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        豬呼吸道病相關(guān)的常見(jiàn)病毒PCR/RT-PCR 檢測(cè)方法的建立

        2015-06-11 02:22:00韋冠東王洪光湯德元張?jiān)?/span>曾智勇
        關(guān)鍵詞:檢測(cè)方法

        韋冠東,王洪光,馬 萍,湯德元*,張?jiān)?,曾智勇,?霞,唐 宇,李 達(dá)

        (1.貴州大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院,貴州貴陽(yáng)550025;2.貴州省動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心,貴州貴陽(yáng)550008)

        隨著養(yǎng)豬業(yè)規(guī)?;?、集約化的不斷發(fā)展及治療豬病手段的不斷進(jìn)步,隨之而來(lái)的疾病的種類(lèi)也產(chǎn)生了變化,由以往的單一病原致病發(fā)展到多種病原混合感染和繼發(fā)感染。雖然藥物治療手段和效果越來(lái)越好,但隨之豬病的復(fù)雜程度及其危害也與日俱增。近年來(lái),與豬呼吸道相關(guān)的疾病是我國(guó)豬群的常發(fā)病,給我國(guó)養(yǎng)豬業(yè)帶來(lái)巨大的經(jīng)濟(jì)損失,嚴(yán)重影響?zhàn)B豬業(yè)發(fā)展,已經(jīng)受到廣泛重視。研究表明,PRV、PCV-2、CSFV、PRRSV、PPV 與SIV 等 病 毒是豬場(chǎng)發(fā)生的各類(lèi)病毒性呼吸道相關(guān)疾病中最為常見(jiàn)的病原[1]。斷奶前后的仔豬和早期育肥豬是豬呼吸道相關(guān)疫病的主要侵害對(duì)象,尤其是剛斷奶的仔豬,由于失去母源抗體保護(hù),自身免疫系統(tǒng)未發(fā)育完全、沒(méi)有健全消化和呼吸系統(tǒng)功能,在斷奶、混群和飼料刺激等應(yīng)激下,豬群極易發(fā)病[2-3]。豬群發(fā)生呼吸道相關(guān)疫病的主要臨床癥狀有采食量下降、日漸消瘦;有明顯的呼吸道癥狀如咳嗽、喘氣、呼吸困難;眼部及鼻端分泌物增多、發(fā)熱等特征[4]。自1983年Mullis成功建立PCR 技術(shù),隨著該方法應(yīng)用領(lǐng)域及方法的不斷進(jìn)步與發(fā)展,現(xiàn)成為動(dòng)物疫病診斷的重要方法之一,并廣泛應(yīng)用于分子生物學(xué)及其相關(guān)領(lǐng)域[5]。隨著PCR 技術(shù)的不斷發(fā)展,不同動(dòng)物疫病病原的多重PCR 方法建立也越來(lái)越普遍,王洪光[6]等建立了PRRSV 與SIV 二重RT-PCR 檢測(cè)方法,能同時(shí)檢測(cè)PRRSV 與SIV。劉志杰[7]等建立了六重PCR 檢測(cè)方法,可以同時(shí)檢測(cè)PCV-2、PRV、PPV、CSFV、PRRSV 和JEV 6 種豬繁殖障礙病毒性疫病。本試驗(yàn)擬建立能夠快速、準(zhǔn)確檢測(cè)PRV、PCV-2、PPV、CSFV、PRRSV 與SIV6 種 病 原 的PCR 或RT-PCR 方法,以期對(duì)臨床病料進(jìn)行準(zhǔn)確診斷。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 病毒、細(xì)胞、質(zhì)粒及菌株 本研究中使用的PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV 和SIV 系 病 豬組織中獲得,由貴州省動(dòng)物疫病研究室分離并保存提 供;;pMD19-T Vector 和 大 腸 埃 希 菌 感 受 態(tài)Top10購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司。

        1.1.2 主要試劑及儀器 TaKaRa MiniBEST Viral RNA/DNA Extraction Kit Ver.4.0RNA/DNA核酸提取試劑盒、DL Marker 2 000,寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品;EZNA TM Gel Extraction Kit(50)膠回收試劑盒,Omega公司產(chǎn)品;普通質(zhì)粒小提試劑盒,Tiangen 公司產(chǎn)品;異丙醇、無(wú)水乙醇等為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?;Icycler Thermal cycler型PCR儀,Bio-Rad公司產(chǎn)品。

        1.2 方法

        1.2.1 引物設(shè)計(jì) 試驗(yàn)根據(jù)GenBank 登錄的PRV gB(AF257079)、PCV-2 ORF2(NC-005148)、PRRSV ORF6(NC-001961)、CSFV C(AY805221)、PPV NS1(NC-001718)、SIV M(GU086140)等基因序列,應(yīng)用DNAStar、Oligo、MPprimer設(shè)計(jì)PCR/RT-PCR 引物,用于擴(kuò)增目的基因片段[8](表1)。

        表1 擴(kuò)增目的片段的引物Table 1 Specific primers used to amplify target genes

        1.2.2 病毒核酸提取 分別取病毒液200μL,參照核酸提取試劑盒說(shuō)明書(shū),嚴(yán)格按步驟提取病毒RNA/DNA,利用蛋白質(zhì)核酸儀測(cè)定其濃度,置-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.3 PCR/RT-PCR 反 應(yīng)體系 PRV、PCV-2、PPV 反應(yīng)體系為50μL,10×Taq PCR buffer 5 μL、dNTP(10 mmol/L)1 μL,上、下 游 引 物 各1μL,模板各1μL,r Taq 聚合酶1μL,滅菌超純水補(bǔ)足至50μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃5min;95 ℃30 s,57℃30s,72 ℃30s,35 個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。PRRSV、CSFV、SIV 反應(yīng)體系為25μL,2×1step buffer 12.5μL,上、下游引物各1μL,模板各1μL,Prime Script One Step Enzyme Mix 1μL,RNase free H2O 8.5μL。反應(yīng)程序:50℃40min,95 ℃5min,95 ℃30s,57℃30s,72 ℃30s,35個(gè)循環(huán);72℃10min。分別取5.0μL PCR/RT-PCR產(chǎn)物于10g/L瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳測(cè)定。

        1.2.4 PCR/RT-PCR 產(chǎn)物的鑒定 使用EZNA TM Gel Extraction Kit膠回收試劑盒,嚴(yán)格按照說(shuō)明書(shū)步驟回收上述6種病毒的PCR/RT-PCR 擴(kuò)增片段,將膠回收產(chǎn)物與pMD19-T 載體連接于16 ℃過(guò)夜,隨后將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至感受態(tài)細(xì)胞(Top10),經(jīng)Amp、IPTG、X-gal篩選,挑取單個(gè)白色菌落純培養(yǎng)后將陽(yáng)性菌液送至上海英駿生物技術(shù)有限公司測(cè)序。

        1.2.5 PCR/RT-PCR 方法反應(yīng)條件的優(yōu)化 對(duì)PCR/RT-PCR 反應(yīng)退火溫度(51℃~60 ℃)進(jìn)行優(yōu)化,以 確 定 最 佳Tm。PCR 反 應(yīng) 條 件:95 ℃5min;95 ℃30s,(51℃~60 ℃)30s,72 ℃30s,35個(gè)循環(huán);72℃10 min。RT-PCR 反應(yīng)條件:50℃40min;95℃5min,94℃30s,(51℃~60℃)30 s,72 ℃30s,35 個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10min。取5.0 μL PCR/RT-PCR 產(chǎn)物于10g/L 瓊脂糖進(jìn)行凝膠電泳測(cè)定。

        1.2.6 PCR/RT-PCR 特異性檢測(cè) 利用建立的PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV PCR/RTPCR 方法分別對(duì)彼此進(jìn)行擴(kuò)增,檢測(cè)該方法是否具有特異性。

        1.2.7 PCR/RT-PCR 敏感性檢測(cè) 用蛋白質(zhì)核酸儀測(cè)定提取的6 種病毒的核酸濃度,并用RNase free H2O 進(jìn)行101、102、103、104、105倍稀釋?zhuān)謩e取1μL 相應(yīng)倍比稀釋物進(jìn)行PCR/RT-PCR 反應(yīng),進(jìn)行敏感性檢測(cè)。

        2 結(jié)果

        2.1 PCR/RT-PCR 產(chǎn)物的鑒定

        將PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV PCR/RT-PCR 產(chǎn) 物 連 接pMD19-T 載 體 后,轉(zhuǎn) 化TOP10 感受態(tài)細(xì)胞,送上海英駿生物技術(shù)有限公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果表明,擴(kuò)增片段為6種病毒的特異性基因片段。

        2.2 PCR/RT-PCR 擴(kuò)增結(jié)果

        六種病毒PCR/RT-PCR 方法最佳退火溫度范圍均較廣,53℃~58℃檢測(cè)效果基本無(wú)差別,對(duì)PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV 的 核 酸 模板進(jìn)行PCR/RT-PCR 反應(yīng),分別擴(kuò)增出了192、255、364、530、759、981bp的特異性片段,各擴(kuò)增片段的克隆測(cè)序結(jié)果表明,所擴(kuò)增片段與預(yù)期結(jié)果大小一致,系目的基因序列(圖1)。

        2.3 特異性檢測(cè)

        利 用 建 立 的PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV PCR/RT-PCR 方法進(jìn)行擴(kuò)增,結(jié)果均為陰性,表明建立的方法特異性較好(圖2)。

        2.4 PCR/RT-PCR敏感性檢測(cè)

        對(duì)病毒核酸進(jìn)行101~105倍稀釋?zhuān)媒⒌腜RV、PCV-2、CSFV、PRRSV、PPV、SIV PCR/RTPCR 方法進(jìn)行擴(kuò)增,觀察其敏感性。發(fā)現(xiàn)該6種病毒核酸的檢測(cè)最低濃度依次為2.5×10-3、2.2×10-4、3.2×10-3、8.3×10-3、3.7×10-3、3.7×10-3ng(圖3)。

        圖1 PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV PCR/RT-PCR檢測(cè)結(jié)果Fig.1 Detection results of PRV,PCV-2,PRRSV,CSFV,PPV,SIV by PCR/RT-PCR

        圖2 PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV PCR/RT-PCR特異性試驗(yàn)Fig.2 Specificity test of PCR or RT-PCR for detecting PRV,PCV-2,PRRSV,CSFV,PPV,SIV

        圖3 PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV PCR/RT-PCR敏感性試驗(yàn)結(jié)果Fig.3 Sensitivity test of PCR/RT-PCR for detecting PRV,PCV-2,PRRSV,CSFV,PPV,SIV

        3 討論

        建立PCR 檢測(cè)方法時(shí),引物的設(shè)計(jì)是首要條件,試驗(yàn)表明建立PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV PCR/RT-PCR 的 最 佳 退 火 溫 度 范 圍 較廣,53℃~58℃檢測(cè)效果均較好。在敏感性試驗(yàn)中,6種病毒的核酸檢測(cè)最低濃度依次為2.5×10-3、2.2×10-4、3.2×10-3、8.3×10-3、3.7×10-3、3.7×10-3ng。近幾年來(lái),豬病毒性疾病發(fā)生對(duì)我國(guó)規(guī)?;B(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失,我國(guó)規(guī)模化豬場(chǎng)絕大多數(shù)都受到豬病毒性呼吸道疾病的威脅。PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV 是 呼 吸 道病毒性疫病的重要病原,該類(lèi)病原侵入呼吸道后,會(huì)造成呼吸道的防御屏障的破壞及呼吸道抗病毒能力的下降,繼而引起混合感染和繼發(fā)感染,由于導(dǎo)致呼吸道抵抗力的下降,使呼吸道類(lèi)的疾病發(fā)病率變高,導(dǎo)致多種疫病同時(shí)發(fā)生,使疫病復(fù)雜化,病癥加重;同時(shí)PRRSV、PCV-2、CSFV、PPV、PRV 能夠損傷機(jī)體的免疫系統(tǒng),降低豬群對(duì)外界環(huán)境的抵抗力,使得豬群發(fā)生疾病時(shí)多種病原混合感染和繼發(fā)感染的情況越來(lái)越普遍,由于這些病毒給機(jī)體造成相似臨床癥狀,導(dǎo)致疾病的診斷十分困難,難以及時(shí)給與相應(yīng)防治[9]。因此快速、準(zhǔn)確地診斷發(fā)病原因,從而及時(shí)有效的針對(duì)發(fā)病豬群采取相應(yīng)的藥物治療或免疫預(yù)防措施,降低疾病造成的經(jīng)濟(jì)損失具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。

        本 試 驗(yàn) 針 對(duì)PRV、PCV-2、PRRSV、CSFV、PPV、SIV 等6種常見(jiàn)病毒的相關(guān)保守基因分別設(shè)計(jì)一對(duì)特異性引物,以擴(kuò)增PRV gB、PCV-2ORF2、PRRSV ORF6、CSFV C、PPV NS1、SIV M 部分基因片段,應(yīng)用Primer Premier 5.0、Oligo 7.4、MFE primer和MP primer軟件進(jìn)行綜合分析,充分考慮PRVG+C 含量較高,PPVG+C 含量較低的問(wèn)題,Tm 值應(yīng)該控制在50℃~60℃,確保某一溫度都能進(jìn)行很好的PCR 反應(yīng),盡量避免引物間的非特異性擴(kuò)增,為以后多重PCR 反應(yīng)奠定基礎(chǔ)。建立的6種呼吸道相關(guān)病毒性疫病的PCR/RT-PCR 檢測(cè)方法,較理想的實(shí)現(xiàn)了上述6種病毒臨床病料的快速、準(zhǔn)確的檢測(cè),該方法的建立為檢測(cè)以上6種病毒提供了有參考價(jià)值的方法。

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