秦 燕,李文豪,汪 斌,何冰芳
(南京工業(yè)大學(xué) 生物與制藥工程學(xué)院,江蘇 南京 211800)
光學(xué)純的α-苯乙醇及其衍生物是許多醫(yī)藥、精細(xì)化學(xué)品及香料等物質(zhì)的合成中間體[1],其中對位取代的α-苯乙醇作為代表,其R和S兩種對映異構(gòu)體均為重要的醫(yī)藥中間體,(S)-1-(4-甲基苯基)乙醇是合成食品添加劑姜黃酮的中間體[2];(S)-1-(4-甲氧基苯基)乙醇是1-(4-甲基苯基)-1-(4-甲氧基苯基)-乙硫醇的中間體[3];(R)-1-(4-甲基苯基)乙醇則可以用來合成具有防癌功能的硒化合物[4],(R)-1-(4-甲氧基苯基)乙醇可以合成環(huán)丙烷甲酸中間體,進(jìn)而合成用于治療癌癥的溶血磷脂酸受體的異惡唑基拮抗劑[5]等。目前,對位取代α-苯乙醇衍生物的單一對映體可以通過不對稱合成、化學(xué)拆分和酶法拆分等獲得,其中酶法催化的拆分反應(yīng)具有反應(yīng)條件溫和、手性選擇性高等優(yōu)點(diǎn),因而越來越受到人們的重視[6]。
脂肪酶是一類廣泛應(yīng)用于類脂化合物水解、合成以及酯交換的高效生物催化劑,多數(shù)脂肪酶在催化過程中具有高度的區(qū)域選擇性、立體選擇性,并且在反應(yīng)中不需要添加輔因子等特點(diǎn)。另外,脂肪酶可以接受眾多復(fù)雜的非天然化合物作為底物,因此,利用脂肪酶的高度立體選擇性,在有機(jī)相中通過轉(zhuǎn)酯反應(yīng)進(jìn)行對位取代的α-苯乙醇衍生物的手性拆分備受人們的關(guān)注。然而現(xiàn)有報道中對1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的酶法拆分的研究比較少,其中Hatzakis等[7]對脂肪酶拆分1-(4-甲氧基苯基)乙醇做過初步研究,但是其在拆分過程中轉(zhuǎn)化率較低且產(chǎn)物e.e.p值僅為88%;王晨等[8]研究了多種脂肪酶對1-(4-甲氧基苯基)乙醇拆分,其中Novozyme 435及PS IM(P.cepacia)脂肪酶顯示了很好的拆分效果,然而在整個反應(yīng)體系中底物濃度低,酶用量大。因而,進(jìn)一步開發(fā)能夠高效拆分1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的脂肪酶具有重大意義。
本課題組Yao等[9]篩選獲得1株耐有機(jī)溶劑脂肪酶產(chǎn)生菌Burholderia ambifaria YCJ01,該菌株所產(chǎn)的脂肪酶YCJ01不僅在60℃下穩(wěn)定而且用25%(體積分?jǐn)?shù))有機(jī)溶劑(甲醇、二甲基亞砜(DMSO)等)處理60 d后仍有較高的活力,展現(xiàn)出了優(yōu)異的溫度穩(wěn)定性和有機(jī)溶劑耐受性。在有機(jī)相催化方面具有廣泛的應(yīng)用前景。
本文中,筆者擬采用脂肪酶YCJ01對1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的選擇性酯化拆分,優(yōu)化反應(yīng)工藝,以期實(shí)現(xiàn)這兩種醫(yī)藥中間體的高效手性拆分。
脂肪酶產(chǎn)生菌B.ambifaria YCJ01(CCTCC No:2011058),該脂肪酶核酸序列GenBank登錄號為JQ733583[10]。1-(4-甲基苯基)乙醇購于東京化成工業(yè)株式會社。1-(4-甲氧基苯基)乙醇購于阿法埃莎(天津)化學(xué)有限公司。其他試劑均為市售分析純。
活化培養(yǎng)基(LB培養(yǎng)基,g/L):酵母粉5、蛋白胨10、NaCl 10、瓊脂 20。
發(fā)酵培養(yǎng)基:糊精8 g/L、酵母粉5.2 g/L、牛肉膏7.8 g/L、MgSO40.5 g/L、K2HPO42 g/L、菜籽油5 mL/L、TritonX-1000.75 mL/L。pH 8.0。
從凍存管中接菌株B.ambifaria YCJ01于LB平板上,30℃培養(yǎng)12 h后,接取一環(huán)于發(fā)酵培養(yǎng)基中,于30℃、180 r/min的搖床上培養(yǎng)72 h。
取脂肪酶發(fā)酵上清液,置冰水浴中,收集(NH4)2SO4飽和度為65%時沉淀下來的蛋白,在pH7.0、50 mmol/L的磷酸緩沖液中透析1 d后,冷凍干燥得脂肪酶YCJ01粗酶粉。
轉(zhuǎn)酯化拆分反應(yīng)在5 mL具塞反應(yīng)瓶中進(jìn)行。初始反應(yīng)體系為2 mL預(yù)脫水的異丙醚,拆分底物(R,S)-α-苯乙醇衍生物 30 mmol/L,?;w(乙酸乙烯酯、丁酸乙烯酯)300 mmol/L,添加脂肪酶YCJ01酶粉10 mg。在180 r/min的恒溫?fù)u床中反應(yīng)一定時間,檢測底物的轉(zhuǎn)化率和光學(xué)純度。
采用戴安P680型高效液相色譜(HPLC)檢測。1-(4-甲基苯基)乙醇的檢測條件:色譜柱為Chiral OJ-H柱(4.6 mm×250 mm);流動相為正己烷/異丙醇溶液(體積比為95∶5)。[1-(4-甲氧基苯基)乙醇的檢測條件:色譜柱為Chiral AD-H柱(4.6 mm×250 mm);流動相為正己烷/異丙醇溶液(體積比為85∶15)]。其余條件如下:流速1 mL/min;檢測波長220 nm;柱溫30℃。底物1-(4-甲基苯基)乙醇的R型及S型對映體的保留時間分別為10.9 min和12.6 min,產(chǎn)物酯的R型及S型對映體的保留時間分別為6.7和7.1 min;底物1-(4-甲氧基苯基)乙醇的R型及S型對映體的保留時間分別為6.2和6.4 min,產(chǎn)物酯的R型及S型對映體的保留時間分別為3.9和4.4 min。
底物 轉(zhuǎn) 化 率 (C)=e.e.s/(e.e.s+e.e.p)×100%,底物對映體過量值(e.e.s)=(cS-cR)/(cS+cR)×100%,產(chǎn)物對映體過量值(e.e.p)=(cS1-cR1)/(cS1+cR1)×100%,對映體選擇率E=ln[1-C(1+e.e.p)/ln[1 -C(1 -e.e.p)]。式中:cR、cS為反應(yīng)后殘留2個對映體的濃度(mmol/L),cR1、cS1為反應(yīng)后生成的酯的2個對映體的濃度(mmol/L)。
根據(jù)現(xiàn)有文獻(xiàn)中關(guān)于α-苯乙醇衍生物分析的相關(guān)報道,筆者采用Chiral OD-H柱(4.6 mm×250 mm)對反應(yīng)中底物和產(chǎn)物的構(gòu)型進(jìn)行了分析,結(jié)合文獻(xiàn)[8,11]可知,對于(R,S)-1-(4-甲基苯基)乙醇,脂肪酶YCJ01可以選擇性地催化S型的底物生成酯化產(chǎn)物S型的乙酰-對甲基苯乙酯,光學(xué)純的R-1-(4-甲基苯基)乙醇并未發(fā)生反應(yīng)。而對于(R,S)-1-(4-甲氧基苯基)乙醇則結(jié)果相反,脂肪酶YCJ01優(yōu)先選擇催化R型底物生成R型的丁酰-對甲氧基苯乙酯,S型的1-(4-甲氧基苯基)乙醇未發(fā)生反應(yīng),其相關(guān)選擇性的機(jī)制有待于進(jìn)一步研究。據(jù)此可以判斷其2種底物的反應(yīng)式,如圖1所示。
圖1 脂肪酶YCJ01拆分對位取代α-苯乙醇Fig.1 Lipase YCJ01 catalyzed transesterification resolution of para-(R,S)-α-phenylethanol
在生物催化反應(yīng)中,溫度既影響酶的活力,也影響酶的立體選擇性,因而對反應(yīng)的影響很大[12]??疾鞙囟葘χ久竃CJ01拆分1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇反應(yīng)的影響,反應(yīng)6 h的結(jié)果見圖2。由圖2可知:隨著溫度的升高底物1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的轉(zhuǎn)化率和e.e.s值均呈現(xiàn)先升后降的過程,但是e.e.p值在整個升溫過程中變化不大,說明脂肪酶YCJ01的選擇性并沒有發(fā)生變化。1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的反應(yīng)轉(zhuǎn)化率分別在50、30℃下達(dá)到最高,分別為49.59%和49.34%。所以,脂肪酶 YCJ01拆分1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的最適反應(yīng)溫度分別為50、30℃。
圖2 溫度對拆分反應(yīng)的影響Fig.2 Effects of temperature on chiral resolution of α-phenylethanol
對于拆分反應(yīng)而言,不同的底物有不同的最佳?;w且酰基供體的濃度直接影響酶催化反應(yīng)的平衡,從而影響反應(yīng)的速度[13]。因此,考察1-(4-甲基苯基)乙醇與乙酸乙烯酯的摩爾比和1-(4-甲氧基苯基)乙醇與丁酸乙烯酯的摩爾比對脂肪酶YCJ01催化轉(zhuǎn)酯反應(yīng)的影響,反應(yīng)6 h的結(jié)果見圖3。由圖3可知,隨著?;w比例的提高,底物轉(zhuǎn)化率和e.e.s值先升后降。這可能是由于隨著?;w比例的提高,反應(yīng)平衡向正方向進(jìn)行,但過高的比例引起底物抑制且降低了反應(yīng)速率,導(dǎo)致轉(zhuǎn)化率和e.e.s值下降。E值變化不大,說明脂肪酶YCJ01的選擇性并沒有發(fā)生變化。當(dāng)1-(4-甲基苯基)乙醇與乙酸乙烯酯和1-(4-甲氧基苯基)乙醇與丁酸乙烯酯的摩爾比分別為1∶6和1∶5時,轉(zhuǎn)化率達(dá)到最高,分別為49.64%和49.79%。所以分別選取1-(4-甲基苯基)乙醇與乙酸乙烯酯的摩爾比為1∶6和1-(4-甲氧基苯基)乙醇與丁酸乙烯酯的摩爾比為1∶5時為最適反應(yīng)摩爾比。
圖3 ?;w與底物的摩爾比對拆分反應(yīng)的影響Fig.3 Effects of mole ratio of acyl doner to substrate on chiral resolution
在普通的生物催化體系中,當(dāng)?shù)孜餄舛容^低時,反應(yīng)速率與底物濃度成正比,不存在底物抑制現(xiàn)象,當(dāng)?shù)孜餄舛冗_(dá)到一定程度或過高時,可能會存在底物抑制和酶活性中心的使用效率受限[14]。本研究分別在上述優(yōu)化反應(yīng)條件下,考察了1-(4-甲基苯基)乙醇的濃度和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的濃度對反應(yīng)的影響,反應(yīng)6 h的結(jié)果見圖4。由圖4可知:當(dāng)1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇處于低濃度時,反應(yīng)速率隨著底物濃度的提高而加快,當(dāng)?shù)孜餄舛确謩e增加到180和150 mmol/L時,反應(yīng)速率達(dá)到最大值,繼續(xù)提高時,反應(yīng)速率下降。e.e.p值變化不大,說明脂肪酶YCJ01的選擇性并沒有發(fā)生變化。所以1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的濃度分別為180 mmol/L(24.5 g/L)和150 mmol/L(22.8 g/L)時為反應(yīng)的最適底物濃度。
圖4 底物濃度對拆分反應(yīng)的影響Fig.4 Effects of substrate concentration on chiral resolution
在上述優(yōu)化條件下分別研究了1-(4-甲基苯基)乙醇和1-(4-甲氧基苯基)乙醇的拆分反應(yīng)進(jìn)程曲線,結(jié)果見圖5。由圖5可知:1-(4-甲基苯基)乙醇的拆分體系反應(yīng)21 h后,底物轉(zhuǎn)化率達(dá)到49.96% ,e.e.s值為 97.1% 、e.e.p值為 97.2% ,對映體的選擇性(E)>200;1-(4-甲氧基苯基)乙醇的拆分體系反應(yīng)12 h后,底物轉(zhuǎn)化率達(dá)到49.82%,e.e.s值為 97.7%、e.e.p值為98.4%,對映體的選擇性(E)>200。Hatzakis等[7]利用脂肪酶拆分 1-(4-甲氧基苯基)乙醇,其轉(zhuǎn)化率及產(chǎn)物e.e.p均較低;王晨等[8]篩選了對1-(4-甲氧苯基)乙醇選擇性較高的脂肪酶,而底物濃度僅為1 mmol/L,脂肪酶用量為50 U/mL,時空產(chǎn)率低;本研究利用自主研發(fā)的脂肪酶粗酶粉手性拆分對位取代α-苯乙醇,底物濃度分別達(dá)到了180和150 mmol/L,表明脂肪酶YCJ01對對位取代α-苯乙醇具有很高的催化效率。
圖5 反應(yīng)時間對拆分反應(yīng)的影響Fig.5 Effects of feaction time on chiral resolution
采用脂肪酶YCJ01在非水相體系中拆分對位取代α-苯乙醇,在異丙醚體系中,1-(4-甲基苯基)乙醇和乙酸乙烯酯的濃度分別為180 mmol/L和1080 mmol/L,反應(yīng)21 h后,產(chǎn)物為S型的乙酰-對甲基苯乙酯和 R型的對甲基苯乙醇,底物轉(zhuǎn)化率達(dá)到49.96% ,e.e.s為 97.1% 、e.e.p為 97.2% ,對映體的選擇性E>200;1-(4-甲氧基苯基)乙醇和丁酸乙烯酯的濃度分別為150 mmol/L和750 mmol/L,反應(yīng)12 h后,產(chǎn)物為R型的丁酰-對甲氧基苯乙酯和S型的對甲氧基苯乙醇,底物轉(zhuǎn)化率達(dá)到49.82%,e.e.s為97.7%,e.e.p為98.4%,對映體的選擇性(E)>200。本實(shí)驗(yàn)中一直采用游離游離脂肪酶YCJ01做研究,不可重復(fù)利用,在后續(xù)的工作中,將對脂肪酶YCJ01進(jìn)行固定化研究,以期提高其在催化過程中的重復(fù)利用率。
[1]秦麗娜,喻曉蔚,徐巖.非水相中微生物脂肪酶催化轉(zhuǎn)酯化拆分(R,S)-α-苯乙醇[J].催化學(xué)報,2011,32(10):1639-1644.
[2]Nave S,Sonawane R P,Elford T G,et al.Protodeboronation of tertiary boronic esters:asymmetric synthesis of tertiary alkyl stereogenic centers[J].J Am Chem Soc,2010,132(48):17096-17098.
[3]MacLellan P,Clayden J.Enantioselective synthesis of tertiary thiols by intramolecular arylation of lithiated thiocarbamates[J].Chem Commun,2011,47(12):3395-3397.
[4]Brondani P B,Guilmoto N M A F,Dudek H M,et al.Chemoenzymatic approaches to obtain chiral-centered selenium compounds[J].Tetrahedron,2012,68(51):10431-10436.
[5]Hutchinson J H,Seiders T J,Wang Bowei,et al.Isoxazolyl antagonists of lysophosphatidic acid receptors:UK,2470833[P].2010-11-08.
[6]Heinsman N,F(xiàn)ranssen M C R,Van Der Padt A,et al.Lipasemediated resolution of branched chain fatty acids[J].Biocatal Biotransform,2002,20(5):297-309.
[7]HatzakisN S,Smonou I.Asymmetrictransesterification of secondary alcohols catalyzed by feruloyl esterase from Humicola insolens[J].Bioorg Chem,2005,33(4):325-337.
[8]王晨,王文凱,陳華勇,等.脂肪酶催化拆分1-(4-甲氧基苯基)乙醇的研究[J].現(xiàn)代食品科技,2009,25(4):379-381.
[9]Yao C J,Cao Y,Wu S,et al.An organic solvent and thermally stable lipase from Burkholderia ambifaria YCJ01:purification,characteristics and application for chiral resolution of mandelic acid[J].J Mol Catal B:Enzymatic,2013,85:105-110.
[10]何冰芳,姚長進(jìn),曹艷,等.高穩(wěn)定性耐有機(jī)溶劑脂肪酶產(chǎn)生菌及脂肪酶和其基因與應(yīng)用:中國,102329745A[P].2012-01-25.
[11]TurgutY,AzizogluM,ErdoganA,etal.β-Hydroxyamide derivatives of salicylic acid as organocatalysts for enantioselective reductions of prochiral ketones[J].Tetrahedron:Asymmetry,2013,24(13):853-859.
[12]MatteisV D.Temperatureand solventeffectson enzyme stereoselectivity:inversion temperature in kinetic resolutions with lipases[J].Chem Commun,2000,23:2351-2352.
[13]Yu D,Wang Z,Zhao L,et al.Resolution of 2-octanol by SBA-15 immobilized Pseudomonas sp.lipase[J].J Mol Catal B:Enzymatic,2007,48(3):64-69.
[14]Wang Z,Wang R,Tian J,et al.The effect of ultrasound on lipasecatalyzed regioselective acylation of mangiferin in non-aqueous solvents[J].J Asian Nat Prod Res,2011,12(1):56-63.