鄧 紅,趙茜茜,夏秋敏,高 丹,孟永宏,郭玉蓉
(陜西師范大學(xué)食品工程與營養(yǎng)科學(xué)學(xué)院,陜西西安 710062)
榨前分離蘋果清汁中多酚的提取與分析
鄧 紅,趙茜茜,夏秋敏,高 丹,孟永宏,郭玉蓉
(陜西師范大學(xué)食品工程與營養(yǎng)科學(xué)學(xué)院,陜西西安 710062)
以榨前分離蘋果清汁為樣品,優(yōu)化其多酚的提取和分析方法,與傳統(tǒng)工藝下清汁中的多酚進(jìn)行比較,以明確榨前分離工藝的優(yōu)勢。實驗采用超聲波輔助提取法優(yōu)化了多酚提取條件,并優(yōu)化了蘋果清汁多酚的HPLC分析方法。結(jié)果表明,提取多酚的最優(yōu)參數(shù)為溫度50℃,時間40min,果汁與提取劑之比1∶3;優(yōu)化多酚的HPLC檢測條件為檢測波長280nm,流動相甲醇-0.3%冰乙酸水溶液,實驗確定的梯度洗脫程序下多酚的分離效果較好。結(jié)論是兩種工藝下其蘋果清汁多酚物質(zhì)種類無顯著差異,但榨前分離蘋果汁中多酚的含量比傳統(tǒng)工藝果汁減少了23.62%,可以有效降低蘋果汁褐變的發(fā)生。
榨前分離,蘋果清汁,多酚,提取,分析
植物多酚是存在于植物組織中的次生代謝產(chǎn)物,具有良好的抗氧化活性和自由基清除能力。研究表明:酚類化合物在預(yù)防癌癥、心臟病、呼吸系統(tǒng)疾病,和促進(jìn)體內(nèi)排毒等方面具有明顯效果[1-2]。
蘋果多酚是蘋果中所含酚類物質(zhì)的統(tǒng)稱,主要分布在蘋果的果皮和果芯中,是果汁中重要的風(fēng)味和呈色物質(zhì)[3-4]。蘋果多酚的種類繁多,可分為黃烷醇類,如兒茶素、表兒茶素;黃酮醇類,如槲皮素、蘆?。涣u基肉桂酸類,如咖啡酸、綠原酸;二氫查耳酮類,如根皮素、根皮苷等[5-6]。蘋果多酚是引起果汁褐變的主要原因之一,所以對蘋果多酚的檢測和控制對蘋果汁加工企業(yè)尤為重要。蘋果多酚的檢測目前常用的有Folin-Ciocalteu(FC)法、正丁醇-鹽酸水解法、香蘭素法、Folin-Denis(FD)法、HPLC法、UV法等[7-8]。采用HPLC法測定單酚在整個樣品中的含量在國內(nèi)外已有報道,但樣品前處理中需要進(jìn)行多酚的提取和純化,步驟比較繁瑣,本實驗的榨前分離新工藝可簡化前處理又能使多酚比較容易從樣品中提取出來。
榨前分離是一種運用冷破碎設(shè)備能夠在榨汁前同時將蘋果皮、果柄、果籽、果核、木質(zhì)素及果肉進(jìn)行分離,把影響蘋果汁風(fēng)味的大多數(shù)物質(zhì)與榨汁用果肉隔離開來,極大地提高蘋果汁的品質(zhì)的新工藝[9-11],而蘋果加工工藝的革新更是幫助中國濃縮蘋果汁企業(yè)走出困境的重要舉措。
傳統(tǒng)工藝清汁是整果破碎,果皮、果柄、果籽、果核、果肉全部在一起壓榨制汁,成分比較復(fù)雜;榨前分離蘋果清汁僅用蘋果果肉榨汁,成分較簡單。本文以榨前分離蘋果清汁為樣品,以傳統(tǒng)工藝清汁為對照,采用液液萃取來提取樣品有機(jī)相中的多酚物質(zhì),進(jìn)行工藝條件優(yōu)化;采用HPLC法分析多酚,并優(yōu)化HPLC檢測條件,同時與傳統(tǒng)工藝蘋果清汁中多酚物質(zhì)的差異進(jìn)行對比,以期為蘋果多酚的開發(fā)利用和果汁加工行業(yè)工藝技術(shù)的改進(jìn)提供基礎(chǔ)資料和參考依據(jù)。
1.1 材料與儀器
實驗用紅富士蘋果 采于陜西省咸陽市長武縣果園,裝于塑料袋置冷庫中(0±1℃)貯藏,待用。標(biāo)準(zhǔn)品(沒食子酸、綠原酸、咖啡酸、4-羥基苯甲酸、兒茶素、表兒茶素、槲皮素、根皮素、原花青素B1、原花青素B2、金絲桃苷、根皮苷、槲皮苷、異槲皮苷、蘆丁) 均購于Sigma公司;分析試劑(色譜純甲醇、分析純乙酸乙酯和冰乙酸) 購于西安森博化玻儀器供應(yīng)站。
DIONEX P680型戴安高效液相色譜儀 美國戴安公司;迪馬C18液相色譜柱(4.6×250mm,5μm) 迪馬科技有限公司;RE-52AA型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海亞榮生化儀器廠;SHB-Ⅲ型循環(huán)水式多用真空泵 鄭州長城科工貿(mào)有限公司;KQ-200KDE型高功率數(shù)顯超聲波清洗器 昆山市超生儀器有限公司;JA2003型電子天平 上海精科天平有限公司;722型紫外可見分光光度計 上海市光譜儀器有限公司;冷破碎設(shè)備 陜西師范大學(xué)食品學(xué)院與西安鼎合機(jī)械公司共同研制。
1.2 實驗方法
1.2.1 工藝流程 蘋果→揀選→清洗→破碎(傳統(tǒng)工藝與榨前分離工藝)→酶解 →榨汁 →過濾→蘋果汁相關(guān)質(zhì)量指標(biāo)(多酚等)分析。
按此流程制得兩組樣品,分別是榨前分離工藝蘋果清汁和傳統(tǒng)工藝蘋果清汁;所有果汁樣品均稀釋至11.5°Brix進(jìn)行指標(biāo)分析。
1.2.2 蘋果多酚的提取
1.2.2.1 有機(jī)溶劑的選擇 在料液比和溫度相同的條件下,取10mL果汁樣品,用甲醇、乙醇、乙酸乙酯三種溶劑各200mL對果汁中的多酚類物質(zhì)進(jìn)行液液萃取以提取多酚,考察這三種溶劑提取多酚的效果,選出提取效果較好的溶劑進(jìn)行后續(xù)實驗。
1.2.2.2 提取方法的選擇 a.熱回流提取法:量取20mL果汁于三口燒瓶中,量取100mL乙酸乙酯倒入提取瓶,用電熱套加熱,溫度設(shè)為60℃,回流提取2h,測定乙酸乙酯溶液中總酚的含量。b.溶劑萃取法:用量筒量取20mL果汁于燒杯中,加入100mL乙酸乙酯,在50℃水浴中不停攪拌20min,取出,倒入分液漏斗中,靜置分層,取上清液并測定多酚含量。c.超聲波輔助提取法:量取20mL果汁于燒杯中,加入100mL乙酸乙酯,在溫度為50℃,功率為70W的條件下超聲20min,然后靜置分層,取上清液并測定多酚含量。
1.2.2.3 超聲波輔助提取多酚的工藝 a.超聲提取時間對提取效果的影響:固定提取溫度為50℃,料液比為1∶5,超聲功率為70W,設(shè)計超聲時間分別為10、20、30、40、50、60min,考察超聲時間對多酚提取效果的影響。b.溫度對提取效果的影響:固定果汁與提取劑之比為1∶5,超聲功率為70W,提取時間依上述實驗確定,分別在30、40、50、60、70℃條件下進(jìn)行超聲提取,考察超聲溫度對超聲效果的影響。c. 果汁與提取劑之比對提取效果的影響:超聲時間、溫度均由上述實驗確定,果汁與提取劑之比分別在1∶1、1∶2、1∶3、1∶4、1∶5的條件下進(jìn)行提取,考察果汁與提取劑之比對多酚提取效果的影響。
1.2.3 酚類物質(zhì)的定性和定量分析 在已確定的色譜條件下,對15種單酚的標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行測定,確定標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的保留時間,再對混合標(biāo)樣進(jìn)行測定,以保留時間對樣品中的多酚物質(zhì)定性。
根據(jù)樣品濃度和峰面積之間的正比關(guān)系,在已確定的色譜條件下,對15種單酚的標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行測定,記錄標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的峰面積,再對混合標(biāo)樣進(jìn)行測定,以峰面積對樣品中的多酚物質(zhì)進(jìn)行定量分析。
1.2.3.1 樣品溶液的制備 取20mL果汁樣品,加入一定量的有機(jī)溶劑,通過上述優(yōu)化的多酚提取方式,將多酚物質(zhì)從果汁中萃取到有機(jī)溶劑,得到其有機(jī)溶液,再通過真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀將有機(jī)溶劑蒸發(fā)掉,使多酚物質(zhì)析出,再用氮氣吹干,以甲醇定容至5mL,經(jīng)0.45μm微孔濾膜過濾,待液相色譜分析。
1.2.3.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制 稱取一定量的沒食子酸、綠原酸、咖啡酸、4-羥基苯甲酸、兒茶素、表兒茶素、槲皮素、根皮素、原花青素B1、原花青素B2、金絲桃苷、根皮苷、槲皮苷、異槲皮苷、蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,溶于70%甲醇溶液中,定容至10mL棕色容量瓶中,搖勻,放入冰箱4℃避光貯存?zhèn)溆谩T偃∫欢w積的各個單標(biāo)配成系列混合標(biāo)準(zhǔn)溶液。
1.2.3.3 色譜條件的確定 根據(jù)多酚物質(zhì)的特性,選擇色譜柱為Discovery C18,150mm×4.6mm,5μm;查閱相關(guān)文獻(xiàn)[12-14]可知,柱溫為30℃;流速為1.0mL/min;進(jìn)樣量為10μL;其他色譜條件有待實驗確定,主要如下:
a.確定檢測器波長:對樣品進(jìn)行紫外區(qū)全波長掃描,選擇測定酚類物質(zhì)的最佳波長;b.流動相選擇:流動相有甲醇-0.1%醋酸水溶液,甲醇-0.1%磷酸水溶液,根據(jù)出峰效果選擇最佳流動相。c.梯度洗脫程序的調(diào)試:以甲醇-0.1%醋酸水溶液為流動相分離果汁中的多酚,通過改變流動相的比例以及濃度梯度來達(dá)到分離各峰的目的。
1.2.4 方法學(xué)驗證
1.2.4.1 回收率的考察 將一定量的各單酚標(biāo)準(zhǔn)品加到樣品果汁中,按照文獻(xiàn)方法[15-17]進(jìn)行前處理,在已確定的色譜條件下進(jìn)行 HPLC 測定,計算各組分的加標(biāo)回收率。
加標(biāo)回收率(%)=(實測值(mg)-樣品中含量(mg))/添加值(mg)×100
式(1)
1.2.4.2 精密度實驗 取供試品樣品溶液,等量重復(fù)進(jìn)樣5次,按上述最佳色譜條件進(jìn)行分析,計算這5次中各組分含量的RSD(相對標(biāo)準(zhǔn)偏差)。若RSD均小于3%,則表明儀器精密度良好。計算公式為:
式(2)
1.2.4.3 穩(wěn)定性實驗 取供試品樣品溶液,分別于配置后0、4、8、16、24h進(jìn)樣,按優(yōu)化的色譜條件進(jìn)行分析,計算這5次各組分含量的RSD。
1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析
采用DPPS軟件對實驗數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析處理。
2.1 蘋果多酚的提取工藝
2.1.1 有機(jī)溶劑的選擇 實驗測定的榨前分離蘋果汁多酚含量如圖1所示。
圖1 不同溶劑對果汁樣品中多酚提取的影響Fig.1 Influence of different solvent for extracting polyphenols in the juice sample
圖1對比了三種溶劑萃取多酚的效果,可以看出甲醇對果汁中多酚的提取量高于乙醇和乙酸乙酯,提取能力的順序為甲醇>乙酸乙酯>乙醇,但是實驗中發(fā)現(xiàn)用甲醇和乙醇提取果汁中的多酚時,雖多酚進(jìn)入醇相,但果汁中會產(chǎn)生白色沉淀,原因是果汁中的糖類物質(zhì)不溶于甲醇和乙醇,而采用乙酸乙酯進(jìn)行提取時,由于乙酸乙酯不溶于水,不會造成果汁渾濁,而此時多酚物質(zhì)會從果汁中被萃取到乙酸乙酯中,只要對上清液進(jìn)行旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),乙酸乙酯蒸發(fā)后多酚物質(zhì)自然析出,這樣就簡化了提取工藝,因此,采用乙酸乙酯作為提取溶劑進(jìn)行后續(xù)實驗。
2.1.2 提取方法的選擇 采用三種提取方式提取多酚的結(jié)果如圖2所示,可以看出超聲波輔助提取的效果是最好的,溶劑萃取法次之,熱回流提取的效果最差。熱回流提取耗時長,對多酚的影響較大,而超聲波輔助提取的時間短、效率高,因此,采用超聲波輔助提取方法。
圖2 提取方法對多酚提取效果的影響Fig.2 Influence of different method for extracting polyphenols in the juice sample
2.1.3 超聲波輔助提取多酚工藝
2.1.3.1 提取時間對多酚提取效果的影響 實驗結(jié)果見圖3,圖3表明液液萃取時隨著超聲提取時間的延長,果汁中的多酚不斷溶出進(jìn)入醇相中,提取量不斷上升;在40min后,超聲波輔助下的提取基本達(dá)到動態(tài)平衡,增長趨于緩慢,因此,確定40min為最佳提取時間。
圖3 提取時間對多酚提取效果的影響Fig.3 Influence of different time for extracting polyphenols in the juice sample
2.1.3.2 提取溫度對多酚提取效果的影響 實驗結(jié)果見圖4,從圖4可以看出,隨著溫度的升高,分子運動速度加快,多酚的提取量不斷增大,溫度高于50℃后,多酚的提取量增長緩慢。因為在溫度較高的情況下,乙酸乙酯揮發(fā)更快,溶劑的減少則提取量降低;從能源方面考慮,溫度的升高會造成熱能浪費,因此確定50℃為提取最佳溫度。
圖4 提取溫度對多酚提取效果的影響Fig.4 Influence of different temperature for extracting polyphenols in the juice sample
2.1.3.3 果汁與提取劑之比對多酚提取效果的影響 實驗結(jié)果見圖5,可以看出,果汁與提取劑之比對提取效果的影響不顯著,因為每種提取劑對于多酚的溶解度有限。從曲線的趨勢看,在果汁與提取劑之比為1∶3時,提取的效果較好,果汁與提取劑之比大于1∶3后的提取量增大不明顯,考慮經(jīng)濟(jì)高效方面,選擇果汁與提取劑之比1∶3為最佳。
2.2 蘋果多酚的檢測分析
2.2.1 色譜條件的優(yōu)化
2.2.1.1 檢測器波長的確定 果汁經(jīng)過乙酸乙酯超聲波輔助提取,將多酚物質(zhì)萃取到乙酸乙酯中,通過對乙酸乙酯提取液進(jìn)行紫外全波長掃描,結(jié)果如圖6所示。
圖6 樣品全波長掃描圖Fig.6 Wavelength scan of apple juice Sample
可以看出,樣品在217nm和290nm處有吸收峰,查閱文獻(xiàn)得知,217nm處多為糖酸類物質(zhì),而多酚集中吸收波長在280nm左右,通過對比260、270、280、290nm下色譜分離多酚的效果,選擇280nm作為檢測波長。
2.2.1.2 流動相的選擇 多酚類物質(zhì)的酚羥基、羧基在水溶液中容易發(fā)生電離,使得極性增強(qiáng),容易在色譜柱固定相表面形成雙重保留,色譜峰拖尾嚴(yán)重,因此定量分析誤差較大。如果在流動相中加入少量酸性調(diào)節(jié)溶液,如冰乙酸溶液,可使多酚的電離受到抑制,極性減弱,使分離效果和峰形得到改善。實驗比較了流動相甲酸-水、甲醇-0.1%冰乙酸水溶液、甲醇-0.1%磷酸水溶液,通過色譜圖看出加入酸溶液的流動相體系明顯改善了分離效果和峰形,加入冰乙酸的效果比磷酸好。因此以流動相為甲醇-0.1%冰乙酸水溶液,甲醇-0.3%冰乙酸水溶液,甲醇-0.5%冰乙酸水溶液進(jìn)行實驗,發(fā)現(xiàn)甲醇-0.3%冰乙酸水溶液的的流動相體系最好,最終選擇流動相為甲醇-0.3%冰乙酸水溶液。
2.2.1.3 梯度洗脫程序的優(yōu)化 以上述條件對樣品進(jìn)行色譜分析,不斷調(diào)節(jié)梯度程序,最終確定以下梯度程序如圖7所示。
圖7 HPLC梯度洗脫程序圖Fig.7 Diagram of HPLC gradient elution program
2.2.2 蘋果汁有機(jī)相中多酚的液相色譜分析 在果汁的加工工藝工程中,殺菌和酶解這兩步對果汁中酚類影響較大,均會減少酚類物質(zhì)的含量,并且促進(jìn)酚類物質(zhì)聚合反應(yīng)的發(fā)生。研究酚類物質(zhì)對于考察加工工藝有一定意義。
2.2.2.1 多酚標(biāo)準(zhǔn)品的分離結(jié)果 實驗結(jié)果見圖8,根據(jù)單酚的出峰時間,圖8中按出峰的先后順序?qū)畏舆M(jìn)行排列,與序號的對應(yīng)關(guān)系為:1-沒食子酸、2-原花青素B1、3-兒茶素、4-4-羥基苯甲酸、5-原花青素B2、6-綠原酸、7-咖啡酸、8-表兒茶素、9-槲皮素、10-金絲桃苷、11-蘆丁、12-異槲皮苷、13-根皮苷、14-槲皮苷、15-根皮素。
圖8 15種多酚混標(biāo)的分離效果Fig.8 Separation effects of 15 polyphenols mixed standard
2.2.2.2 榨前分離工藝和傳統(tǒng)工藝下蘋果汁樣品多酚分離結(jié)果 采用液相色譜分析,實驗結(jié)果見圖9和圖10。對比圖9和圖10兩圖可以看出,榨前分離果汁譜圖中出峰少,且峰高低于傳統(tǒng)工藝譜圖中的各峰,這說明了榨前分離工藝中的多酚在種類和數(shù)量上均較少。另外,兩種果汁中均含有許多未知的物質(zhì),由于標(biāo)品的局限性,未能對其進(jìn)行定性和定量分析,還有待進(jìn)一步研究和分析。
圖9 榨前分離果汁有機(jī)相中多酚的分離效果Fig.9 Separation effects of polyphenols in apple juice produced by pressing pre-peeled apple
表1 榨前分離與傳統(tǒng)工藝果汁中多酚物質(zhì)的測定結(jié)果Table 1 Results of the phenolic compound in apple juice produced by different technology
圖10 傳統(tǒng)工藝果汁有機(jī)相中多酚的分離效果Fig.10 Separation effects of polyphenols in apple juice produced by traditional technology
注:-表示未檢測出。根據(jù)多酚物質(zhì)的保留時間排序,記錄峰面積大小,對果汁中的酚類物質(zhì)進(jìn)行定性和定量分析,結(jié)果列入表1。
如表1所示,兩種果汁均鑒定了14種多酚物質(zhì),這些多酚在果汁中含量較多的有綠原酸、表兒茶素、根皮苷、原花青素B2、兒茶素,其他單酚含量較少,且均不含咖啡酸;從含量上看,14種多酚在傳統(tǒng)工藝果汁中含量為164.96μg/mL,在榨前分離果汁中的含量為126.0μg/mL,后者比前者少了23.62%;從減少量分析,單酚含量減少量較大的有原花青素B2、金絲桃苷、異槲皮苷、槲皮苷、根皮素,而這幾種單酚多分布在蘋果的果皮、果梗中,因此榨前分離工藝對這幾種單酚的損失較多。
2.2.3 方法學(xué)驗證結(jié)果 如表2所示,各酚的加標(biāo)回收率均在85%以上,說明該分離方準(zhǔn)確可靠;精密度實驗的RSD 為0.6%~2.1%,小于3%,說明該方法的精密度合格;但是,穩(wěn)定性實驗的RSD均較大,這說明了多酚類物質(zhì)在果汁中的含量不穩(wěn)定,隨著時間在不斷變化,主要是因為酚類物質(zhì)易受加工工藝和儲存時間影響[18]。因此,本方法用于同時測定蘋果清汁中多種酚類物質(zhì)的含量,具有較高的靈敏度和精密度,可行性強(qiáng)。
3.1 以乙酸乙酯作為有機(jī)提取溶劑,采用超聲波輔助方法提取多酚,單因素實驗確定的提取條件為:提取溫度50℃,時間40min,料液比1∶3。
3.2 確定HPLC檢測多酚的優(yōu)化方法為:檢測波長為280nm,流動相為甲醇-0.3%冰乙酸水溶液,梯度洗脫條件下多酚的分離效果較好。
表2 方法學(xué)驗證實驗的測定結(jié)果Table 2 Results of methodological validating test
3.3 應(yīng)用優(yōu)化的提取方法和HPLC檢測條件,在兩種工藝下的果汁中均檢測出了14種多酚,則榨前分離蘋果清汁與傳統(tǒng)工藝蘋果清汁中多酚物質(zhì)在種類上無顯著差異;從15種單酚的分布情況看,綠原酸的含量最多,較高的是表兒茶素、根皮苷、原花青素B2、兒茶素,其他的單酚含量均較少;從含量上,榨前分離果汁中的含量比傳統(tǒng)工藝果汁減少了23.62%,這對于減小果汁的褐變有良好作用。
3.4 經(jīng)過方法學(xué)驗證實驗,說明本方法適用于測定蘋果清汁中酚類物質(zhì)的含量,比傳統(tǒng)分析方法操作簡單,且具有較高的靈敏度和精密度,可行性強(qiáng)。
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Analysis and extraction for polyphenols in apple juiceof pre-pressing fruit
DENG Hong,ZHAO Xi-xi,XIA Qiu-min,GAO Dan,MENG Yong-hong,GUO Yu-rong
(College of Food Engineering and Nutritional Science,Shaanxi Normal University,Xi’an 710062,China)
Using the apple juice of pre-pressing fruit as testing sample,the extracted and analyzed method of polyphenols in juice was optimized. The difference of polyphenols content between juice pressed pre-peeled and traditional process that pressed whole fruit was compared to show the advantages of pre-pressing fruit. The extracting condition of polyphenol was optimized using ultrasonic assisted extraction method and the method of polyphenols detection by HPLC also was optimized. The results showed that optimal extracting condition of polyphenol was temperature 50℃,time 40min,ratio of juice to extracting 1∶3 and detection wavelength of HPLC was 280nm,linear gradient elution compose of methanol and 0.3% acetate acid solution. The polyphenols separated result was best under the gradient elution condition which was determined in this test. So the polyphenol content in juice pre-pressing was decreased 23.62% as the category was same between traditional process and juice pressed pre-peeled method. The browning of the apple juice can effectively reduce in the new processing.
pre-pressing fruit;apple juice;polyphenol;extraction;analysis
2014-04-18
鄧紅(1967-),女,博士,副教授,研究方向:食品工程。
中央高??蒲袠I(yè)務(wù)專項經(jīng)費項目(GK261001330);農(nóng)業(yè)部蘋果體系(CARS-28)項目資助。
TS255.44
B
1002-0306(2015)03-0214-06
10.13386/j.issn1002-0306.2015.03.036