常秀梅,張克榮,蔡潔琛,齊香薇,王書文
(廣東醫(yī)學(xué)院第二臨床學(xué)院廣東東莞523808)
·基礎(chǔ)研究·
EMP對人牙齦間充質(zhì)干細(xì)胞增殖和Ⅰ型膠原合成的影響
常秀梅,張克榮,蔡潔琛,齊香薇,王書文
(廣東醫(yī)學(xué)院第二臨床學(xué)院廣東東莞523808)
目的:觀察釉基質(zhì)蛋白(enamel matrix proteins,EMPs)對牙齦間充質(zhì)干細(xì)胞(human gingival mesenchymal stem cells,hGMSCs)增殖和Ⅰ型膠原合成的影響。方法:分離培養(yǎng)人牙齦成纖維細(xì)胞,免疫細(xì)胞化學(xué)方法檢測其間充質(zhì)干細(xì)胞特性STRO-1的表達(dá),不同濃度EMPs,25 mg/L(A1組)、50 mg/L(A2組)、100 mg/L(A3組)、200 mg/L(A4組),對照組(A0組)10%FCS的DMEM溶液培養(yǎng),MTT檢測EMPs對細(xì)胞增殖活性的影響。免疫細(xì)胞化學(xué)方法鑒定細(xì)胞Ⅰ型膠原合成和圖像分析。結(jié)果:50~200mg/L表現(xiàn)出促hGMSCs增殖的作用,50 mg/L EMPs即可以顯著促進(jìn)hGMSCs的生長,但以100 mg/L EMPs的促增殖作用最強(qiáng)(與其余各組相比P<0.01),實(shí)驗(yàn)組膠原合成明顯強(qiáng)于對照組。其中,100mg/L促I型膠原(collagen typeⅠ,COLⅠ—合成最明顯,且隨時間變化。結(jié)論:EMP可促進(jìn)hGMSCs增殖和Ⅰ型膠原合成。
牙齦間充質(zhì)干細(xì)胞;EMP;Ⅰ型膠原;增殖
成纖維細(xì)胞存在于人體的各種器官中,參與各種創(chuàng)傷的修復(fù)過程。近年來的研究認(rèn)為成纖維細(xì)胞具有合成和改建胞外基質(zhì)的功能,并在組織修復(fù)過程中發(fā)揮支架的支撐功能。參與器官發(fā)育、炎癥反應(yīng)、損傷修復(fù)和免疫調(diào)節(jié),纖維化等多種疾病和和正常生命過程[1-4],并具有干細(xì)胞特性[5]。牙齦成纖維細(xì)胞是否也具有間充質(zhì)干細(xì)胞特性,參與了牙周組織的再生修復(fù),免疫調(diào)節(jié)和炎癥反應(yīng)過程?課題組分離牙齦成纖維細(xì)胞,鑒定其間充質(zhì)干細(xì)胞標(biāo)志的表達(dá),并觀察EMPs對其增殖和膠原合成的影響。初步分析hGMSCs在牙周再生中的作用。
1.1實(shí)驗(yàn)材料
α-MEM培養(yǎng)液,胎牛血清,胰蛋白酶,膠原酶(Gibco,美國),超凈工作臺(蘇州凈安泰空氣技術(shù)有限公司),粗提型EMPs由第四軍醫(yī)大學(xué)口腔醫(yī)院牙周科惠贈,CO2孵箱(Heraeus,Germany),倒置相差顯微鏡照相系統(tǒng)(Olympus,日本),EMP(Biora,美國),兔抗人stro-1單克隆抗體,抗Ⅰ型膠原抗體,MTT (Sigma,美國)SABC免疫組化試劑盒(武漢博士德公司),DAB顯色試劑盒(武漢博士德公司),HPIAS-1000彩色圖像分析系統(tǒng)(同濟(jì)醫(yī)科大學(xué)千屏影像工程公司),倒置顯微鏡和照相系統(tǒng)(Olympus,日本)。
1.2方法
1.2.1 hGMSCs培養(yǎng):選取患者因正畸需要拔除的健康第一前磨牙牙齦組織。采用組織塊培養(yǎng)法獲取hGMSCs,當(dāng)細(xì)胞長面瓶底80%時傳代。
1.2.2細(xì)胞來源鑒定:取對數(shù)生長期的第二代人GMSCs制備細(xì)胞爬片(將生長狀態(tài)良好的F2代細(xì)胞接種至預(yù)先置有蓋玻片的培養(yǎng)皿,待細(xì)胞生長狀態(tài)良好時終止培養(yǎng)。取出蓋玻片,用0.01mol/L PBS清洗3遍,多聚甲醛固定30min。將固定好的細(xì)胞爬片用0.01mol/L PBS清洗3次,2.5ml/L Triton X-100處理15min,正常羊血清37℃封閉(孵育)30min,甩去血清。滴加1∶200稀釋的兔抗人STRO-1單克隆抗體,4℃濕盒過夜,37℃復(fù)溫1h,PBS振洗3次,5min/次。滴加1∶50稀釋的羊抗兔二抗,37℃孵育30min,PBS振洗3次,5min/次,DAB顯色,蘇木素胞核襯染,脫水封片。陰性對照用PBS代替一抗染色,其余步驟不變。
1.2.3實(shí)驗(yàn)分組:實(shí)驗(yàn)組分別用含2%FCS的DMEM將EMPs溶解并配置成25 mg/L(A1組)、50 mg/L(A2組)、100 mg/L(A3組)、200 mg/L(A4組)的4個濃度組培養(yǎng)。對照組(A0組)用含2%FCS的DMEM溶液培養(yǎng)。1.2.4含EMPs溶液培養(yǎng)細(xì)胞及制作細(xì)胞爬片:將生長狀態(tài)良好的F2代細(xì)胞制成細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞密度為6×104/L,接種于預(yù)先放置了蓋玻片的24孔板,每孔加細(xì)胞懸液1ml,標(biāo)準(zhǔn)條件培養(yǎng)24 h,細(xì)胞貼壁時換無血清DMEM培養(yǎng)液靜息24 h,按EMPs實(shí)驗(yàn)分組換相應(yīng)培養(yǎng)液。在培養(yǎng)的第1天和第7天分別收集各組的細(xì)胞爬片,4%多聚甲醛固定,-20℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 MTT法檢測不同濃度EMP對hGMSCs增殖的測定:取第3代GMSCs,2×106/L接種于96孔板,每孔接種100μl細(xì)胞懸液。另設(shè)調(diào)零孔,加入100μl培養(yǎng)液。37℃,95%空氣,5%CO2,100%濕度培養(yǎng)24 h,待細(xì)胞貼壁,無血清DMEM培養(yǎng)液靜息24h。按實(shí)驗(yàn)分組換相應(yīng)含EMPs培養(yǎng)液,每組4孔,繼續(xù)培養(yǎng)72 h,每孔加MTT溶液20μl,標(biāo)準(zhǔn)條件下孵育6h,洗凈孔內(nèi)液體,每孔加DMSO 150μl,振蕩10min,酶聯(lián)免疫檢測儀在490nm波長測吸光度值(A值)。
1.2.4免疫細(xì)胞化學(xué)染色:將固定好的細(xì)胞爬片用0.01mol/L PBS清洗3次,2.5ml/L Triton X-100處理15min,正常羊血清37℃封閉(孵育)30min,甩去血清。各組滴加抗Ⅰ型膠原。4℃濕盒過夜,37℃復(fù)溫1h,PBS振洗3次,5min/次。滴加1∶50稀釋的羊抗兔二抗,37℃孵育30min,PBS振洗3次,5min/次,DAB顯色,蘇木素胞核襯染,脫水封片。陰性對照用PBS代替一抗染色,其余步驟不變。
1.2.5圖像分析:利用HPIAS-1000彩色圖像分析系統(tǒng)對染色標(biāo)本進(jìn)行圖像分析,每張標(biāo)本選取5個高倍視野(40×10倍),每個視野選取四個區(qū)域測定細(xì)胞染色灰度值?;叶戎翟叫?,表明其染色程度越深。本實(shí)驗(yàn)所列結(jié)果為同代細(xì)胞、同批次染色的結(jié)果。
1.2.6數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析:將測得的灰度值利用SPSS 16進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差的形式表示,并進(jìn)行方差分析和t檢驗(yàn)。
2.1細(xì)胞形態(tài)及來源圖
組織塊法培養(yǎng)的人牙齦成纖維細(xì)胞呈長梭型,少量多角型細(xì)胞,細(xì)胞貼壁后生長較快,另有上皮細(xì)胞散在組織塊中央,多次差別消化法傳代,上皮細(xì)胞明顯減少,大部分細(xì)胞在為長梭型和多角型細(xì)胞(圖1)。免疫細(xì)胞化學(xué)染色發(fā)現(xiàn)部分細(xì)胞STRO-1陽性著色(圖2)。
圖1 原代細(xì)胞GMSCs(×40)
圖2 表達(dá)STRO-1(×40)
表1 不同濃度EMP對GMSCs的增殖作用
2.2不同濃度的EMPs對rMSCs生長的影響(A490值,x±s)
EMPs在50~200mg/L表現(xiàn)出促hGMSCs增殖的作用,50 mg/L EMPs即可以顯著促進(jìn)hGMSCs的生長,但以100 mg/L EMPs的促增殖作用最強(qiáng)(表1)。
2.3Ⅰ型膠原圖像分析及統(tǒng)計(jì)分析結(jié)果
不同濃度EMP作用GMSCs 1周時,與第1天相比,Ⅰ型膠原表達(dá)差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,表2)。
間充質(zhì)干細(xì)胞與成纖維細(xì)胞一樣遍布生物體的每個器官,近年來研究發(fā)現(xiàn),成纖維細(xì)胞是一個具有多種功能的細(xì)胞,它與慢性炎癥、腫瘤發(fā)生,腫瘤包裹及損傷修復(fù)相關(guān),與間充質(zhì)干細(xì)胞具有許多相同的特點(diǎn),如共同表達(dá)CD73,CD105,SSEA-1,SSEA-4不表達(dá)CD14,CD34 and CD45,可向骨、軟骨和脂肪細(xì)胞分化。牙齦是牙周組織的門戶,長期暴露在口腔中,不斷受到炎癥的侵襲和各種刺激,推測牙齦成纖維細(xì)胞在抵抗牙周疾病和牙周組織再生修復(fù)中具有一定的功能。EMPs的牙周再生作用已經(jīng)得到臨床和基礎(chǔ)研究的肯定。研究認(rèn)為EMPs對牙周膜細(xì)胞、牙囊細(xì)胞,骨髓細(xì)胞的生物學(xué)功能具有重要作用,可以促進(jìn)細(xì)胞增殖及蛋白合成,自分泌一些生長因子而且可以促進(jìn)細(xì)胞向成骨方向分化[6-9],促進(jìn)小鼠成骨細(xì)胞Ⅰ型膠原合成[10],但是有關(guān)EMPs對牙齦及其細(xì)胞成分的生物學(xué)作用研究較少。鑒于此,課題組分離牙齦成纖維細(xì)胞,免疫細(xì)胞化學(xué)染色觀察細(xì)胞間充質(zhì)干細(xì)胞特性,并用EMPs培養(yǎng),通過免疫細(xì)胞化學(xué)和圖像分析方法觀察EMPs對hGMSCs增殖和合成Ⅰ型膠原的影響,以期初步了解EMPs對hGMSCs的生物學(xué)作用。
實(shí)驗(yàn)用組織塊法分離培養(yǎng)了牙齦成纖維細(xì)胞,免疫細(xì)胞化學(xué)檢測到牙齦成纖維細(xì)胞表達(dá)STRO-1,證實(shí)牙齦成纖維細(xì)胞具有間充質(zhì)干細(xì)胞特性。STRO-1是間充質(zhì)干細(xì)胞最重要的早期標(biāo)志之一[11],是骨髓源間充質(zhì)干細(xì)胞的分離標(biāo)志,STRO-1陽性細(xì)胞具有向成纖維細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞、脂肪細(xì)胞和成骨成軟骨等間充質(zhì)來源細(xì)胞分化的特性[12],血管內(nèi)皮細(xì)胞、牙髓干細(xì)胞及牙周膜干細(xì)胞均表達(dá)STRO-1,具有多向分化特性[13-14]。
表2 hGMSCs在各濃度組、不同時間點(diǎn)的Ⅰ型膠原染色的灰度值
實(shí)驗(yàn)還觀察了EMPs對hGMSCs增殖和合成膠原的影響。即從濃度上看,EMPs在50-200mg/L表現(xiàn)出促hGMSCs增殖的作用,50 mg/L的EMPs即可以顯著促進(jìn)hGMSCs的生長,但以100mg/L的EMPs促增殖作用最強(qiáng),從實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,EMPs可以促進(jìn)體外培養(yǎng)的hGMSCs合成Ⅰ型膠原。Ⅰ型膠原是重要的細(xì)胞外基質(zhì)成分,可促進(jìn)不同類型細(xì)胞生長,Ⅰ型膠原是結(jié)締組織的主要膠原蛋白成分,是牙齒硬組織、骨和軟骨的主要膠原類型,Ⅰ型膠原的表達(dá)與成骨活動關(guān)系密切,其mRNA的出現(xiàn)早于堿性磷酸酶和骨鈣素,是成骨細(xì)胞早期分化的特異性分子標(biāo)記,可以調(diào)節(jié)骨鈣素基因表達(dá),是成骨標(biāo)志性產(chǎn)物,Ⅰ型膠原也是牙周膜的主要膠原成分,在牙周膜細(xì)胞向成骨方向分化時,Ⅰ型膠原明顯增強(qiáng)。先前的研究表明牙齦成纖維細(xì)胞在礦化誘導(dǎo)條件下也可形成礦化結(jié)節(jié),但較成骨細(xì)胞牙周膜細(xì)胞量少,時間長,這可能與其含有的間充質(zhì)干細(xì)胞較少有關(guān)。成纖維細(xì)胞具有分泌多種細(xì)胞因子,維持間充質(zhì)干細(xì)胞微環(huán)境的功能[15-16],這表明間充質(zhì)干細(xì)胞與成纖維細(xì)胞相伴存在。成纖維細(xì)胞和間充質(zhì)干細(xì)胞在生物學(xué)特性上及其相似,具有許多共同特性,另外,間充質(zhì)干細(xì)胞依賴成纖維細(xì)胞來維持微環(huán)境的穩(wěn)定,根據(jù)需要與上皮細(xì)胞相互作用進(jìn)行發(fā)育、分化、組織修復(fù)和器官形成等生命活動。
其他部位的成纖維細(xì)胞也參與創(chuàng)傷修復(fù),并能在誘導(dǎo)條件下向成骨方向分化,推測成纖維細(xì)胞與間充質(zhì)干細(xì)胞具有相同特性,目前,只有從基因型分析間充質(zhì)干細(xì)胞和成纖維細(xì)胞,從生物學(xué)特性無法區(qū)分兩種細(xì)胞。創(chuàng)傷修復(fù)是多種細(xì)胞、生長因子和細(xì)胞外基質(zhì)之間相互作用的復(fù)雜動態(tài)過程。在各種創(chuàng)傷的修復(fù)過程中,成纖維細(xì)胞均起著極其重要的作用。骨折作為機(jī)體的一種創(chuàng)傷,它的修復(fù)過程即骨折的愈合過程及其復(fù)雜,除成骨細(xì)胞在骨折愈合過程中發(fā)揮決定作用外,成纖維細(xì)胞起著重要的作用.并參與了成骨過程,饒寒敏等[17]的實(shí)驗(yàn)證明,皮膚成纖維細(xì)胞在體外培養(yǎng)過程中可形成骨,并且其成骨過程中基質(zhì)合成、分泌和鈣鹽沉積的程序與成骨細(xì)胞成骨基本一致,符合骨組織形成的生理過程。這些研究均表明成纖維細(xì)胞與間充質(zhì)干細(xì)胞具有極其相似的作用,成纖維細(xì)胞提供適宜的微環(huán)境,支持干細(xì)胞維持穩(wěn)定和向不同方向分化的作用[16]。
細(xì)胞外基質(zhì)是細(xì)胞微環(huán)境傳遞促進(jìn)細(xì)胞增殖、分化的信號分子,EMPs是Hertwig上皮根鞘分泌的釉質(zhì)發(fā)育過程中未礦化釉質(zhì)中含有的蛋白成分,研究表明EMPs可促進(jìn)牙周膜細(xì)胞和成骨細(xì)胞向牙骨質(zhì)和骨細(xì)胞分化,可影響多種細(xì)胞的基因表達(dá)、蛋白合成、增殖和分化過程,對牙齦成纖維細(xì)胞、成牙骨質(zhì)細(xì)胞、軟骨細(xì)胞核牙囊細(xì)胞具有促進(jìn)增殖和抑制分化的作用。有報道稱EMPs具有促進(jìn)成纖維樣細(xì)胞增殖而抑制上皮類細(xì)胞的作用,在牙周發(fā)育期調(diào)控細(xì)胞的行為,控制上皮間充質(zhì)細(xì)胞的相互作用。近年來認(rèn)為EMPs還具有促進(jìn)皮膚等其他部位成纖維細(xì)胞的組織和膠原分泌作用。Vowden等[18]研究證實(shí)成釉蛋白可促進(jìn)較大面積難愈性潰瘍的愈合。在創(chuàng)面愈合過程中,成纖維細(xì)胞大量增殖,并分泌膠原和基質(zhì)成分,與新生毛細(xì)血管等共同形成肉芽組織,填補(bǔ)組織缺損,為表皮細(xì)胞的覆蓋創(chuàng)造條件。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果證實(shí)EMPs可促進(jìn)人牙齦間充質(zhì)干細(xì)胞的增殖和膠原分泌,一周觀察期內(nèi)可隨時間增殖作用增強(qiáng)。這為牙齦間充質(zhì)細(xì)胞的臨床應(yīng)用提供了理論依據(jù),目前牙種植技術(shù)為患者帶來了福音,但許多患者的軟組織嚴(yán)重缺失,限制了種植的適應(yīng)癥,利用EMPs和GMSCs的特性形成組織工程牙齦,可提高種植的成功率和使用范圍。
[1]Fries KM,Blieden T,Looney RJ,et al.Evidence of fibroblast heterogeneity and the role of fibroblast subpopulations in fibrosis[J].Clin Immunol Immunopathol,1994,72:283-292.
[2]Mebius RE.Organogenesis of lymphoid tissues[J].Nat Rev Immunol,2003,3:292-303.
[3]ParsonageG,F(xiàn)ilerAD,HaworthO,etal.Astromaladdresscode definedbyfibroblasts[J].TrendsImmunol,2005,26:150-156.
[4]Serhan CN,Brain SD,Buckley CD,et al.Resolution of inflammation:state of the art,definitions and terms[J].Faseb J,2007,21:325-332.
[5]MuzlifahAH,MatthewPC.Mesenchymalstemcells:thefibroblasts’newclothes[J]?haematologica,2009,94(2)258-263.
[6]LyngstadaasSP,LundbergE,EkdahlH,etal.Autocrine growth factors in human periodontal ligament cells cultured on enamel matrix derivative[J].J Clin Periodontol,2001,28: 181-188.
[7]Haase HR,Bartold PM.Enamel matrix derivative induces matrix synthesis by cultured human periodontal fibroblast cells[J].J Periodontol,2001,72:341-348.
[8]Okubo K,Kobayashi M,Takiguchi T,et al.Participation of endogenous IGF-and TGF-beta1 with enamel matrix derivative-stimulated cell growth in human periodontal ligament cells[J].J Periodont Res,2003,38:1-9.
[9]Matsuda N,Horikawa M,Watanabe M,et al.Possible involvement of extracellular signal-regulated kinases 1/2 in mitogenic response of periodontal ligament cells to enamel matrix derivative[J].Eur J Oral Sci,2002,110:439-444.
[10]Jiang J,F(xiàn)ouad AF,Safavi KE,et al.Effects of enamel matrix derivative on gene expression of primary osteoblasts[J]. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod,2001,91:95-100.
[11]Lin G,Liu G,Banie L,et al.Tissue distribution of mesenchymal stem cell marker Stro-1[J].Stem Cells Dev,2011,10: 1747-4752.
[12]Gronthos S,Zannettino AC,Hay SJ,et al.Molecular and cellular characterisation of highly purified stromal stem cells derived from human bone marrow[J].J Cell Sci,2003,116: 1827-1835.
[13]Yang X,Zhang W,Dolder J,et al.Multilineage potential of STRO-1trat dental pulp cells in vitro[J].J Tissue Eng Regen Med,2007,1:128-135.
[14]Psaltis PJ,Paton S,See F,et al.Enrichment for STRO-1 expression enhances the cardiovascular paracrine activity of human bone marrow-derived mesenchymal cell populations [J].J Cell Physiol,2010,223:530-540.
[15]Rheinwald JG,Green H.Epidermal growth factor and the multiplication of cultured human epidermal keratinocytes [J].Nature,1977,265:421-424.
[16]Blanpain C,Horsley V,F(xiàn)uchs E.Epithelial stem cells:turning overnew leaves[J].Cell,2007,128:445-458.
[17]饒寒敏,徐榮輝,朱雅萍,等.成纖維細(xì)胞成骨潛能的體外培養(yǎng)研究[J].中華骨科雜志,1995,15(12):845-848.
[18]Vowden P,Romanelli M,Peter R,et a1.The effect of amelogenins(Xelma)on hard-to-heal venous leg ulcers[J].Wound Repair Regen,2006,l4(3):240-246.
Effection of enamel matrix proteins on proliferation and Type I collagen synthesis of human gingival mesenchymal stem cells
CHANG Xiu-Mei,ZHANG Ke-Rong,CAI Jie-Chen,QI Xiang-wei,WANG Shu-wen
(Second Clinical Medical College,Guangdong Medical College,Dongguan 523808,Guangdong,China)
ObjectiveTo assess the effects of enamel matrix proteins on proliferation and type I collagen synthesis of human gingival mesenchymal stem cells(hGMSCs).Methods The primary gingival fibroblasts were cultured and then mesenchymal stem cell surface markers STRO-1 were characterized by Immunocytochemistry.hGMSCs was cultured in concentrations of enamel matrix protein 25 mg/L (A1 group),50 mg/L(A2 group),100 mg/L(A3 group),200 mg/L(groupA4),control group(group A0)DMEM solution of 2%FCS training,The cell proliferation was detected by MTT.Immunocytochemistry and image analysis of type I collagen synthesis.Results 50-200mg/L showed hGMSCs proliferation promoting effect,50 mg/L EMPs that can significantly promote the growth of hGMSCs,but to promote proliferation of the strongest 100 mg/L EMPs.(Compared with other groups,P<0.01)in experimental group was better than control group,collagen synthesis.Among them,the most obvious 100mg/L promote the synthesis of collagen type I,and changing with time.Conclusion The enamel matrix protein can promote the proliferation of hGMSCs and type I collagen synthesis.
gingival mesenchymal stem cells;enamel matrix proteins;Type I collagen;proliferation
Q813.1
A
1008-6455(2015)08-0030-04
東莞市高等院??蒲袡C(jī)構(gòu)科技計(jì)劃項(xiàng)目(項(xiàng)目編號:2011108102028);湛江市科技攻關(guān)計(jì)劃項(xiàng)目(項(xiàng)目編號:2012C3103032)