郭蓮怡 金旭鵬 王桂君 李曉飛 牛 威 (遼寧醫(yī)學院附屬第一醫(yī)院消化科,遼寧 錦州 200)
終末期肝硬化和重型肝炎常并發(fā)多臟器衰竭,尤其是肝腎綜合征(HRS)時,患者預后極差。目前認為HRS的發(fā)生是腎血管收縮、腎臟低灌注所致,其機制尚不完全清楚。腫瘤壞死因子(TNF)-α作為重癥肝炎發(fā)生的重要因子〔1〕,與重癥感染時腎衰竭的發(fā)生發(fā)展明顯相關〔2〕。本研究觀察TNF-α對離體大鼠腎血管收縮的影響及機制。
1.1 實驗動物 選擇清潔級雄性SD大鼠56只,重約250~300 g。由遼寧醫(yī)學院實驗動物中心提供,許可證號:SCXK(遼)2003-0007,開放系統(tǒng)飼養(yǎng),實驗前禁食12 h。
1.2 主要試劑和儀器 TNF-α、內(nèi)皮素(ET)-1(Sigma公司)、Verapamil(上海德默生物科技有限公司)、2-氨基乙基二苯硼酸鹽(2-APB,Sigma公司)、Kreb灌流液、無鈣 Kreb灌流液。minipuls2灌注泵,法國Gilson;RM6000多導生理記錄儀,日本;恒溫灌注池,廣東;Oxnard CA張力換能器,美國Gould;氧合器,熱交換器、HTG恒溫器,上海;倒置顯微鏡,德國Carl Zeiss公司。
1.3 離體灌注腎實驗模型的建立〔3〕戊巴比妥鈉(30 mg/kg)腹腔注射麻醉大鼠。剪毛,消毒,腹壁正中切開,分離腸系膜上動脈及右腎動脈。腸系膜上動脈插管至右腎動脈,三通接灌注裝置和張力換能器,開放腎靜脈。取出左腎稱重作為對照腎重。灌注過程:啟動灌注泵灌流,流量為5 ml/min,溫度為37℃,并給予95%氧和5%二氧化碳。
1.4 實驗分組 56只大鼠制備離體灌注腎模型后隨機分為8組(n=7):①A1組:Kreb液灌流;②A2組:含TNF-α(100μg/L)的Kreb液灌流;③B1組:含Verapamil(0.1 mmol/L)的Kreb液灌流;④B2組:含 Verapamil(0.1 mmol/L)及 TNF-α(100 μg/L)的Kreb液灌流;⑤C1組:無鈣Kreb液灌流;⑥C2組:含TNF-α(100μg/L)的無鈣Kreb液灌流;⑦D1組:含2-APB(50μmol/L)的無鈣Kreb液灌流;⑧D2組:含2-APB(50μmol/L)及 TNF-α(100μg/L)的無鈣Kreb液灌流。
1.5 離體腎體外灌注過程 分三期:平衡期:各組在灌流通路上,均先用有鈣或無鈣Kreb液灌流30 min達平衡;灌流期:用含特定成分的有鈣或無鈣Kreb液灌流90 min;刺激期:各組均予含ET(1 nmol/L)的有鈣或無鈣Kreb液繼續(xù)灌流20 min。
1.6 腎臟水腫率及病理檢查 灌流結(jié)束后,各組腎標本稱重,計算腎臟水腫率,腎臟水腫率=(灌流后腎重-對照腎重)/對照腎重。4%多聚甲醛固定,石蠟包埋、常規(guī)HE染色,光鏡下觀察腎小球及腎小管形態(tài)、結(jié)構。
1.7 統(tǒng)計學方法 采用SPSS17.0軟件進行t檢驗。
2.1 TNF-α對基礎灌注壓的影響 平衡期過后,各組基礎灌注壓比較無顯著差異(P>0.05)。TNF-α、2-APB預灌流時,基礎灌注壓無明顯改變。
2.2 TNF-α對腎血管收縮作用的影響 A1、A2組ET刺激后,灌注壓較基礎壓均明顯升高(P<0.05);A2組灌注壓升高值顯著高于A1組(P<0.01)。見圖1,表1。B1、B2組ET刺激后,灌注壓較基礎壓均明顯升高(P<0.05);B2組灌注壓升高值顯著高于B1組(P<0.01)。見圖2,表1。C1、C2組ET刺激后,灌注壓較基礎壓均明顯升高(P<0.05);C2組灌注壓升高值顯著高于C1組(P<0.01)。見圖3,表1。D1、D2組ET刺激后,腎灌注壓均略升高,但與基礎灌注壓比較無顯著差異(P>0.05);兩組灌注壓升高值比較無顯著性差異(P>0.05)。見圖4,表 1。
表1 各組大鼠離體腎灌注壓結(jié)果(x ± s,n=7)
圖1 A1、A2組腎血管灌注壓的變化
圖2 B1、B2組腎血管灌注壓的變化
圖3 C1、C2組腎血管灌注壓的變化
圖4 D1、D2組腎血管灌注壓的變化
2.3 腎臟水腫率及病理變化 A1、A2、B1、B2、C1、C2、D1、D2組腎臟的水腫率分別為(28±2)%、(29±30)%、(28±3)%、(27±2)%、(26±3)%、(27±3)%、(29±30)%、(26±2)%,灌流后腎組織無明顯器質(zhì)性損傷,與灌流前相符。見圖5。
圖5 灌流前后腎組織HE染色(×200)
當HRS發(fā)生時,患者血清中許多縮血管活性物質(zhì)水平明顯增高,并可通過直接或間接途徑引起腎血管收縮,是導致腎血流灌注和腎功能紊亂的重要介質(zhì)〔4〕。近年來學者們認為:重型肝炎患者體內(nèi)TNF-α濃度明顯增高,是導致多臟器衰竭的重要因子,研究表明TNF-α能夠通過多種途徑引起血管收縮,參與相關疾病的病理生理過程:① TNF-α可通過TNFR2和ETETR依賴途徑引起血管收縮。當阻斷ETA、ETB受體后,TNF-α就不再有縮血管作用了〔5〕。② TNF-α抑制內(nèi)皮依賴的一氧化氮-環(huán)磷酸鳥苷(NO-CGMP)途徑導致血管收縮。TNF-α可活化蛋白激酶C(PKC)從而抑制內(nèi)皮型一氧化氮合酶(eNOS)磷酸化;同時TNF-α可通過縮短eNOSmRNA的半衰期來下調(diào)eNOS mRNA〔6〕。③ TNF-α能夠增強Ca2+依賴及非 Ca2+依賴蛋白激酶活性,從而增強血管平滑肌細胞收縮〔7〕。
本實驗建立離體灌注腎模型,應用多導生理記錄儀檢測腎灌注壓發(fā)現(xiàn):腎臟經(jīng)含TNF-α的Kreb液灌流后,其腎血管對ET的反應提高,表現(xiàn)為腎血管灌注壓明顯高于非TNF-α處理組。結(jié)果表明:TNF-α可增強ET的腎血管收縮作用。而Kreb液所含鈣離子可通過平滑肌細胞膜上的鈣通道進入胞內(nèi),從而引起腎血管灌注壓增高,為排除這一因素,應用Verapamil阻斷膜上的鈣通道后,予含TNF-α的Kreb液灌流,其腎血管對ET的反應仍增高,腎血管灌注壓仍高于非TNF-α處理組。進一步應用含TNF-α的無鈣Kreb液灌流腎臟后,其腎血管對ET的反應提高,腎血管灌注壓明顯高于非TNF-α處理組,表明TNF-α通過增強ET引起的胞內(nèi)鈣釋放促進腎血管收縮。
1,4,5三磷酸肌醇(IP3)是細胞間跨膜信息傳遞的第二信使,IP3受體(IP3R)為離子通道受體,主要分布在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、肌漿網(wǎng)上,其末端有IP3結(jié)合點。一旦IP3與IP3R結(jié)合,IP3R構象則發(fā)生改變,導致通道開放,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中的儲備鈣被釋放到胞質(zhì)中,以調(diào)節(jié)各種細胞的生物活性〔8〕。已知ET等血管活性物質(zhì)與靶細胞膜上特異性受體(如ET受體)結(jié)合后,使膜磷脂酰肌醇4,5-二磷酸發(fā)生磷酸化生成 IP3,IP3與IP3R(胞內(nèi)主要的Ca2+釋放通道)結(jié)合則促進細胞內(nèi)Ca2+釋放,使胞內(nèi)Ca2+水平增高〔9〕,引起細胞收縮。2-APB是一種常用的IP3R的阻斷劑,可特異性阻斷IP3R〔10〕,本實驗應用含2-APB及TNF-α的無鈣Kreb液灌流腎臟,其腎血管對ET的反應較差,ET刺激后的腎血管灌注壓無顯著變化。結(jié)果表明:2-APB可阻斷TNF-α的前述作用,說明TNF-α可能通過上調(diào)IP3R進而增強ET引起的腎血管收縮。已有報道:TNF-α可誘導腎小球纖維蛋白沉積、中性粒細胞浸潤、細胞凋亡,引起腎小球濾過率下降。因此實驗結(jié)束后,所有的腎臟標本稱重,計算其水腫率低于30%,說明灌流成功;并進行常規(guī)病理檢查均未發(fā)現(xiàn)腎小管及腎小球細胞病理性改變,故排除了實驗結(jié)果受器質(zhì)性腎臟損傷影響的因素〔11〕。
綜上所述,重癥肝炎患者血中存在的高濃度TNF-α可能上調(diào)IP3R,促進胞內(nèi)鈣釋放,增強腎血管對ET的收縮敏感性,造成腎臟低灌注,參與HRS發(fā)生。
1 Tobon GJ,Ca?as C,Jaller JJ,et al.Serious liver disease induced by infliximab〔J〕.Clin Rheumatol,2007;26(4):578-81.
2 Justo ávila P,Gracia Iguacel C,Ortiz Arduán A,et al.Acute renal failure in patient treated with anti-tumour necrosis factor alpha〔J〕.Nefrologia,2011;31(4):484-8.
3 Genesca J,Segura R,Gonzalez A,et al.Nitric oxide may contribute to nocturnal hemodynamic changes in cirrhotic patients〔J〕.Am JGastroenterol,2000;95(6):1539-44.
4 Leung W,Wong F.Hepatorenal syndrome:do the vasoconstrictors work〔J〕.Gastroenterol Clin North Am,2011;40(3):581-98.
5 Donate PB,Cunha TM,Verri WA Jr,et al.Bosentan,an endothelin receptor antagonist,ameliorates collagen-induced arthritis:the role of TNF-α in the induction of endothelin system genes〔J〕.Inflamm Res,2012;61(4):337-48.
6 Bonthius DJ,Bonthius NE,Li S,et al.The protective effect of neuronal nitric oxide synthase(nNOS)against alcohol toxicity depends upon the NO-cGMP-PKG pathway and NF-kappaB〔J〕.Neurotoxicology,2008;29(6):1080-91.
7 Usui T,Yamawaki H,Kamibayashi M,et al.Mechanisms underlying the anti-inflammatory effects of the Ca2+/calmodulin antagonist CV-159 in cultured vascular smooth muscle cells〔J〕.J Pharmacol Sci,2010;113(3):214-23.
8 Zhang W,Tingare A,Ng DC,et al.IP3-dependent intracellular Ca2+release is required for cAMP-induced c-fos expression in hippocampal neurons〔J〕.Biochem Biophys Res Commun,2012;425(2):450-5.
9 Gerasimenko JV,Lur G,F(xiàn)erdek P,et al.Calmodulin protects against alcohol-induced pancreatic trypsinogen activation elicited via Ca2+release through IP3 receptors〔J〕.Proc Natl Acad Sci USA,2011;108(14):5873-8.
10 Szatkowski C,Parys JB,Ouadid-Ahidouch H,et al.Inositol 1,4,5-trisphosphate-induced Ca2+signalling is involved in estradiol-induced breast cancer epithelial cell growth〔J〕.Mol Cancer,2010;9:156-61.
11 T?lle M,Schuchardt M,Wiedon A,et al.Differential effects of uridine adenosine tetraphosphate on purinoceptors in the rat isolated perfused kidney〔J〕.Br J Pharmacol,2010;161(3):530-40.