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        馬蘭中酚類的分離純化及其抑制蛋白糖基化的研究

        2015-09-22 12:46:15朱曉琳劉躍鈞呂麗爽
        食品科學(xué) 2015年5期
        關(guān)鍵詞:奎寧馬蘭粗提物

        朱曉琳,劉躍鈞,陸 敏,呂麗爽,*

        (1.南京師范大學(xué)金陵女子學(xué)院,江蘇南京210097;2.浙江省麗水市林業(yè)科學(xué)研究所,浙江麗水323000)

        馬蘭中酚類的分離純化及其抑制蛋白糖基化的研究

        朱曉琳1,劉躍鈞2,陸敏1,呂麗爽1,*

        (1.南京師范大學(xué)金陵女子學(xué)院,江蘇南京210097;2.浙江省麗水市林業(yè)科學(xué)研究所,浙江麗水323000)

        采用大孔吸附樹(shù)脂對(duì)馬蘭粗提物進(jìn)行分離,得到4組含有多酚的洗脫組分(F1、F2、F3、F4)。用Sephadex LH-20色譜柱對(duì)F2進(jìn)一步純化,得到3,5-二咖啡??鼘幩岷?,4,5-三咖啡??鼘幩?。通過(guò)建立牛血清白蛋白-甲基乙二醛(bovine serum albumin-methylglyoxal,BSA-MGO)和牛血清白蛋白-乙二醛(bovine serum albuminglyoxal,BSA-GO)的蛋白質(zhì)糖基化反應(yīng)模型,分析各所得組分抑制蛋白質(zhì)糖基化的能力。結(jié)果表明:多酚含量依次為F2>F1>F3>F4,馬蘭各組分對(duì)兩種模型引起的蛋白質(zhì)糖基化均具有良好的抑制效果。在BSA-GO的反應(yīng)模型中,抑制蛋白質(zhì)糖基化效果為3,5-二咖啡酰奎寧酸>F2>F3>F1>馬蘭粗提取物>F4,BSA-MGO的反應(yīng)模型中,抑制蛋白質(zhì)糖基化效果為3,5-二咖啡酰奎寧酸>F2>馬蘭粗提取物>F1>F4>F3,此結(jié)果與F2組分中分離得到的3,5-二咖啡??鼘幩峋哂辛己玫囊种菩Ч恢?。結(jié)論:馬蘭中分離得到的多酚類物質(zhì)——3,5-二咖啡酰奎寧酸具有很強(qiáng)的抑制MGO/GO引發(fā)的蛋白糖基化功能。

        馬蘭;多酚;3,5-二咖啡??鼘幩幔坏鞍踪|(zhì)非酶糖基化

        馬蘭(Kalimeris)屬菊科,為多年生草本植物,我國(guó)南方各省均有分布,在江浙一帶作為蔬菜食用,含多種維生素、礦物質(zhì)和氨基酸,營(yíng)養(yǎng)豐富[1]?!侗静菔斑z》中記載其具有清熱利濕、解毒消腫、涼血止血功效?,F(xiàn)代藥理實(shí)驗(yàn)研究證明其具有抗菌[2]、抗炎[3]、提高子宮活力及促血凝[4]、治療肝炎[5]、降血脂[6]作用,是集食用和藥用價(jià)值于一身、備受青睞的時(shí)令野菜。目前發(fā)現(xiàn)馬蘭中含有黃酮類[7]、三萜類[8]、甾體類化合物[9]。季鵬等[10]首次從馬蘭全草80%乙醇提取物中分離并鑒定了5 個(gè)酚類化合物:漢黃芩素、千層紙素A、4-羥基苯乙酮、7,4-二羥基異黃酮、芹菜素。

        蛋白質(zhì)非酶糖基化又稱美拉德反應(yīng),是由還原糖與氨基酸和蛋白質(zhì)的游離氨基通過(guò)非酶促反應(yīng)形成的結(jié)構(gòu)多樣的聚合物。1984年Brownlee等[11]將體內(nèi)類似于美拉德反應(yīng)途徑形成的一類穩(wěn)定的聚合物定義為晚期糖基化終產(chǎn)物(advance glycation end products,AGEs)?,F(xiàn)代研究表明蛋白質(zhì)非酶糖基化與糖尿病并發(fā)癥[12]、白內(nèi)障[13]、阿茨海默病[14]等慢性病密切相關(guān)。

        活性二羰基化合物乙二醛(glyoxal,GO)和甲基乙二醛(methylglyoxal,MGO)為蛋白質(zhì)非酶糖基化中間體,極易與游離氨基酸和蛋白質(zhì)的游離氨基發(fā)生反應(yīng),生成晚期糖基化終產(chǎn)物[15]。在糖基化反應(yīng)中,MGO和GO的活性是葡萄糖的20 000倍[16]。研究發(fā)現(xiàn)MGO可以引起體內(nèi)多種蛋白發(fā)生非酶糖基化反應(yīng),如牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA)[17]、膠原蛋白[18]等。另外,糖尿病患者血漿中GO和MGO的含量較高,MGO含量為16~27 μg/100 mL,而正常人體內(nèi)發(fā)現(xiàn)量為3.0~7.0 μg/100 mL[19]。目前在多種食品中也發(fā)現(xiàn)MGO和GO的存在,如蜂蜜、面包、葡萄酒、啤酒和沙丁魚(yú)油[20-24]。因此對(duì)于抑制MGO與GO引起的蛋白質(zhì)非酶糖基化的研究具有重大意義。

        眾多學(xué)者對(duì)各種抑制或改變糖基化進(jìn)程的物質(zhì)進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)了一系列天然或者合成的化合物可抑制蛋白質(zhì)非酶糖基化,如大蒜提取物[25]、黃酮類化合物[26]、氨基胍[27]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)[28],馬蘭粗提物具有良好的抑制蛋白糖基化的效果,抑制率達(dá)到49%~71%,其抑制作用與馬蘭中的多酚含量存在一定的線性關(guān)系。本實(shí)驗(yàn)旨在對(duì)馬蘭多酚提取物進(jìn)行分離純化,鑒定其主要組成,并分析馬蘭粗提物中抑制蛋白糖基化主要組分,為馬蘭抑制蛋白糖基化從而減少糖尿病并發(fā)癥發(fā)生提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1材料與試劑

        優(yōu)質(zhì)馬蘭(取可食部分,即葉子及地下嫩莖)浙江省麗水市林業(yè)科學(xué)研究院馬蘭種質(zhì)資源圃。

        AB-8型大孔吸附樹(shù)脂南開(kāi)大學(xué)化工廠;Sephadex LH-20葡聚糖凝膠樹(shù)脂美國(guó)GE Healthcare公司;3,5-咖啡酰奎寧酸標(biāo)準(zhǔn)品成都普瑞法生物制劑公司;牛血清白蛋白、青霉素鏈霉素混合液生工生物工程(上海)股份有限公司;MGO、GO美國(guó)Sigma公司;其他均為分析純,購(gòu)自南京化學(xué)試劑有限公司。

        1.2儀器與設(shè)備

        AUY220分析天平日本島津公司;722型可見(jiàn)分光光度計(jì)上海精密科學(xué)儀器有限公司;RE-52A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器上海亞榮生化儀器廠;KQ-300B超聲波清洗器昆山市超聲儀器有限公司;SHB-Ⅲ循環(huán)水式多用真空泵鄭州長(zhǎng)城儀器廠;LD5-10低速離心機(jī)北京醫(yī)用離心機(jī)廠;XW-80A微型旋渦混合儀、DBS-100電腦全自動(dòng)部分收集器、DHL-A恒流泵、HD-3型紫外檢測(cè)儀上海滬西分析儀器有限公司;GF254薄層層析硅膠板煙臺(tái)江友硅膠開(kāi)發(fā)有限公司;WFH-201B紫外投射反射儀上海精科實(shí)業(yè)有限公司;1290型高效液相色譜儀、9460型四極桿串聯(lián)質(zhì)譜美國(guó)安捷倫公司;AVANCE400型核磁共振波譜儀瑞士Bruker公司;GL-22M超高速離心機(jī)賽特湘儀離心機(jī)儀器有限公司;Infinite 200Pro TECAN奧地利Tecan有限公司;150E光照培養(yǎng)箱金壇市吉特實(shí)驗(yàn)儀器廠。

        1.3方法

        1.3.1馬蘭總多酚粗提物的制備

        馬蘭→干燥→粉碎→80%乙醇溶液提?。弦罕?∶10(m/V)),60 ℃水浴60 min→磁力攪拌→離心(1 800×g,20 min)→殘?jiān)酝瑯拥姆椒ㄖ貜?fù)提取2 次→減壓濃縮→冷凍干燥→4 ℃冷藏備分析用

        1.3.2大孔吸附樹(shù)脂對(duì)馬蘭粗提物的分離

        將AB-8樹(shù)脂裝柱(Ф6 cm×60 cm),將馬蘭粗提物用超聲處理溶解進(jìn)行濕法上樣,先用水洗脫至洗脫液無(wú)色,再依次用20%、40%、60%、80%不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇洗脫,各洗脫5 個(gè)柱體積,洗脫速率為1 BV/h收集各組分流出液,用薄層色譜(thin layer chromatography,TLC),展開(kāi)體系為:V(乙酸乙酯)∶V(正丁醇)∶V(甲醇)∶V(水)=5∶3∶1∶1,檢測(cè)洗脫液,將Rf值相同的洗脫組分合并,減壓濃縮,冷凍干燥。分別得到F1(20%洗脫組分)、F2(40%洗脫組分)、F3(60%洗脫組分)、F4(80%洗脫組分)。

        1.3.3Sephadex LH-20色譜柱純化F2組分

        將洗脫組分用少量80%乙醇溶解,14 000×g離心5 min,取上清液過(guò)Sephadex LH-20柱,用80%乙醇等梯度洗脫。恒流泵控制流速為1 mL/min,部分收集器收集洗脫液,5 mL/管,用TLC跟蹤分析每管洗脫液,將Rf值相同的洗脫組分合并。得到新的洗脫物。將新洗脫物用40%~50%的乙醇過(guò)Sephadex LH-20柱,相同條件下過(guò)兩次,得到化合物Ⅰ。

        經(jīng)AB-8大孔吸附樹(shù)脂純化后,各組分經(jīng)真空冷凍干燥至恒質(zhì)量。分別精密稱取一定質(zhì)量的樣品溶于80%乙醇中,采用Folin-Ciocalteus法測(cè)定,以沒(méi)食子酸為對(duì)照品[29],測(cè)定總多酚含量,并按式(1)計(jì)算,并按公式(2)計(jì)算其得率。

        式中:m1為樣品中總多酚質(zhì)量/mg;m2為樣品質(zhì)量/mg。

        式中:m1為樣品中總多酚的質(zhì)量/mg;m3為純化前樣品中總多酚的質(zhì)量/mg。

        1.3.4高效液相色譜-質(zhì)譜(high perfor mance liquid chromatography-mass spectrometry,HPLC-MS)分析條件

        色譜柱:ZORBAX Eclipse XDB-C18(4.6 mm× 250 mm,5 μm)色譜柱,DAD檢測(cè)器。流速:0.5 mL/min,柱溫:25 ℃,檢測(cè)波長(zhǎng):280 nm。流動(dòng)相A:乙腈,流動(dòng)相B:體積分?jǐn)?shù)0.05%甲酸水溶液。流動(dòng)相梯度:0 min(20% A),0~20 min(20%~30% A),20~40 min(30%~60% A);進(jìn)樣量:3 μL。

        質(zhì)譜條件:電噴霧離子化(ESI)源,負(fù)離子模式檢測(cè),噴霧電壓為10 kV,毛細(xì)管溫度為300 ℃,氮?dú)饬魉贋? L/min。

        1.3.5馬蘭各活性組分抑制蛋白質(zhì)糖基化活性[28]

        采用0.2 mol/L、pH 7.4的磷酸緩沖液配制質(zhì)量濃度為30 mg/mL BSA和濃度為20 mmol/L的GO/MGO,分別加入不同馬蘭組分F1、F2、F3、F4、3,5-二咖啡??鼘幩峒榜R蘭粗提物,質(zhì)量濃度均為30 mg/mL。青霉素鏈霉素混合液體積分?jǐn)?shù)為0.5%。將所有試劑和材料加入反應(yīng)管后,密封管口,于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中反應(yīng)168 h。期間每24 h取樣500 μL,立即放入─80 ℃冰箱冷凍結(jié)束反應(yīng).,作為陽(yáng)性對(duì)照組。以0.2 mol/L、pH 7.4的磷酸緩沖液代替不同馬蘭組分做如上操作,作為陰性對(duì)照。稀釋10 倍后利用酶標(biāo)儀在Ex/Em340nm/465nm測(cè)定熒光值。讀465 nm熒光強(qiáng)度得出樣品管吸光度(A)值。應(yīng)用以下公式計(jì)算化含物對(duì)BSA糖基化反應(yīng)的抑制作用,用抑制率表示。

        2 結(jié)果與分析

        2.1分離所得組分結(jié)果

        表1 乙醇洗脫組分總多酚質(zhì)量分?jǐn)?shù)Table1Total polyphenol contents of elution fractions by aqueous ethanol

        由表1可知,F(xiàn)2組分總多酚得率最高,達(dá)到48.97%,多酚組成種類相對(duì)較為單一。雖然F1總多酚含量略高于F2,故對(duì)F1進(jìn)行進(jìn)一步分析,發(fā)現(xiàn)其組成復(fù)雜,種類多,單一含量低,難以得到主要成分。本研究對(duì)F2做進(jìn)一步分析。

        2.2F2純化產(chǎn)物分析

        F2經(jīng)過(guò)Sephadex LH-20色譜柱的進(jìn)一步純化,得到Fr2。

        2.2.1成分Ⅰ的結(jié)構(gòu)分析

        Fr2的高效液相色譜圖如圖1A所示,圖中顯示有兩個(gè)主要峰,分別對(duì)應(yīng)成分Ⅰ和成分Ⅱ。經(jīng)Sephadex LH-20柱反復(fù)分離,得到成分Ⅰ,純度為96%。對(duì)成分Ⅰ進(jìn)行了HPLC-MS和核磁共振(nuclear magnetic resonance,NMR)分析。

        成分Ⅰ的一、二級(jí)質(zhì)譜圖如圖1B和圖1C,出現(xiàn)m/z 515[M-H]-的準(zhǔn)分子離子峰,表明該化合物的相對(duì)分子質(zhì)量為516;另有m/z 353[M-H-162]-的碎片離子峰。在ESI-MS2圖中,出現(xiàn)m/z 191[M-H-162-162]-的碎片離子峰。推測(cè)該化合物中存在高度對(duì)稱結(jié)構(gòu),分子式為C25H24O12,結(jié)合文獻(xiàn)[30-31]和該物質(zhì)的紫外吸收光譜(圖1D),初步推測(cè)成分Ⅰ是二咖啡酰奎寧酸。

        圖1 Fr2的高效液相色譜圖(A)及成分Ⅰ的一級(jí)(B)、二級(jí)(C)C質(zhì)譜和紫外吸收光譜圖(D)DFig.1HPLC of Fr2(A)and ESI-MS(B),ESI-MS2(C),ultra-violent spectrum(D)of compoundⅠ

        成分ⅠESI-MS m/z 515[M-H]-(分子式為C25H24O12)。1H-NMR(400 MHz,MeOD):δ 2.26(2H,m),5.40(1H,m),4.00(1H,d,J=4.4Hz),5.45(1H,m),2.35(1H,brd),2.30(1H,m),7.08(2H,brs,H-2'和H-2''),6.80(2H,d,J=8.4 Hz,H-5'和H-5”),6.98(2H,brd,J=8.4 Hz,H-6'和H-2''),7.65(1H,d,J=16.0 Hz),6.39(1H,d,J=16.0 Hz),7.08(2H,brs,H-2'和H-2''),6.80(2H,d,J=8.4 Hz,H-5'和H-5''),6.98(2H,brd,J=8.4 Hz,H-6'和H-2''),7.57(1H,d,J=16.0 Hz),6.30(1H,d,J=16.0 Hz)。

        13C-NMR(150 MHz,MeOD):δ 73.3(C-1),36.2(C-2),70.7(C-3),69.2(C-4),71.7(C-5),34.6(C-6a),175.9(C-7),126.5(C-1'),113.9(C-2'),145.6(C-3′),148.2(C-4'),115.1(C-5'),121.6(C-6'),145.9(C-7'),114.2(C-8'),167.5(C-9'),126.4(C-1''),113.7(C-2''),145.6(C-3''),148.1(C-4”),115.1(C-5''),121.6(C-6''),145.4(C-7''),113.7(C-8''),166.9(C-9'')。

        具體的1H-NMR和13C-NMR信息如下:

        1H-NMR給出了兩組咖啡?;|(zhì)子的特征信號(hào)δ 7.08(2H,brs),6.98(2H,brd,J=8.4 Hz),6.80(2H,d,J=8.4 Hz)和兩組AB型的反式烯質(zhì)子信號(hào)δ 7.65(1H,d,J=16.0 Hz),7.57(1H,d,J= 16.0 Hz),6.39(1H,d,J=16.0 Hz),6.30(1H,d,J=16.0 Hz)。同時(shí)顯示了奎尼酸基團(tuán)的存在,包括4 個(gè)亞甲基質(zhì)子:δ 2.26(2H,m,H-2),2.35(1H,brd,H-6a),2.30(1H,m,H-6b)。此外也顯示了3 個(gè)連氧氫的存在:δ 4.00(1H,d,J=4.4 Hz,H-4),5.40(1H,m,H-3),5.45(1H,m,H-5)。

        13C-NMR數(shù)據(jù)顯示了該化合物中存在2 個(gè)亞甲基碳(δ 34.6,36.2),3 個(gè)連氧次甲基碳(δ 69.2,70.7,71.1)、1個(gè)季碳(δ 73.3)和1 個(gè)羰基碳信號(hào)(δ 175.9)。

        化合物Ⅰ的1H-NMR圖中顯示了H-3和H-5存在低場(chǎng)位移,同時(shí)13C-NMR圖中也顯示了C-3和C-5存在低場(chǎng)位移,證明了兩個(gè)咖啡?;B在奎尼酸的3號(hào)位和5號(hào)位上,以上NMR數(shù)據(jù)與文獻(xiàn)報(bào)道[32-33]3,5-二咖啡??鼘幩嵋恢?,確認(rèn)成分Ⅰ為3,5-二咖啡酰奎寧酸。

        2.2.2成分Ⅱ的結(jié)構(gòu)分析

        成分Ⅱ的液相色譜圖如圖1A,在成分Ⅱ旁邊存在兩個(gè)尖峰,說(shuō)明成分Ⅱ未達(dá)到完全分離,存在同分異構(gòu)體。一級(jí)質(zhì)譜和紫外吸收光譜圖見(jiàn)圖2A和圖2B。在ESI-MS圖中,出現(xiàn)m/z 677[M-H]-的準(zhǔn)分子離子峰,表明該化合物的分子質(zhì)量為678 g/mol;另有m/z 515[MH-162]-和m/z 161的碎片離子峰。據(jù)文獻(xiàn)[34-35]報(bào)道,3,4,5-三咖啡??鼘幩岬囊患?jí)質(zhì)譜結(jié)構(gòu)為677[M-H]-的準(zhǔn)分子離子峰,二級(jí)質(zhì)譜結(jié)構(gòu)中有515[M-H-162]-和m/z 191的碎片離子峰。而該物質(zhì)的紫外吸收光譜與化合物Ⅰ相似,推測(cè)該物質(zhì)與化合物Ⅰ相似,為3,4,5-三咖啡酰奎寧酸。

        圖2成分Ⅱ的二級(jí)質(zhì)譜圖(A)及紫外吸收光譜圖(B)BFig.2ESI-MS(A)and ultra-violent spectrum(B)of compoundⅡ

        2.3馬蘭不同分離組分對(duì)BSA-GO的抑制

        馬蘭不同組分(F1、F2、F3、F4、3,5-二咖啡??鼘幩?、馬蘭粗提物)抑制GO引起的蛋白質(zhì)糖基化效果如圖3A、3B所示。馬蘭不同組分的抑制效果排序如下:F4<馬蘭粗提物<F1<F3<F2<3,5-二咖啡??鼘幩?。其中,F(xiàn)2 組分的抑制效果明顯高于馬蘭粗提物的抑制作用,說(shuō)明經(jīng)過(guò)大孔吸附樹(shù)脂的富集和純化,40%乙醇洗脫的組分中含有較多能夠抑制蛋白質(zhì)非酶糖基化的活性物質(zhì);F2組分分離得到的3,5-二咖啡??鼘幩峋哂蟹浅:玫囊种谱饔?,抑制率達(dá)到92%;F1與F3的抑制效率相似,略高于馬蘭粗提物的抑制作用,且與馬蘭粗提液的抑制作用存在顯著性差異,說(shuō)明F1與F3中含有能夠抑制蛋白質(zhì)非酶糖基化的活性物質(zhì),但是活性物質(zhì)成分沒(méi)有F2組分多;而F4的抑制作用較弱,因此F4組分中含有的活性成分較少。

        圖3馬蘭組分對(duì)BSA-GO模型中AGEs的抑制作用Fig.3The AGEs inhibitory effect of Kalineris in BSA-GO assay

        2.4馬蘭不同分離組分對(duì)BSA-MGO的抑制

        圖4馬蘭組分對(duì)BSA-MGO模型中AGEs的抑制作用Fig.4The AGEs inhibitory effect of Kalineris in BSA-MGO assay

        馬蘭不同組分(F1、F2、F3、F4、3,5-二咖啡??鼘幩幔┮种芃GO引起的蛋白質(zhì)糖基化效果如圖4A、4B所示。馬蘭不同組分的抑制效果排序如下:F3<F4<F1<馬蘭粗提物<F2<3,5-二咖啡??鼘幩?。其中,3,5-二咖啡??鼘幩峤M分的抑制效果最佳,抑制率達(dá)到95%,與2.3節(jié)結(jié)果一致;F2組分的抑制效果較粗提取液好,F(xiàn)1組分的抑制作用略低于粗提液,而F3、F4組分的抑制效果遠(yuǎn)低于粗提物,說(shuō)明經(jīng)過(guò)大孔吸附樹(shù)脂的富集和純化,功能成分大部分被20%乙醇和40%乙醇洗脫下來(lái),而60%乙醇和80%乙醇洗脫液中的功能成分含量很少。

        3 結(jié)論

        對(duì)馬蘭進(jìn)行分離純化,選取40%乙醇洗脫物經(jīng)過(guò)AB-8型大孔吸附樹(shù)脂和Sephadex LH-20多次純化后,得到兩個(gè)組分,其中一個(gè)經(jīng)質(zhì)譜(mass spectrometry,MS)、NMR等技術(shù)方法鑒定為3,5-二咖啡??鼘幩?;另一個(gè)通過(guò)MS推斷為3,4,5-三咖啡??鼘幩帷?/p>

        研究大孔吸附樹(shù)脂純化所得組分和3,5-二咖啡??鼘幩嵋种频鞍踪|(zhì)非酶糖基化效果時(shí)發(fā)現(xiàn),40%乙醇洗脫組分F2較粗提物具有更好的抑制效果,抑制率達(dá)到70%以上,因此經(jīng)過(guò)大孔吸附樹(shù)脂的富集和純化,40%乙醇洗脫組分中含有較多抑制蛋白質(zhì)糖基化的成分。3,5-二咖啡??鼘幩岬囊种菩Ч罴?,達(dá)到90%以上。對(duì)馬蘭抑制蛋白糖基化進(jìn)行研究,進(jìn)一步了解其藥用價(jià)值,可為抑制AGEs新藥研發(fā)提供新的思路,開(kāi)發(fā)出藥食同源、綠色、安全、副作用小的降血糖產(chǎn)品。

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        Separation,Purification and Inhibitory Effect on Protein Glycosylation of Phenols in Kalimeris

        ZHU Xiaolin1,LIU Yuejun2,LU Min1,L?Lishuang1,*
        (1.Ginling College,Nanjing Normal University,Nanjing210097,China;2.Lishui Forestry Research Institute of Zhejiang Province,Lishui323000,China)

        Macroporous resin was used to separate the crude extract of Kalimeris and four polyphenol-rich fractions (F1, F2, F3, and F4) were obtained. F2 was further purif ed by Sephadex LH-20 column chromatography and 3,5-dicaf eoylquinic acid and 3,4,5-tricaf eoylquinic acid were obtained. Using the protein glycosylation reaction models of bovine serum albumin-methylglyoxal (BSA-MGO) and bovine serum albumin-glyoxal (BSA-GO), we analyzed the inhibitory activity of each component on protein glycosylation. The results showed that the content of polyphenols was in the order of F2 > F1 > F3 > F4, and all the four fractions had good inhibitory ef ects on protein glycosylation in both models. In BSA-GO reaction model, the inhibitory capacity against protein glycosylation was in the order of 3,5-dicaf eoylquinic acid > F2 > F3 > F1 > crude extract of Kalimeris > F4. In BSA-MGO reaction model, the inhibitory capacity against protein gly cosylation was in the order of 3,5-dicaf eoylquinic acid > F2 > crude extract of Kalimeris > F1 > F4 > F3. These results are consistent with the inhibitory ef ect of 3,5-dicaf eoylquinic acid separated from F2. The 3,5-dicaf eoylquinic acid as a phenolic compound from Kalimeris had a potent inhibitory ef ect on protein glycosylation induced by MGO or GO.

        Kalimeris; polyphenols; 3,5-dicaf eoylquinic acid; protein non-enzymatic glycosylation

        TS201.4

        A

        1002-6630(2015)05-0061-06

        10.7506/spkx1002-6630-201505012

        2014-05-19

        浙江省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(LY12C15001);江蘇省基礎(chǔ)研究(自然科學(xué))基金項(xiàng)目(BK2012850);江蘇省普通高校自然科學(xué)研究資助項(xiàng)目(12KJB550005)

        朱曉琳(1988—),女,碩士研究生,研究方向?yàn)槭称坊瘜W(xué)。E-mail:marynutralong@gmail.com

        呂麗爽(1969—),女,副教授,博士,研究方向?yàn)槭称坊瘜W(xué)、功能性食品的分離及活性。E-mail:lishuanglv@126.com

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