趙 丹,蘇 寧,鄭洪艷,楊 麗,霍 彤,王昌濤,*
(1.北京工商大學理學院,北京 100048;2.中國檢驗檢疫科學研究院,北京 100123)
微乳液相色譜法對藍莓葉黃酮類化合物的分離和測定
趙丹1,蘇寧2,鄭洪艷2,楊麗2,霍彤1,王昌濤1,*
(1.北京工商大學理學院,北京 100048;2.中國檢驗檢疫科學研究院,北京 100123)
目的:利用微乳液相色譜分離并測定藍莓葉中兒茶素、蘆丁、山柰酚、槲皮素和楊梅酮5 種黃酮成分。方法:從表面活性劑、助表面活性劑、pH值、有機相4 個方面對微乳液相色譜分離藍莓葉黃酮的條件進 行優(yōu)化。結果:分離藍莓葉黃酮的最優(yōu)條件為:使用2.5%聚氧乙烯(23)月桂醚作為表面活性劑,8%正丁醇為助表面活性劑,0.8%乙酸乙酯為有機相,0.5%乙酸調節(jié)體系pH值為3.2,在以上條件下藍莓葉黃酮在20 min內能夠得到有效分離。結論:藍莓葉中提取的黃酮類化合物含有兒茶素9.76 mg/g、蘆丁13.12 mg/g、山柰酚31.04 mg/g、槲皮素26.42 mg/g、楊梅酮20.30 mg/g。
藍莓葉;黃酮類化合物;微乳液相色譜;分離;測定
藍莓原產于美洲,不僅果實營養(yǎng)豐富,藍莓葉有利尿、解毒的功效,可入藥。藍莓葉汁中的花青素類黃酮能夠降血糖,有助于提高毛細血管的完整性,穩(wěn)定毛細血管的通透性,從而抑制糖尿病人血管和神經后遺癥的產生[1-3]。如何對藍莓葉黃酮進行提取分離,得到高純度的黃酮類物質已成為當今的研究熱點。傳統的分離純化黃酮類化合物的方法有液-液萃取法、柱色譜法等,還有氣相色譜-質譜(gas chromatography with mass spectrometry,GC-MS)聯用法、高效液相色譜(high-performance liquid chromatography, HPLC)法和HPLC-質譜(HPLC combined with mass spectrometry,HPLC-MS)聯用法等[4-6]。在上述的方法中,多數以大量的有機溶劑作為流動相,對環(huán)境造成了不利的影響[7-8]。微乳液相色譜(microemulsion liquid chromatography,MELC)是一種將表面活性劑、助表面活性劑、油和水等物質以一定的比例混合后形成的油水混合分散體系為流動相的液相色譜,溶質的保留由其在固定相、微乳分散相和水相之間的分配平衡決定。通過調節(jié)優(yōu)化參數,可改善溶質的保留行為,提高分離度[9-10]。微乳流動相含有水約90%,利用MELC對物質進行分離具有低污染、分離效果好、分離速度快的優(yōu)點[11]。
目前與藍莓葉黃酮相關的研究多集中在藍莓葉總黃酮的提取以及抗氧化活性的檢測,而在其成分的分離測定方面研究甚少。本實驗利用MELC對藍莓葉黃酮進行分離與測定,從表面活性劑、助表面活性劑、有機相和pH值4 個方面對色譜條件進行優(yōu)化,使藍莓葉黃酮的主要成分在短時間內得到有效分離。以此建立準確可靠、穩(wěn)定快速檢測藍莓葉黃酮成分的方法,為藍莓葉黃酮的進一步開發(fā)和應用提供了理論依據。
1.1材料與試劑
十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulphate,SDS)、聚氧乙烯(23)月桂醚(polyethylene glycol monoisotridecyl ether,Brij-35)均為分析純;兒茶素、蘆丁、槲皮素、山柰酚和楊梅酮標準品(純度>97%)上海阿拉丁試劑公司。乙酸乙酯、乙酸、乙醇、鹽酸、正丁醇(均為分析純) 北京化工廠;甲醇(色譜純)美國Fisher Chemical公司。
超純水通過Mili-Q水微乳凈化系統(Milford,USA)制得,所配制溶液需通過0.45 μm的濾膜(美國Millipore公司)進行過濾,以此來保證流動相中無雜質。
1.2儀器與設備
T6型新世紀紫外-可見分光光度計 北京普析通用儀器有限公司;RE-301旋轉蒸發(fā)儀 上?;ゼ褍x器有限公司;SHZ-CD型循環(huán)水真空泵 上海貝倫儀器設備有限公司;MELC系統:1525二進制HPLC泵、2707自動進樣系統、2489 UV/VIS檢測器、反相C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm) 美國Waters公司。
1.3方法
1.3.1藍莓葉黃酮樣品的制備
取500 mL質量濃度為300 mg/mL的粗提藍莓葉黃酮溶液,準確稱取經50 g預處理過的DM130樹脂,在25 ℃條件下恒溫振蕩吸附4 h。以60%乙醇為洗脫劑,進行靜態(tài)洗脫4 h,得到純化的藍莓葉黃酮提取物,將其冷凍干燥至恒質量。準確稱3 份10.0 g冷凍干燥后,分別加20 mL 70%乙醇(0.2%乙酸)溶液,超聲15 min,室溫條件下靜置,過濾,用70%乙醇溶液定容至100 mL。精密取1 mL,用甲醇定容至10 mL,在檢測前通過0.45 μm濾膜,待用[12]。
1.3.2標準溶液的制備
精密稱取真空干燥至恒質量的5 種標準品各0.020 0 g,分別加甲醇超聲溶解后,轉移至10 mL容量瓶中,定容,搖勻,配制成2.00 mg/mL儲備液。分別取5 種標準儲備液2 mL,混合后超聲混勻制成混合標準液質量濃度為0.40 mg/mL。對混合標準溶液梯度稀釋至0.04、0.08、0.10、0.20、0.40 mg/mL。標準溶液在檢測前經0.45 μm濾膜進行過濾。
1.3.3色譜條件
檢測波長368 nm和279 nm;流速1.0 mL/min ;進樣量10 μL。流動相1.0%乙酸乙酯,2.5%Brij-35,8.0%正丁醇,0.5%乙酸,pH 4.5。流動相配制好后超聲30 min,待微乳液呈透明溶液后用0.45 μm膜過濾。
2.1表面活性劑及質量分數的選擇
表面活性劑的類型和質量分數對微乳的形成和性質有重要影響[13]。色譜分離的選擇性會受到表面活性劑類型的影響,表面活性劑改變了黃酮類物質在微乳液滴間的分配性質,并使黃酮類物質與固定相間的作用發(fā)生改變[14-16]。微乳液體系中常用作為檢測黃酮類化合物的表面活性劑有SDS、Brij-35和吐溫20等。本實驗采用SDS-乙酸乙酯-正丁醇和Brij-35-乙酸乙酯-正丁醇微乳體系為流動相,在微乳穩(wěn)定質量分數范圍內,選擇2.5% SDS和1.0% Brij-35進行考察[17]。2 種表面活性劑對5 種黃酮類物質的保留因子(k)的影響不同,如表1所示。結果表明,由于SDS對微乳流動相的洗脫能力 較強,混合樣品與溶劑幾乎同時出峰,而Brij-35的洗脫能力相對較弱,能夠使5 種標準樣品混合液達到基線分離。因此,選擇Brij-35作為表面活性劑進行后續(xù)實驗。
表1 不同類型表面活性劑對黃酮類物質保留因子的影響Table1 Effect of surfactants on the retention factors of five flavonoids
表面活性劑可以被固定相吸附,并能填充柱填料間存在的空隙[18],待測樣品的保留時間會隨著表面活性劑質量分數的增加而縮短[19-20]。
由圖1可以看出,隨著表面活性劑Brij-35 質量分數從0.5%增加到2.5%,混合標品(兒茶素、蘆丁、槲皮素、山柰酚和楊梅酮)的出峰時間不斷縮短。當Brij-35質量分數低于2.0%時,5 種黃酮標品達不到基線分離;增加Brij-35至2.5%,5 種物質分離效果較好。如果Brij-35質量分數繼續(xù)增加,則混標的保留時間過短。因此,2.5% Brij-35作為最適表面活性劑添加量,保證了適當的洗脫時間的同時,也保證了5 種黃酮標準品可以達到基線分離。
圖1 Brij-35添加量對5 種黃酮標準品色譜保留力的影響Fig.1 Effect of Brij-35 concentration on the retention times of five flavonoids
2.2助表面活性劑的影響
微乳液是通過表面活性劑將油相和水相進行結合的,但是僅僅依靠表面活性劑、水相和油相3者組成的體系是極不穩(wěn)定的[21]。在助表面活性劑的作用下可以使體系更加的穩(wěn)定[22]。
圖2 正丁醇添加量對5 種黃酮標準品色譜保留力的影響Fig.2 Effect of n-butyl alcohol concentration on the retention times of five flavonoids
通過考察異丙醇、四氫呋喃和正丁醇3 種不同類型助表面活性劑對分離選擇性的影響發(fā)現,以異丙醇和四氫呋喃作為助表面活性劑,標準品出峰位置重疊,而正丁醇作為助表面活性劑可以使混合標準品中的5 個峰得到基線分離??疾煺〈继砑恿康玫降慕Y果表明(圖2),添加5.0%正丁醇溶液使兒茶素和蘆丁出峰時間非常接近,保留時間過長。當添加量增加至8.0%時,由于正丁醇提高了微乳液的增溶作用,標準品的保留時間明顯縮短,且兒茶素和蘆丁可以達到最佳的基線分離效果。但正丁醇的添加量繼續(xù)增加對其分離影響不大。綜合考慮,選取8.0%作為正丁醇的添加量。
2.3pH值的影響
考察流動相在pH 3.2~5.2條件下藍莓葉黃酮的分離效果。如圖3所示,乙酸添加量為0.1%時,兒茶素和蘆丁出峰時間重疊。隨著乙酸添加量的增加,兒茶素和蘆丁的分離效果越來越好,在添加量0.5%、流動相pH 3.2的條件下,5 種黃酮類物質基本可以達到基線分離。當流動相中乙酸的添加量大于0.5%時,標準品的保留時間過長,且流動相pH值過低易發(fā)生鍵合相水解,對色譜柱會有損害,縮短使用壽命。因此選擇在流動相中添加0.5%乙酸。
圖3 乙酸添加量(pH值)對5 種黃酮標準品色譜保留力的影響Fig.3 Effect of acetic acid concentration on the retention times of five flavonoids
2.4有機相的影響
有機相的類型和濃度都會因為其極性的差異而對黃酮類物質的出峰時間有著顯著的影響[23]。常作為有機相的溶劑有乙酸乙酯、正庚烷、正辛烷。這幾種有機溶劑對5 種黃酮類化合物的洗脫能力各不相同,正辛烷最大,乙酸乙酯最小,并且只有乙酸乙酯可以使被測5 種黃酮成分達到基線分離[24-25]。故選擇乙酸乙酯作為有機相進行后續(xù)的工藝優(yōu)化。圖4顯示了0.1%~0.8%添加量的乙酸乙酯對標準品保留時間的影響。
圖4 乙酸乙酯添加量對5 種黃酮標準品色譜保留力的影響Fig.4 Effect of ethyl acetate concentration on the retention times of five flavonoids
由圖4可知,乙酸乙酯添加量對黃酮標準品的影響不如其他條件明顯。乙酸乙酯的添加量從0.1%提高到0.2%時,槲皮素、山柰酚和楊梅酮的保留時間有所延長,但乙酸乙酯的添加量繼續(xù)增加,對5 種黃酮標準品的保留時間沒有太大影響。當乙酸乙酯的添加量達到0.8%時,兒茶素和蘆丁的分離較好,因此選擇0.8%為乙酸乙酯的添加量。
2.5檢測波長的選擇
在以上實驗中獲得的最優(yōu)條件下,測量混合標準品在279 nm和368 nm的出峰情況。如圖5所示,在279 nm條件下,5 種黃酮標準品峰形良好,出峰時間適當,并無拖尾現象。在368 nm條件下楊梅酮沒有出峰,不能達到分離的目的。因此選擇279 nm作為分離藍莓葉黃酮的最佳檢測波長。綜合以上最優(yōu)條件,繪制5 種混合標品的標準曲線,結果見表2。
圖5 279nm(A)和368 nm(B)檢測波長下混標MELC色譜圖Fig.5 Microemulsion liquid chromatogram (MELC) of mixed standard solution of five flavonoids at different wavelengths
表2 MELC法測定5 種黃酮標準品的標準曲線Table2 Standard curve equations for the MELC determination of five flavonoids
2.6藍莓葉提取物中的黃酮成分含量
圖6 MELC法對藍莓葉提取物黃酮成分的含量測定Fig.6 Microemulsion liquid chromatogram (MELC) of flavonoids extracted from blueberry leaves
按照優(yōu)化得到的色譜條件,對3 個不同批次的藍莓葉提取物中的黃酮成分進行測定,結果如圖6所示。由于藍莓葉黃酮中除了本研究的5 種物質外,還含有多種其他成分,在進行MELC分離時會出現多個物質出峰接近的情況。根據預實驗摸索的條件,在5 種物質的相應出峰時間計算出峰面積,結合標準曲線,得出藍莓葉黃酮中5 種組分含量。見表3。
表3 MELC法對藍莓葉提取物中5 種黃酮成分的含量測定(n=3)Table3 Contents of three flavonoids in the extract of blueberry leaves (n=3)
在綜合考慮保留時間和分離效果的前提下,本實驗從表面活性劑等4 個方面對MELC分離檢測藍莓葉黃酮的條件進行了摸索和優(yōu)化。得到最優(yōu)檢測參數:279 nm檢測波長下,使用2.5% Brij-35作為表面活性劑,8%正丁醇為助表面活性劑,0.8%乙酸乙酯為有機相,利用0.5%乙酸調節(jié)體系pH值為3.2,在以上條件下藍莓葉黃酮在20 min內能夠得到有效分離。最終測得藍莓葉黃酮中含有兒茶素9.76 mg/g、蘆丁13.12 mg/g、山柰酚31.04 mg/g、槲皮素26.42 mg/g、楊梅酮20.30 mg/g。
本方法可在短時間內同時檢測藍莓葉黃酮中5 種物質的含量,并得到有效的分離,結果準確可靠,重復性好,靈敏度高。為今后在生產實踐中開發(fā)利用藍莓葉提供了一定的理論基礎和方法指導。
[1] NAGAO K, HIGA K, SHIROUCHI B, et a1. Effects of Vaccinium ashei Reade leaves on lipid metabolism in Otsuka Long. Evans Tokushima Fatty rats[J]. Bioscience Biotechnology and Biochemistry,2008, 72: 1619-1622.
[2] 張玉香, 曲慧鴿, 楊潤亞, 等. 響應面法優(yōu)化藍莓葉黃酮的微波提取藝[J]. 食品科學, 2010, 31(16): 33-37.
[3] 劉小莉, 周劍忠, 單成俊. 藍莓葉總黃酮的微波提取及抗氧化活性研究[J]. 食品研究與開發(fā), 2011, 32(3): 44-46.
[4] 袁帥, 姚勝軍, 耿昱. HPLC-ESI-MS/MS 識別藍莓提取物中的花青素和黃酮醇[J]. 化學學報, 2009(4): 318-322.
[5] ZUO Yuegang, WANG Chengxia, ZHAN Jian. Separation,characterization, and quantitation of benzoic and phenolic antioxidants in American cranberry fruit by GC-MS[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2002, 50(13): 3789-3794.
[6] 馮進, 李敏, 曾曉雄, 等. 大孔樹脂純化藍莓葉多酚及其組成分析[J].食品科學, 2013, 34(10): 86-91. doi: 10.7506/spkx1002-6630-201310019.
[7] LEO M, ABREU M, PAWLOWSKA A, et al. Profiling the chemical content of Opuntia fi cus-indica flowers by HPLC-PDA-ESI-MS and GC/EIMS analyses[J]. Phytochemistry Letters, 2010, 3(1): 48-52.
[8] 朱冬雪, 顧采琴, 周伯春. 不同大孔樹脂吸附-解吸附喜樹黃酮性能的研究[J]. 廣東化工, 2011, 12(38): 180-181.
[9] 朱蘭寸, 劉志華, 李高, 等. 微乳液相色譜法測定廣東紫珠中5 種黃酮成分[J]. 中國現代應用藥學, 2013, 30(6): 651-654.
[10] SELLAPAN S, AKOH C, KREWER G. Phenolic compounds and antioxidant capacity of Georgia-grown blueberries and blackberries[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2002, 50(8): 2432-2438.
[11] 張守堯, 周蘇泰, 王秉鈞, 等. 微乳液相色譜法測定虎杖中2 種成分的含量[J]. 今日藥學, 2009, 19(2): 41-43.
[12] SKUPIEN K, OSZMIANSKI J, KOSTRZEWA N D, et al. In vitro antileukaemic activity of extracts from berry leaves against sensitive and multi-drug resistant HL60 cells[J]. Cancer letters, 2006, 236: 281-291.
[13] 劉建芳, 孫進, 何仲貴. 微乳液相色譜法及其應用進展[J]. 分析化學,2007, 35(10): 1529-1534.
[14] WALASH M, BELAI F, El-ENANYl N, et al. Microemulsion liquid chromato-graphic determination of nicardipine hydrochloride in pharmaceutical preparations and biological fluids. Application to stability studies[J]. Journal of Liquid Chromatography and Related Technologies, 2007, 30(8): 1015-1034.
[15] 陳紅蘭, 劉成梅, 劉瑋琳, 等. 微乳技術的應用[J]. 江西食品工業(yè),2008(2): 36-37; 41.
[16] ALTHANYAN M, ASSI K, CLARK B, et al. Microemulsion high performance liquid chromatography (MELC) method for the determination of terbutaline in pharmaceutical preparation[J]. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2011, 55(3): 397-402.
[17] 李寧, 黃光亮, 李玉蘭. 微乳液型色譜法同時測定山楂葉提取物中4種黃酮成分[J]. 分析化學研究簡報, 2009(12): 1791-1794.
[18] RUIZ A M, CARDA B S, TORRES L, et al. Retention mechanisms in micellar liquid chromatography[J]. Journal of Chromatography A,2009, 1216(10): 1798-1814.
[19] 何素珍. 微乳液相色譜法在中藥成分分析中的應用[D]. 廣州: 南方醫(yī)科大學, 2012.
[20] MALENOVIC A, IVANOVIC D, MEDENNICA M, et al. Influence of structural and interfacial properties of microemulsion eluent on chromatographic separation of simvastatin and its impurities[J]. Jou rnal of chromatography A, 2006, 1131(1/2): 67-73.
[21] WAMON M, SHEILA D, JOE P, et al. Optimisation and validation of a rapid and efficient microemulsion liquid chromatographic (MELC)method for the determination of paracetamol (a cetaminophen) content in a suppository formulation[J]. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2007, 44(1): 137-143
[22] 孫斌, 章平, 瞿偉菁, 等. 沙棘籽渣黃酮類化合物誘導人肝癌細胞凋亡研究[J]. 中藥材, 2003, 26(12): 875-877.
[23] LI Yuan, SONG Jiaqi, TIAN Ning, et al. Improving oral bioavailability of metformin hydrochloride using water-in-oil microemulsions and analysis of phase behavior after dilution[J]. International Journal of Pharmaceutics, 2014, 473(1/2): 316-325.
[24] 韓明, 曾慶孝, 肖更生, 等. 微乳層析分離鑒定青梅提取物中的黃酮類成分[J]. 華南理工大學學報: 自然科學版, 2005, 33(6): 85-88.
[25] 李寧, 侯璇珠, 楊雯, 等. 水包油型微乳液相色譜分離激素類藥物的影響因素[J]. 色譜, 2009, 27(3): 323-327.
Isolation and Quantification of Flavonoids in Blueberry Leaves by Microemulsion Liquid Chromatography
ZHAO Dan1, SU Ning2, ZHENG Hongyan2, YANG Li2, HUO Tong1, WANG Changtao1,*
(1. School of Science, Beijing Technology and Business University, Beijing 100048, China;2. Chinese Academy of Inspection and Quarantine, Beijing 100123, China)
Purpose: To optimize the procedure for isolating flavonoids from blueberry leaves by microemulsion liquid chromatography (MELC) and to quantify the flavonoids obtained under the optimum conditions. Methods: Four MELC conditions including surfactant, cosurfactant, pH of the mobile phase and organic phase were optimized. Results: The optimum chromatographic conditions were determined as follows: 2.5% Brij-35 act as the surfactant, 8% 1-butanol as the cosurfactant, the mobile phase adjusted to pH 3.2 with 0.5% acetic acid, and 0.8% ethyl acetate as the organic solvent. The flavonoids in blueberry leaves could be separated efficiently and quantified precisely in 20 minutes under the above conditions. Conclusions: The flavonoids in blueberry leaves included catechinic acid (9.76 mg/g), rutin (13.12 mg/g),kaempferol (31.04 mg/g), quercetin (26.42 mg/g), and myricetin (20.30 mg/g).
blueberry leaves; flavonoids; microemulsion liquid chromatography; isolation; quantification
R151.3
A
1002-6630(2015)14-0091-05
10.7506/spkx1002-6630-201514018
2014-11-03
質檢公益性行業(yè)科研專項(201310132;201410019)
趙丹(1988—),女,助理實驗師,碩士,研究方向為生物技術。E-mail:zhaodanustb@126.com
王昌濤(1975—),男,教授,博士,研究方向為植物功效成分開發(fā)應用。E-mail:wangct@th.btbu.edu.cn