伍尚敏,洪曉婭,伍 可,蘇曉三,余 璐,高 揚(yáng)
(1.昆明市第一人民醫(yī)院暨昆明醫(yī)科大學(xué)附屬甘美醫(yī)院·昆明學(xué)院附屬醫(yī)院整形外科云南昆明650011;2.大連醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院婦產(chǎn)科遼寧大連116000)
VEGF-殼聚糖微囊復(fù)合緩釋載體的制備
伍尚敏1,洪曉婭1,伍可2,蘇曉三1,余璐1,高揚(yáng)1
(1.昆明市第一人民醫(yī)院暨昆明醫(yī)科大學(xué)附屬甘美醫(yī)院·昆明學(xué)院附屬醫(yī)院整形外科云南昆明650011;2.大連醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院婦產(chǎn)科遼寧大連116000)
目的:研究VEGF(vascular endothelial growth factor)-殼聚糖緩釋微囊的制備工藝。方法:采用離子沉淀-凝聚法制備VEGF-殼聚糖緩釋微囊,并檢測其包封率和載藥量。結(jié)果:實(shí)驗(yàn)制備的VEGF-殼聚糖緩釋微囊包封率為87%,載藥量為4.35%,微囊大小均勻,光潔度與成形度好。結(jié)論:本制備工藝方法簡單易行,穩(wěn)定,重現(xiàn)性好。說明利用天然高分子多糖類物質(zhì)殼聚糖來包封VEGF是切實(shí)可行的,VEGF-殼聚糖緩釋微囊具有進(jìn)一步研究和應(yīng)用價值。
血管內(nèi)皮生長因子;殼聚糖;微囊;載藥量;包封率
在組織移植和創(chuàng)傷修復(fù)的過程中局部微循環(huán)的建立和充足的血供對提高移植組織的存活率、促進(jìn)創(chuàng)傷的快速愈合具有重要作用。傳統(tǒng)方法多采用直接添加外源性生長因子的手段,此種添加方式易造成其濃度僅一過性增高而難以形成長期穩(wěn)定的有效濃度。研究表明,血管內(nèi)皮生長因子是血管生成的重要因子,它促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞的增殖,血管增生,延長血管內(nèi)皮細(xì)胞的壽命以及增加血管通透性和血管維持作用[1-2]。外源性單純局部供給VEGF往往利用率較低或較快代謝,影響了移植物的存活,因而研制一種能提高VEGF生物利用度的長效緩釋制劑就顯得尤為重要。
殼聚糖是一種無毒,無免疫抗原反應(yīng),可生物降解的天然高分子聚陽離子聚合物,具有pH響應(yīng)性和良好的生物相容性及成膜性、且易于進(jìn)行修飾[3-4],可作為優(yōu)良的藥物控緩釋及靶向載體,黏膜吸附劑、吸收促進(jìn)劑等,是一種新型生物醫(yī)學(xué)和藥物傳遞應(yīng)用材料[5]。
近年來,殼聚糖作為控釋輔料在藥物傳遞系統(tǒng)中得到了廣泛的應(yīng)用,曾見報道納米微囊-VEGF復(fù)合體對創(chuàng)傷、慢性創(chuàng)面等的愈合影響研究[6-9],但較少論及VEGF-殼聚糖緩釋微囊具體制備方法及結(jié)果測試。本實(shí)驗(yàn)制備VEGF殼聚糖緩釋微囊并檢測其包封率、載藥量和體外釋放特征,旨在為VEGF-殼聚糖微囊復(fù)合緩釋載體在相關(guān)研究中的應(yīng)用提供依據(jù)。
1.1材料
殼聚糖(sigma 448869)、吐溫-80(Solarbio T8360)、硫酸鈉(西隴化工股份有限公司)、冰醋酸(光東光華科技股份有限公司)、重組大鼠VEGF溶液(PEPROTECH 400-31)、大鼠VEGF ELISA試劑盒(欣博盛ERC103)、PBS(Hyclone SH30256);使用儀器有:移液槍、磁力攪拌器、超聲波發(fā)生器、顯微鏡、離心機(jī)、電子天平、凍干機(jī)、酶聯(lián)免疫檢測儀,恒溫孵育箱、紫外分光光度計(jì)。
1.2方法
1.2.1制備空白殼聚糖微囊球:制作空白殼聚糖,用作VEGF載體。
1.2.1.1微囊球溶解液:①2%冰醋酸溶液(2ml冰醋酸加雙蒸水至100ml,pH值6.2);②20%硫酸鈉溶液(20克硫酸鈉溶解到雙蒸水中,定容至100ml)。
1.2.1.2稱取0.25g殼聚糖,用100ml 2%冰醋酸溶液溶解、磁力攪拌器攪拌20min。加入1ml吐溫-80,磁力攪拌20min,滴加20%的硫酸鈉溶液至溶液渾濁。
1.2.1.3取少量溶液通過紫外分光光度計(jì)于500nm處檢測其濁度來判定微球的形成。微球形成后繼續(xù)磁力攪拌30min,超聲波處理10min,轉(zhuǎn)移到50ml離心管中,1 200rpm離心15min,上清液倒掉。重復(fù)“加入5ml雙蒸水重懸,1 200rpm離心15min,上清液倒掉”3次。冷凍干燥,4℃保存。
1.2.2制備VEGF殼聚糖微囊
1.2.2.1溶液:①空白殼聚糖微囊溶解液;②2%冰醋酸溶液(2ml冰醋酸加雙蒸水至100ml,pH值6.2);③重組大鼠VEGF溶液(30μg VEGF溶于500μl雙蒸水中)。
1.2.2.2制備VEGF殼聚糖微囊:取1mg冷凍干燥的空白殼聚糖微球,用2ml醋酸緩沖液溶解,加入500μl(500μg)VEGF溶液。4℃條件下磁力攪拌60min,轉(zhuǎn)入到15ml離心管。4℃,10 000~12 000rpm離心10min,收集上清液,為離心液。沉淀中加入1ml雙蒸水,重懸。4℃,10 000~12 000rpm離心10min,收集上清液,為洗滌液。沉淀中加入1ml雙蒸水,重懸。收集上清液,為洗滌液。沉淀中加入1ml雙蒸水,重懸。將收集的上清液(離心液和洗滌液)收集合并為“合并液”共3.5ml,放入4℃冰箱備用。沉淀物凍干保存與-20℃?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3VEGF殼聚糖微囊載藥量及其包封率的測定
1.2.3.1樣品準(zhǔn)備:將制備VEGF殼聚糖微囊時所收集的合并液用ELISA試劑盒中的標(biāo)準(zhǔn)品跟樣品通用稀釋液稀釋1 000倍。
1.2.3.2檢測前準(zhǔn)備工作:提前20min從冰箱中取出試劑盒,以平衡至室溫;用雙蒸水將20×濃縮洗滌液稀釋成1×工作液;標(biāo)準(zhǔn)品:加入標(biāo)準(zhǔn)品跟樣品通用稀釋液0.5ml至凍干標(biāo)準(zhǔn)品中,靜止15min,待其充分溶解后,輕輕混勻(濃度為1 000pg/ml)。然后再進(jìn)行梯度稀釋,稀釋后標(biāo)準(zhǔn)曲線使用濃度為1 000pg/ml、500pg/ml、250pg/ml、125pg/ml、62.5pg/ml、31.25pg/ ml、15.60pg/ml;生物素化抗體工作液:使用前20min,用生物素化抗體稀釋液將30×的濃縮生物素化抗體稀釋成1×工作液;酶結(jié)合物工作液:使用前20min,用酶結(jié)合物稀釋液將30×的濃縮酶結(jié)合物稀釋成1×工作液。
1.2.3.3測定吸光度:從已平衡至室溫的密封袋中取出試驗(yàn)所需板條,空白孔加標(biāo)準(zhǔn)品標(biāo)本通用稀釋液,其余相應(yīng)孔中加不同濃度標(biāo)準(zhǔn)品和待測樣品(100μl/孔),用封板膠紙封住反應(yīng)孔,36℃孵箱孵育90min。提前20min準(zhǔn)備生物素化抗體工作液。甩盡孔內(nèi)液體,在潔凈的吸水紙上拍干,每孔加洗滌液350μl,靜止30s后甩盡液體,在干凈的吸水紙上排干,洗板5次??瞻卓准由锼鼗贵w稀釋液,其余孔加入生物素化抗體工作液(100μl/孔)。用新封板膠紙封住反應(yīng)孔,36℃孵箱孵育60min。提前20min準(zhǔn)備酶結(jié)合物工作液。避光室溫(22~25℃)放置。洗板5次??瞻卓准用附Y(jié)合物稀釋液,其余孔加入酶結(jié)合物工作液(100μl/孔)。用新封板膠紙封住反應(yīng)孔,36℃孵箱,避光孵育30min。打開酶標(biāo)儀電源,預(yù)熱儀器,設(shè)置好檢測程序。洗板5次。加入顯色底物(TMB)100 μl/孔,避光36℃孵箱,避光孵育15min。加入終止液100μl/孔,混勻后即刻測量OD450值(3min內(nèi))。
1.2.4計(jì)算包封率(%)和載藥量(%):根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品所測的OD值,得出標(biāo)準(zhǔn)曲線和標(biāo)準(zhǔn)曲線公式。包封率(%)=(投藥量-合并液中藥量)/投藥量×100%,載藥量(%)=(投藥量-合并液中藥量)/微囊重量×100% 1.2.5 VEGF殼聚糖微囊囊體外釋放實(shí)驗(yàn):取0.05mg VEGF-殼聚糖微囊,混懸于1ml PBS中,濃度為50μg/ml。37℃恒溫下磁力攪拌30min。將攪拌好的VEGF-殼聚糖微囊用PBS進(jìn)行梯度稀釋,稀釋梯度為10,102,103,104,105,稀釋后VEGF-殼聚糖微囊的濃度分別為5μg/ml、0.5μg/ml、0.05μg/ml、0.005μg/ml、0.0005μg/ml。分別將5個梯度的VEGF-殼聚糖微囊溶液于24h、48h、72h、96h、120h時收集樣品,每個樣本收集500μl溶液。將收集的樣品以10 000r/min離心15min,取上清液10μl,凍存于-20℃冰箱中。待120h后樣品全部收集完成,ELISA檢測其450nm處的OD值,根據(jù)所測樣品OD值得出標(biāo)準(zhǔn)曲線公式(表3)及標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖4)。
2.1微囊500nm處的OD值
空白管OD值0.035,殼聚糖管OD值1.975,OD500nm=1.975-0.035=1.940。
2.2微囊外觀
在光學(xué)顯微鏡100倍下觀察制的空白殼聚糖微囊(圖1)和VEGF殼聚糖微囊(圖2)。
2.3VEGF殼聚糖微囊包封率(%)和載藥量(%)
不同濃度標(biāo)準(zhǔn)品和待測樣品(100μl/孔)OD450值見表1,標(biāo)準(zhǔn)曲線公式為:Y=0.00104X+ 0.0842,R2=0.999,VEGF殼聚糖微囊樣品在450nm處的OD值為1.292、1.290、1.291,平均值為1.291,即
圖1 A超聲波處理之前空白殼聚糖微囊顯微鏡照片(×200)
圖1 B超聲波處理之后空白殼聚糖微囊顯微鏡照片(×200)
表1 450nm處所測OD值的數(shù)據(jù)
表2 標(biāo)準(zhǔn)曲線公式
公式中的Y=1.291,將1.291帶入公式中得出X= 1114(pg/ml),樣品稀釋倍數(shù)為1 000倍,合并液總體積為3.5ml,則3.5ml合并液中的VEGF量為:1.114X10-3×103×3.5=3.9μg,包封率=(30-3.9)/ 30×100%=87%,載藥量=(30-3.9)/600×100%= 4.35%。標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖3。
2.5VEGF殼聚糖微囊體外釋放趨勢
ELISA檢測450nm處的OD值,得出標(biāo)準(zhǔn)曲線公式(表2)及標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖4)。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性回歸方程,即可得出VEGF-殼聚糖微囊在PBS溶液中同一濃度不同時間藥物釋放趨勢(圖5)和同一時間不同濃度藥物釋放趨勢曲線(圖6)。
殼聚糖微囊包封藥物有以下特點(diǎn):①有明顯的控制藥物釋放和延長藥效的作用;②增加藥物的靶向性;③降低所包封藥物的毒副作用;④提高藥物的穩(wěn)定性;⑤提高疏水性藥物對細(xì)胞膜的通透性。
圖2 VEGF殼聚糖微囊顯微鏡照片(×200)
圖3 根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品所測的OD值作標(biāo)準(zhǔn)曲線
圖4 VEGF殼聚糖微囊在PBS溶液中釋放的標(biāo)準(zhǔn)曲線
圖5 同一濃度不同時間藥物釋放趨勢
圖6 同一時間不同濃度藥物釋放趨勢
本實(shí)驗(yàn)采用離子沉淀-凝聚法制備VEGF-殼聚糖緩釋微囊,微囊在500nm處的OD值:空白管OD值0.035,殼聚糖管OD值1.975,OD500nm=1.975-0.035=1.940,即實(shí)驗(yàn)組(殼聚糖組)跟空白組(冰醋酸溶液跟硫酸鈉溶液)相比,OD值明顯升高,可見實(shí)驗(yàn)組已經(jīng)形成了大量的殼聚糖微囊。在圖1中,從A圖和跟B圖看出,超聲波處理之后殼聚糖微囊大大降低了粘附程度,這樣更有利于VEGF進(jìn)入殼聚糖中。
載藥量可直接影響臨床用藥劑量,而包封率則體現(xiàn)了制備工藝的優(yōu)劣及制劑質(zhì)量[10]。本實(shí)驗(yàn)所得的VEGF殼聚糖緩釋微囊包封率尚好,為87%,表明本實(shí)驗(yàn)VEGF-殼聚糖緩釋微囊制備工藝較好,原料利用率高,微球的球型度和光潔度也比較好。但載藥量較低,為4.35%,預(yù)計(jì)可通過增加VEGF濃度加以提升,或者進(jìn)一步尋求更利于提高載藥量的方法。
從圖5中可以看出:當(dāng)VEGF殼聚糖微球的濃度相同時,隨著時間的推移,VEGF是持續(xù)地從殼聚糖中釋放出來,當(dāng)釋放到一定量時VEGF將不再釋放,其中12~48hOD值變化較小,即VEGF的濃度變化較小,VEGF殼聚糖微球中的VEGF釋放較慢,48~72hOD值變化較大,VEGF的濃度變化較大,及VEGF殼聚糖微球中的VEGF釋放較快,72~96hOD值變化又趨于平緩,VEGF殼聚糖微球中的VEGF緩慢釋放。96h之后OD值幾乎不再變化,即VEGF幾乎不再釋放。
圖6顯示:5個不同的濃度在24h之內(nèi)OD值幾乎不變化,即VEGF的濃度幾乎沒有變化,VEGF殼聚糖微球中的VEGF幾乎不釋放,48h之后VEGF殼聚糖微球濃度越高,所測OD值越大,即PBS溶液中VEGF濃度越高,即48h之后VEGF殼聚糖微球濃度越高,VEGF殼聚糖微球中的VEGF釋放越多。但當(dāng)VEGF殼聚糖微球濃度稀釋到1 000倍時,OD值變化緩慢,即VEGF釋放緩慢。
殼聚糖具有良好的生物相容性和生物可降解性,可作為優(yōu)良的藥物控緩釋及靶向載體,黏膜吸附劑、吸收促進(jìn)劑,因此利用天然高分子多糖類物質(zhì)殼聚糖包封VEGF是切實(shí)可行的。由于VEGF在血管生成過程中具有重要而廣泛的活性,VEGF-殼聚糖緩釋微囊作為新劑緩釋載體,對細(xì)胞和組織等無毒性,能以適當(dāng)速度被吸收降解,對VEGF有較高的包封率及穩(wěn)定的緩釋效果,因而具有很好的科研和臨床應(yīng)用前景。
[1]GolocheikineA,TiriveedhiV,AngaswamyN,etal. Cooperativesignalingforangiogenesisand neovascularization by VEGF and HGF following islet transplantation[J].Transplantation,2010,90(7):725 731.
[2]雷鳴,劉世清,劉宇蘭,等.轉(zhuǎn)染VEGF基因提高游離自體顆粒脂肪移植物存活率的實(shí)驗(yàn)研究[J].中華整形外科雜志,2008,24(1):67-70.
[3]Zarzycki R,Modrzejewska Z.Use of chitosan in medicine and biomedicalengineering[J].PolimMed,2003,33(1-2):47-58.
[4]Jayakumar R,Prabaharan M,Nair SV,et al.Tamura H.Novel chitin and chitosan nanofibers in biomedical applications[J]. BiotechnolAdv,2010,28(1):142-50.
[5]盧華定,呂璐璐,趙慧清,等.體外培養(yǎng)包埋透明質(zhì)酸/殼聚糖/質(zhì)粒DNA納米粒的殼聚糖支架負(fù)載軟骨細(xì)胞[J].中華實(shí)驗(yàn)外科雜志,2014,31(2):362-364.
[6]彭湃,韓巖,楊力,等.納米微囊-VEGF復(fù)合體轉(zhuǎn)染對慢性創(chuàng)面愈合影響的研究[J].中國美容醫(yī)學(xué),2007,16(3):291-295.
[7]彭湃,郭樹忠,夏文森,等.納米微囊-VEGF復(fù)合體對創(chuàng)傷組織中VEGF、受體KDR的表達(dá)及微血管形成的影響[J].中國美容醫(yī)學(xué),2007,16(4):455-4589.
[8]高崧瀛,劉長松,黃巍.微囊化對轉(zhuǎn)VEGF基因成肌細(xì)胞血管內(nèi)皮生長因子分泌的實(shí)驗(yàn)研究[J].黑龍江醫(yī)學(xué),2012,36(6):417-419.
[9]蔣良福,陳鷗,褚庭綱.納米微囊緩釋VEGF促血管化修復(fù)大鼠周圍神經(jīng)缺損的研究[J].同濟(jì)大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2013,34(5):7-10,15.
[10]馮怡,沈嵐,徐德生,等.麥冬皂苷腸溶微球的載藥量和包封率研究[J].中成藥,2004,26(8):611-613.
編輯/張惠娟
Preparation of VEGF-chitosan microcapsules
WU Shang-min1,HONG Xiao-ya1,WU Ke2,SU Xiao-san1,YU Lu1,GAO Yang1
(1.Department of Plastic Surgery,The First People's Hospital of Kunming,The Affiliated Calmette Hospital of Kunming Medical University,Kunming 650011,Yunnan,China;2.Department of Oncology,The Second Hospital of Dalian Medical University,Dalian 116000,Liaoning,China)
ObjectiveTo investigate the preparation of VEGF-chitosan microcapsules.Methods VEGF-chitosan microcapsules were prepared by using of ion precipitation-coacervation method,and the drug loading and encapsulation efficiency were investigated.Results The microcapsules were in uniformsize,goodfinishandshape,entrapmentefficiencyof87%,drugloadingof4.35%. Conclusions The coagulation method is simple,stable and good reproducible.The results show that it is practicable to encapsulate VEGF by using of natural polymer polysaccharide chitosan.The VEGF-chitosan microcapsules have futher development and application value.
VEGF(vascularendothelialgrowthfactor);chitosan;microcapsules;drugloading;encapsulated efficency
Q813.1
A
1008-6455(2015)22-0029-04
2015-08-15
2015-10-30