴結(jié)中TLR2+細(xì)胞比例,上調(diào)Th1和Th2型免疫反應(yīng)[15]。本實(shí)驗(yàn)旨在前期工作基礎(chǔ)上,初步探討該菌對(duì)自主活動(dòng)受限型應(yīng)激小鼠腸道黏膜免疫狀態(tài)的影響。

        自主活動(dòng)受限是應(yīng)激條件的一種,本實(shí)驗(yàn)中連續(xù)15 d給予小鼠3 h/d的自主活動(dòng)受限。第10天時(shí),除NC組小鼠外,其他各組小鼠均出現(xiàn)排斥進(jìn)入受限裝置的現(xiàn)象,并伴有飲水量增加的行為學(xué)變化,但實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,各組小鼠體質(zhì)量并無(wú)顯著差異,推測(cè)原因是15 d的應(yīng)激并未累積至腸道消化吸收功能紊亂,這是否類似于人類的亞健康狀態(tài),還有待于進(jìn)一步探討。然而,為探索該應(yīng)激條件是否影響了小鼠腸道黏膜免疫狀態(tài),以及外源乳酸桿菌干預(yù)對(duì)腸道黏膜免疫的影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí),分別檢測(cè)了各組小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞、CD11c+DC比例以及結(jié)腸組織中IL-10、IL-17水平和小腸總sIgA水平。

        MLN是腸道黏膜免疫系統(tǒng)中重要的次級(jí)淋巴器官,是腸道中T細(xì)胞駐留的重要場(chǎng)所之一,腸道黏膜固有層中未成熟樹(shù)突細(xì)胞(immature dendritic cell,iDC)遇到抗原時(shí),對(duì)其進(jìn)行捕獲和加工,其自身分化為成熟樹(shù)突細(xì)胞(mature dendritic cell,mDC),并攜帶抗原信息遷移至MLN中,活化T細(xì)胞[16]。CD4+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞的動(dòng)態(tài)變化一定程度上反映了機(jī)體的免疫狀態(tài)。MLN中的Na?ve CD4+T細(xì)胞被激活后,可根據(jù)不同的刺激信號(hào)分化為Th1、Th2、Treg、Th17等亞型[17-18]。近年來(lái),腸道Treg細(xì)胞與Th17細(xì)胞數(shù)量間的動(dòng)態(tài)平衡是腸道炎癥的重要指標(biāo)[19-20]。Treg細(xì)胞通過(guò)分泌IL-10發(fā)揮抑制炎癥作用,調(diào)控腸道黏膜免疫應(yīng)答趨向耐受反應(yīng)[21];Th17細(xì)胞通過(guò)分泌IL-17發(fā)揮促炎作用,調(diào)控腸道黏膜免疫應(yīng)答趨向炎癥反應(yīng)[22]。正常情況下,Treg/Th17、IL-10/IL-17間處于動(dòng)態(tài)平衡,以維持腸道黏膜免疫穩(wěn)態(tài)[16]。然而,一旦在某些因素的影響下平衡被打破,將會(huì)引起腸道黏膜免疫紊亂。本實(shí)驗(yàn)中,15 d的重復(fù)性自主活動(dòng)受限條件下,小鼠MLN中CD4+T細(xì)胞比例極顯著降低,說(shuō)明應(yīng)激導(dǎo)致了小鼠腸道黏膜免疫狀態(tài)發(fā)生了改變,結(jié)合IL-10和IL-17兩種細(xì)胞因子來(lái)看,應(yīng)激條件極顯著提高了IL-17水平,極顯著降低了IL-10水平,推測(cè)應(yīng)激可能誘發(fā)小鼠腸道炎癥性疾病。然而,應(yīng)激條件下同時(shí)給予LA干預(yù),可使IL-10水平顯著增加,IL-17水平顯著降低,但二者仍未恢復(fù)到正常水平。此外,常規(guī)飼養(yǎng)條件下,LA顯著增加IL-10水平,顯著降低IL-17水平。結(jié)果表明,常規(guī)飼養(yǎng)或應(yīng)激條件下,LA均具有調(diào)控腸道黏膜免疫趨向耐受、降低炎癥性腸道疾病發(fā)生的潛能。

        CD8+T細(xì)胞識(shí)別由MHCI類分子遞呈的內(nèi)源性抗原肽,其主要功能亞群是細(xì)胞毒性T細(xì)胞[23]。本實(shí)驗(yàn)中,應(yīng)激導(dǎo)致了CD8+T細(xì)胞比例顯著降低。與CD4+T細(xì)胞不同的是,常規(guī)飼養(yǎng)或應(yīng)激條件下,LA對(duì)MLN中CD8+T細(xì)胞比例均無(wú)顯著影響,說(shuō)明LA對(duì)腸道黏膜免疫的調(diào)節(jié)作用并非依賴于CD8+T細(xì)胞,這可能與CD8+T只識(shí)別內(nèi)源性抗原肽有關(guān)。

        DC是機(jī)體內(nèi)專職抗原遞呈細(xì)胞,是連接先天免疫和獲得免疫的“橋梁”[24-25]。腸道黏膜免疫系統(tǒng)中的DC依賴其自身的模式識(shí)別受體,如Toll樣受體(Toll like receptor,TLR)、NOD樣受體(NOD like receptor,NLR)、C型凝集素受體(C-type lectin receptor,CLR)等識(shí)別腸道內(nèi)相應(yīng)的微生物相關(guān)配體,并引起免疫級(jí)聯(lián)反應(yīng),包括DC激活、介導(dǎo)T細(xì)胞活化、細(xì)胞因子分泌等,從而發(fā)揮免疫調(diào)節(jié)作用[22]。已有研究證實(shí),DC表面模式識(shí)別受體中TLR2識(shí)別肽聚糖分子、TLR4識(shí)別脂多糖分子、DC-SIGN識(shí)別S層蛋白分子[12,26-28]。CD11c是小鼠腸道DC活化的重要標(biāo)志,本實(shí)驗(yàn)中,常規(guī)飼養(yǎng)條件或應(yīng)激條件下,LA均顯著增加MLN中CD11c+DC比例,說(shuō)明LA具有誘發(fā)腸道DC活化的潛能,鑒于LA是G+菌,其菌體表面含有大量的肽聚糖和S層蛋白,因此推測(cè)LA活化DC很可能依賴于其表面的肽聚糖和S層蛋白。

        sIgA是腸道黏膜局部體液免疫應(yīng)答中的主要抗體。乳酸桿菌通過(guò)激活DC,或調(diào)節(jié)腸道菌群穩(wěn)態(tài)等方式,直接或間接上調(diào)sIgA水平[29]。本實(shí)驗(yàn)中,常規(guī)飼養(yǎng)條件或應(yīng)激條件下,LA均顯著增加腸道sIgA水平,表明LA具有提高腸道黏膜局部體液免疫的作用。

        4 結(jié) 論

        本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,15 d的自主活動(dòng)受限型應(yīng)激條件下,小鼠腸道黏膜免疫功能紊亂,主要表現(xiàn)為MLN中CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞和CD11c+DC比例顯著或極顯著降低,結(jié)腸組織中IL-10水平極顯著降低、IL-17水平極顯著增加,以及小腸總sIgA水平極顯著降低。LA具有調(diào)節(jié)應(yīng)激小鼠腸道黏膜免疫的潛能,主要表現(xiàn)為提高M(jìn)LN中CD11c+DC和CD4+T細(xì)胞比例,上調(diào)結(jié)腸組織中IL-10水平和小腸總sIgA水平,下調(diào)結(jié)腸組織中IL-17水平。然而,LA菌體表面一種或多種分子與腸道相關(guān)免疫細(xì)胞間的相互作用及其機(jī)制,以及LA對(duì)應(yīng)激條件下腸道微生物群落組成的影響仍需進(jìn)一步深入研究。

        [1]CRUZ F C, MARIN M T, LE.O R M, et al. Behavioral and neuroendocrine effects of the exposure to chronic restraint or variable stress in early adolescent rats[J]. International Journal of Developmental Neuroscience, 2012, 30(1): 19-23.

        [2]MAUNDER R G. Evidence that stress contributes to inflammatory bowel disease: evaluation, synthesis, and future directions[J]. Inflammatory Bowel Diseases, 2005, 11(6): 600-608.

        [3]COHEN S, JANICKI-DEVERTS D, DOYLE W J, et al. Chronic stress, glucocorticoid receptor resistance, inflammation, and disease risk[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2012,109(16): 5995-5999.

        [4]BAUER M E, PERKS P, LIGHTMAN S L, et al. Restraint stress is associated with changes in glucocorticoid immunoregulation[J]. Physiology & Behavior, 2001, 73(4): 525-532.

        [5]DU Q, MIN S, CHEN L Y, et al. Major stress hormones suppress the response of macrophages through down-regulation of TLR2 and TLR4[J]. Journal of Surgical Research, 2012, 173(2): 354-361.

        [6]SUDO N, CHIDA Y, AIBA Y, et al. Postnatal microbial colonization programs the hypothalamic-pituitary-adrenal system for stress response in mice[J]. Journal of Physiology, 2004, 558(1): 263-275.

        [7]BAILEY M T, DOWD S E, GALLEY J D, et al. Exposure to a social stressor alters the structure of the intestinal microbiota: implications for stressor-induced immunomodulation[J]. Brain, Behavior, and Immunity, 2011, 25(3): 397-407.

        [8]GALDEANO C M, PERDIGON G. The probiotic bacterium Lactobacillus casei induces activation of the gut mucosal immune system through innate immunity[J]. Clinical and Vaccine Immunology,2006, 13(2): 219-226.

        [9]RAUCH M, LYNCH S V. The potential for probiotic manipulation of the gastrointestinal microbiome[J]. Current Opinion in Biotechnology,2012, 23(2): 192-201.

        [10] GALDEANO C M, de LEBLANC A M, VINDEROLA G, et al. Proposed model: mechanisms of immunomodulation induced by probiotic bacteria[J]. Clinical and Vaccine Immunology, 2007, 14(5):485-492.

        [11] QUIGLEY E M M. Gut microbiota and the role of probiotics in therapy[J]. Current Opinion in Pharmacology, 2011, 11(6): 593-603.

        [12] van BAARLEN P, WELLS J M, KLEEREBEZEM M. Regulation of intestinal homeostasis and immunity with probiotic lactobacilli[J]. Trends in Immunology, 2013, 34(5): 208-215.

        [13] LOZUPONE C A, STOMBAUGH J I, GORDON J I, et al. Diversity,stability and resilience of the human gut microbiota[J]. Nature, 2012,489: 220-230.

        [14] Human Microbiome Project Consortium. A framework for human microbiome research[J]. Nature, 2012, 486: 215-221.

        [15] 郝鳳奇, 李景梅, 李成玉, 等. 2種乳酸桿菌腸道黏膜免疫調(diào)節(jié)作用的比較[J]. 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào): 自然科學(xué)版, 2014, 42(10): 29-34.

        [16] MACDONALD T T, MONTELEONE I, FANTINI M C, et al. Regulation of homeostasis and inflammation in the intestine[J]. Gastroenterology, 2011, 140(6): 1768-1775.

        [17] GERRIETS V A, RATHMELL J C. Metabolic pathways in T cell fate and function[J]. Trends in Immunology, 2012, 33(4): 168-173.

        [18] WANG R, GREEN D R. Metabolic checkpoints in activated T cells[J]. Nature Immunology, 2012, 13(10): 907-915.

        [19]HILL D A, ARTIS D. Intestinal bacteria and the regulation of immune cell homeostasis[J]. Annual Review of Immunology, 2009,28: 623-667.

        [20] BARBI J, PARDOLL D, PAN F. Metabolic control of the Treg/Th17 axis[J]. Immunological Reviews, 2013, 252(1): 52-77.

        [21] HARRISON O J, POWRIE F M. Regulatory T cells and immune tolerance in the intestine[J]. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology, 2013, 5(7): a018341. doi: 10.1101/cshperspect.a018341.

        [22] IWAKURA Y, ISHIGAME H, SAIJO S, et al. Functional specialization of interleukin-17 family members[J]. Immunity, 2011, 34(2): 149-162.

        [23] JANEWAY C A, TRAVERS P, WALPORT M J, et al. Immunobiology:the immune system in health and disease[M]. New York: Garland Science, 2001: 1-56.

        [24] BANCHEREAU J, STEINMAN R M. Dendritic cells and the control of immunity[J]. Nature, 1998, 392: 245-252.

        [25] van VLIET S J, den DUNNEN J, GRINGHUIS S I, et al. Innate signaling and regulation of dendritic cell immunity[J]. Current Opinion in Immunology, 2007, 19(4): 435-440.

        [26] LEBEER S, VANDERLEYDEN J, de KEERSMAECKER S C J. Host interactions of probiotic bacterial surface molecules: comparison with commensals and pathogens[J]. Nature Reviews Microbiology, 2010,8(3): 171-184.

        [27] WELLS J M, ROSSI O, MEIJERINK M, et al. Epithelial crosstalk at the microbiota: mucosal interface[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2011, 108(Suppl 1): 4607-4614.

        [28] BRON P A, van BAARLEN P, KLEEREBEZEM M. Emerging molecular insights into the interaction between probiotics and the host intestinal mucosa[J]. Nature Reviews Microbiology, 2012, 10(1): 66-78.

        [29] OELSCHLAEGER T A. Mechanisms of probiotic actions: a review[J]. International Journal of Medical Microbiology, 2010, 300(1): 57-62.

        Influence of Lactobacillus acidophilus on Intestinal Mucosal Immunity in a Mouse Model of Stress Induced by Auto-Activity Restriction

        HAO Fengqi1, LI Jingmei1,*, YANG Guilian2,*
        (1. School of Life Science and Technology, Changchun University of Science and Technology, Changchun130022, China;2. College of Animal Science and Technology, Jilin Agricultural University, Changchun130118, China)

        Objective: To assess the influence of Lactobacillus acidophilus on intestinal mucosal immunity in a mouse model of stress induced by auto-activity restriction. Methods: Male health BALB/c mice were divided into 4 groups. In normal control group (NC), the mice received balanced diet and water and were left undisturbed in their cages. In NC plus Lactobacillus acidophilus (NC + LA) group, the mice were given a suspension of LA with 108CFU/d per mouse through intragastric administration under normal control condition. In stress group (S), the mice were subjected to stress induced by auto-activity restriction for 3 h per day. In stress plus LA (S+LA) group, the mice were given a suspension of LA with 108CFU/d per mouse through intragastric administration under stress condition. After 15 days, mice from each group were sacrificed. CD4+T, CD8+T and CD11c+dendritic cells (CD11c+DCs) in mesenteric lymph nodes (MLN),interleukin-10 (IL-10) and interleukin-17 (IL-17) levels in colon tissue, total secretory immunoglobulin A (sIgA) level in small intestine were analyzed by fl ow cytometry and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Results: Under NCcondition, the proportions of CD4+T cells and CD11c+DCs in MLN (CD4+T cell: P < 0.01, CD11c+DC: P < 0.05), small intestinal sIgA level and IL-10 level in colon tissue (sIgA, IL-10: P < 0.05) were enhanced by LA and IL-17 level in colon tissue was decreased (P < 0.05), but the proportion of CD8+T cells in MLN was not signifi cantly varied (P > 0.05). After auto-activity restriction, the proportions of CD4+T cells, CD8+T cells and CD11c+DCs, and the levels of IL-10 and small intestinal sIgA were decreased (CD4+T cell, CD11c+DC, IL-10, sIgA: P < 0.01, CD8+T cell: P < 0.05). Interestingly, the proportion of CD4+T cells and CD11c+DCs, the levels of IL-10 and small intestinal sIgA were increased, and the level of IL-17 was decreased by LA under stress condition (P < 0.05), but the proportion of CD8+T cells was not signifi cantly affected(P > 0.05). Conclusion: LA administered to mice subjected to auto-activity restriction enhances the proportions of CD4+T cells and CD11c+DCs in MLN, up-regulates the levels of IL-10 in colon and total small intestinal sIgA, and downregulates the level of IL-17 in colon, thereby modulating their intestinal mucosal immunity under stress condition.

        Lactobacillus acidophilus; auto-activity restriction; stress; intestinal mucosal immunity

        Q939.91

        A

        1002-6630(2015)23-0247-06

        10.7506/spkx1002-6630-201523045

        2015-03-04

        國(guó)家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(31272552);吉林省教育廳科學(xué)技術(shù)研究項(xiàng)目

        郝鳳奇(1981—),男,講師,碩士,研究方向?yàn)槲⑸锱c免疫學(xué)。E-mail:hao4269@126.com

        李景梅(1969—),女,教授,博士,研究方向?yàn)槲⑸飳W(xué)。E-mail:ljm3023@126.com楊桂連(1978—),男,副教授,博士,研究方向?yàn)閯?dòng)物微生態(tài)與黏膜免疫。E-mail:yangguilian@jlau.edu.cn

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