楊永曜,楊天和,蔣清安,楊龍,唐峰,譚洪文
(貴州省人民醫(yī)院心內(nèi)科,貴州 貴陽 550002)
抑制肌球蛋白輕鏈激酶活性對內(nèi)皮素-1誘導的大鼠肺動脈平滑肌細胞增殖及凋亡失衡的影響*
楊永曜,楊天和△,蔣清安,楊龍,唐峰,譚洪文
(貴州省人民醫(yī)院心內(nèi)科,貴州 貴陽 550002)
目的:觀察抑制肌球蛋白輕鏈激酶(MLCK)對內(nèi)皮素-1(ET-1)誘導的大鼠肺動脈平滑肌細胞(pulmonary artery smooth muscle cells,PASMCs)增殖與凋亡失衡的影響。方法:細胞分成3組:對照組;內(nèi)皮素-1組;內(nèi)皮素-1+肌球蛋白輕鏈激酶抑制劑組(ET-1+M組)。干預72 h后,免疫印跡法測定細胞內(nèi)MLCK表達水平;甘油凝膠電泳和免疫印跡法檢測肌球蛋白輕鏈(MLC)的磷酸化水平,MTT比色法及[3H]-TdR摻入法檢測PASMCs的增殖情況,流式細胞儀檢測PASMCs的細胞周期變化及凋亡率。結(jié)果:同對照組比較,ET-1刺激后肺動脈平滑肌細胞MLCK蛋白表達顯著增強、MLC磷酸化上調(diào)、增殖增多、凋亡率明顯降低(均P<0.05);加入MLCK抑制劑干預后,MLCK表達明顯下降(P<0.05)、MLC去磷酸化顯著增強、逆轉(zhuǎn)了ET-1對PASMCs增殖及凋亡的影響。結(jié)論:抑制MLCK能顯著逆轉(zhuǎn)內(nèi)皮素-1誘導的大鼠肺動脈平滑肌細胞增殖與凋亡的失衡。
肌球蛋白輕鏈激酶;內(nèi)皮素-1;肺動脈平滑肌細胞;細胞增殖;細胞凋亡
目前已知肺動脈高壓(pulmonary artery hypertension,PAH)的病理學基礎(chǔ)是通過肺血管收縮和肺血管結(jié)構(gòu)重構(gòu)兩個基本的機制使肺血管阻力增加,在早期肺血管收縮中起主要作用,后期則以肺血管結(jié)構(gòu)重構(gòu)為主[1]。內(nèi)皮素(endothelin,ET)作為一種強烈的促進細胞增殖的啟動生長因子,使肺血管平滑肌細胞增生肥厚,促進血管壁的增生和狹窄;因此ET在PAH的肺血管張力的維持和肺血管重構(gòu)方面均起重要作用[2]。肌球蛋白輕鏈激酶(myosin light chain kinase,MLCK)是僅知的催化不同Ca2+/CaM依賴性肌球蛋白II輕鏈磷酸化的一種蛋白激酶,是平滑肌收縮最重要的限速因子。但MLCK在肺動脈高壓血管重構(gòu)中的地位和作用尚缺乏重視和研究。
本研究擬從細胞及分子水平驗證抑制肌球蛋白輕鏈(myosin light chain,MLC)磷酸化的鈣依賴途徑MLCK對ET-1誘導的大鼠肺動脈平滑肌細胞(pulmonary artery smooth muscle cells,PASMCs)增殖與凋亡失衡的影響。
1 主要試劑和材料
胎牛血清、高糖DMEM培養(yǎng)基及胰蛋白酶III型(Hyclone);二甲基亞砜(DMSO)、I型膠原酶、小鼠抗MLCK單克隆抗體、小鼠抗MLC單克隆抗體和辣根過氧化物酶(HRP)標記的II抗(Sigma);小鼠抗大鼠α-actin抗體(武漢博士德公司);FITC標記山羊抗小鼠抗體(中杉公司);MTT細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒和BCA蛋白濃度測定試劑盒(碧云天公司);[3H]-TdR(上海原子能研究所);ET-1(Bachem); MLCK抑制劑ML-7(Calbiochem);Kodak 4400CF圖像分析系統(tǒng)(PELS)。其余試劑均為國產(chǎn)試劑。
2 大鼠肺動脈平滑肌細胞的培養(yǎng)、鑒定與分組
[3]對大鼠肺動脈平滑肌細胞進行原代培養(yǎng)、純化和鑒定,用0.25%的胰蛋白酶消化傳代,接種于新培養(yǎng)瓶擴大培養(yǎng)。傳代培養(yǎng)后改用含有10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液,倒置相差顯微鏡下觀察,細胞呈典型“谷”、“峰”狀生長。培養(yǎng)出的細胞用α-actin免疫組化鑒定,實驗應用第3~5代細胞。
當傳代的細胞生長到70%~80%融合,以無血清培養(yǎng)基替換原培養(yǎng)液,繼續(xù)同步化培養(yǎng)24 h。采用隨機排列表法將細胞分為3組:①對照組(control組)培養(yǎng)液中只加DMSO,不加ET-1(為使實驗條件一致,各組均同樣要加入DMSO,終濃度為0.1%),繼續(xù)培養(yǎng)72 h;②內(nèi)皮素-1組(ET-1組)干預前均預先給予1%胎牛血清饑餓24 h,再加入10-8mol/L的ET-1刺激;③ET-1+肌球蛋白輕鏈激酶抑制劑組(ET-1+M組)以MLCK特異性抑制劑ML-7 20 μmol/L在ET-1加入前預處理細胞30 min,72 h后收獲細胞,檢測各項指標。
3 主要實驗方法
3.1 MLC磷酸化的測定按參考文獻[4]方法,用甘油凝膠電泳和免疫印跡法檢測肌球蛋白輕鏈的磷酸化水平。MLC磷酸化水平以磷酸化MLC(p-MLC)與總MLC比值(%)表示。
3.2 Western blotting檢測蛋白水平收集細胞加入4℃預冷的細胞裂解液提取總蛋白,Bradford法測定蛋白濃度后各取等量蛋白上樣,12%SDS-PAGE后電轉(zhuǎn)移至PVDF膜上。用小鼠抗MLCK單克隆抗體(1∶1 000)作為Ⅰ抗于4℃孵育過夜,洗膜,加HRP標記的Ⅱ抗(1∶5 000)常溫孵育60 min,以增強化學發(fā)光法顯色、曝光,定量測定各條帶密度,以內(nèi)參照蛋白β-actin進行校正。
3.3 MTT比色法測定PASMCs的增殖參考文獻方法[3],于酶標儀測570 nm處吸光度值(A),每孔A值減去空白孔A值為測試孔A的真值。
3.4 [3H]-TdR摻入法檢測細胞的DNA合成應用[3H]thymidine試劑盒檢測細胞增殖[3]。以液體閃爍計數(shù)器測定每分鐘的脈沖數(shù)(counts per minute,CPM)反映細胞內(nèi)DNA的合成。
3.5 流式細胞儀檢測細胞周期及凋亡率參考文獻方法[5],收集培養(yǎng)瓶中的各組平滑肌肌細胞加入5 μL Annexin V-FITC和10 μL 20 mg/L的PI溶液,混勻后于室溫避光孵育15 min(試劑盒購自深圳晶美生物公司)。在反應管中加入400 μL PBS,應用流式細胞儀(Beckman Counter)檢測細胞周期分布及定量分析凋亡細胞百分率。
4 統(tǒng)計學處理
實驗數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示。多組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA)分析,各組兩兩比較用Newman-Keuls檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
1 內(nèi)皮素-1對MLCK表達的的影響
倒置顯微鏡下大鼠PASMCs呈“谷”、“峰”狀生長,特異性兔抗鼠α-actin單克隆抗體免疫熒光鑒定可見排列的束狀肌絲被染成紅色,證明培養(yǎng)細胞為平滑肌細胞,見圖1。在PASMCs內(nèi)MLCK(分子量210 kD)表達變化的定量分析結(jié)果表明,ET-1組與正常對照組比較,MLCK表達顯著上升(P<0.05);而ET-1+M組較ET-1組明顯減少,差異有統(tǒng)計學意義,見圖2。
Figure 1.Identification of the rat PASMCs.A:the typical“hill and valley”appearance;B:α-smooth muscle actin positiveexpression(immunofluorescencestaining,×200).圖1 大鼠肺動脈血管平滑肌細胞的鑒定
Figure 2.The protein expression of MLCK in rat PASMCs determined by Western blotting.Mean±SD.n=4.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs ET-1 group.圖2 各組大鼠PASMCs中MLCK蛋白表達的比較
2 抑制MLCK對MLC磷酸化的影響
用ET-1刺激PASMCs后,PASMCs的MLC磷酸化水平明顯升高(P<0.01),ML-7預處理可拮抗ET-1升高MLC磷酸化水平的作用(P<0.01),見圖3。
3 MLCK抑制對ET-1刺激的PASMCs增殖的影響
ET-1組與正常對照組相比增殖活性有顯著性差異(P<0.05),提示ET-1可以使PASMCs增殖能力增強;而予MLCK抑制劑ML-7預處理后相對ET-1組,增殖活性顯著降低(P<0.05)。提示MLCK抑制后,ET-1刺激的PASMCs增殖反應受到明顯抑制,見表1。
Figure 3.The influence of MLCK inhibition on MLC phosphorylation in rat PASMCs.Mean±SD.n=4.**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs ET-1 group.圖3 抑制MLC對大鼠PASMCs的MLCK磷酸化的影響
表1 抑制MLCK活性對對ET-1刺激PASMCs增殖反應的影響Table 1.The effect of inhibiting myosin light chain kinase on the proliferation of ET-1-induced PASMCs(Mean±SD.n=5)
4 MLCK抑制對ET-1刺激PASMCs后細胞周期的影響
相對正常對照組,ET-1刺激可使G0/G1期(靜止期)細胞比例顯著降低,S+G2/M期(DNA合成期+有絲分裂期)細胞比例顯著增加(均P<0.05),提示ET-1可促進PASMCs有絲分裂進入增殖期,而ET-1+M組與對照組比較無明顯差異(P>0.05)。提示抑制MLCK信號途徑能抑制ET-1導致的PASMCs增殖,見圖4、表2。
5 MLCK抑制對ET-1介導的PASMCs凋亡的影響
流式細胞術(shù)檢測可見,與對照組比較,ET-1刺激后PASMCs凋亡率顯著下降(P<0.05);而ET-1+M組的細胞凋亡率相對ET-1組升高(P<0.01),見圖5。
Figure 4.Flow Cytometry analysis of PASMCs.圖4 增殖流式細胞圖
表2 MLCK抑制對ET-1刺激PASMCs后細胞周期的影響Table 2.The effect of inhibiting myosin light chain kinase on the stimulation with ET-1(Mean±SD.n=5)
Figure 5.The flow cytometry analysis scatterplot of the PASMCs with Annexin V-FITC/PI double staining.Mean±SD.n=5.*P<0.05 vs control group;##P<0.01 vs ET-1 group.圖5 流式細胞術(shù)檢測PASMCs的Annexin V-FITC/PI檢測結(jié)果
肺動脈高壓中肺血管平滑肌的收縮及重構(gòu)是其中心環(huán)節(jié),在平滑肌的收縮過程中,MLC磷酸化水平是決定肌肉收縮程度及一系列細胞反應的一個重要因素,Ca2+依賴性的MLC磷酸化對組織細胞的收縮、移動非常重要。有充分的證據(jù)表明,MLC除磷酸化發(fā)揮收縮效應外,還介導了一系列細胞生物學反應如遷移、增殖、凋亡等[6]。另外有研究通過基因干擾比較MLCK和血小板衍生生長因子(platelet derived growth factor,PDGF)對MLC的作用,證實了MLCK在血管平滑肌MLC磷酸化中的核心地位,還發(fā)現(xiàn)MLCK的活化促進了平滑肌的遷移[7]。目前的綜述也闡明了Ca2+依賴途徑的MLCK通過對MLC磷酸化的平衡調(diào)節(jié),誘導血管平滑肌的舒縮,對各種微血管功能障礙性疾病如缺血-再灌注損傷、動脈粥樣硬化及糖尿病等的內(nèi)皮功能調(diào)節(jié)起了重要的作用,該途徑中心是MLCK[8]。最新的國內(nèi)文獻[9]通過采用慢病毒轉(zhuǎn)染方式上調(diào)或下調(diào)大鼠肺血管平滑肌細胞表達MLCK水平,發(fā)現(xiàn)MLCK促進肺血管平滑肌細胞增殖,可能是通過促進內(nèi)皮素受體實現(xiàn),支持MLCK對血管平滑肌增殖的調(diào)節(jié)作用。然而,盡管MLCK在平滑肌收縮研究中已得到充分研究,但其在平滑肌增殖及凋亡中的作用至今仍尚少見報導。
本實驗通過觀察ET-1對大鼠肺動脈平滑肌的影響,首先發(fā)現(xiàn)ET-1刺激肺動脈平滑肌細胞后MLCK蛋白表達顯著增強,MLC磷酸化上調(diào),通過MTT法及[3H]-TdR摻入法證明PASMCs增殖顯著;而我們已知細胞周期進程中G1期向S期轉(zhuǎn)化是細胞增殖調(diào)控的重要節(jié)點,一旦細胞越過G1晚期,則不可逆地進入細胞周期并進行DNA復制[10],本研究進一步通過流式細胞儀檢測了細胞周期及凋亡率,發(fā)現(xiàn)ET-1抑制了PASMCs凋亡,與以往研究基本相符[11]。研究發(fā)現(xiàn)缺氧增加ET-1等細胞因子活性,而ET-1可激活血管平滑肌RhoA[12],故推測MLC磷酸化非Ca2+依賴的Rho/Rho激酶信號通過調(diào)節(jié)肺血管對ET等的反應引起肺血管重構(gòu)。有實驗也證實慢性缺氧PAH大鼠肺動脈環(huán)對ET的收縮反應是依賴Rho/Rho激酶和酪氨酸激酶而非PKC信號通路[13]。但在肺動脈高壓PASMCs重構(gòu)進程中ET-1與MLCK的關(guān)系缺乏研究,本研究從細胞層面證實了ET-1也通過MLCK信號途徑起作用。MLCK途徑是一個Ca2+→CaM→MLCK→MLC的調(diào)節(jié)環(huán)節(jié),該途徑的中心環(huán)節(jié)是MLCK,CaM與Ca2+結(jié)合后,能激活MLCK,導致MLC第19位絲氨酸磷酸化,進而肌球蛋白ATP酶活化,平滑肌收縮。Ca2+濃度下降使MLCK失活,MLCP使19位絲氨酸脫磷酸化,ATP酶失活,平滑肌舒張[14]。本研究證實在肺動脈平滑肌重構(gòu)中Ca2+依賴途徑的MLCK也起了重要作用,發(fā)現(xiàn)在細胞和分子水平,抑制MLCK信號途徑后,MLC磷酸化程度顯著下降同時,也抑制了ET-1誘導的PASMCs增殖,同時促進PASMCs凋亡。
可見通過對MLCK的抑制,能調(diào)節(jié)PASMCs的細胞周期及凋亡率,逆轉(zhuǎn)了ET-1刺激對大鼠肺動脈平滑肌細胞增殖與凋亡失衡的影響,提示MLCK在肺動脈高壓肺血管重構(gòu)過程中可能發(fā)揮了重要作用,可望成為肺動脈高壓基因治療的新靶點。
[參考文獻]
[1]Wei B,Du JB,Qi JG,et al.L-Arginine impacts pulmonary vascular structure in rats with an aortocaval shunt[J].J Surg Res,2002,108(1):20-31.
[2]Jacobs A,Preston IR,Gomberg-Maitland M.Endothelin receptor antagonism in pulmonary arterial hypertension-a role for selective ET(A)inhibition?[J].Curr Med Res Opin,2006,22(12):2567-2574.
[3]胡紅玲,汪濤,張珍祥,等.Diazoxide缺氧大鼠肺動脈平滑肌細胞內(nèi)氧自由基的變化及細胞增殖的作用[J].中國病理生理雜志,2007,23(10):2002-2006.
[4]Li S,Tanaka H,Wang HH,et al.Intracellular signal transduction for migration and actin remodeling in vascular smoothmusclecellsaftersphingosylphosphorylcholine stimulation[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2006,291(3):H1262-H1272.
[5]吳強,楊永曜,李隆貴,等.非諾貝特和吡格列酮對血管緊張素Ⅱ介導的心肌細胞肥大和凋亡的干預作用[J].中華高血壓雜志,2007,15(3):233-237.
[6]Kamm E,Stull JT.Dedicated myosin light chain kinases with diverse cellular functions[J].J Biol Chem,2001,276(7):4527-4530.
[7]Kohama K.Targeting of myosin light chain kinase in smooth muscle cell[J].Nippon Yakurigaku Zasshi,1999,114(Suppl 1):71-74.
[8]Shen Q,Rigor RR,Pivetti CD,et al.Myosin light chain kinase in microvascular endothelial barrier function[J].Cardiovasc Res,2010,87(2):272-280.
[9]李德來,鄧為民,李宏釗.肌球蛋白輕鏈激酶對大鼠平滑肌細胞增殖的影響[J].中國老年學雜志,2014,7 (34):3952-3953.
[10]Coleman ML,Marshall CJ,Olson MF.RAS and RHO GTPases in G1-phase cell-cycle regulation[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2004,5(5):355-366.
[11]Jankov RP,Kantores C,Belcastro R,et al.Endothelin-1 inhibits apoptosis of pulmonary arterial smooth muscle in the neonatal rat[J].Pediatr Res,2006,60(3): 245-251.
[12]Sakurada S,Okamoto H,Takuwa N,et al.Rho activation in excitatory agonist-stimulated vascular smooth muscle[J].Am J Physiol Cell Physiol,2001,281(2):C571-C578.
[13]Eigand L,Sylvester JT,Shimoda LA.Mechanisms of endothelin-1-induced contraction in pulmonary arteries from chronically hypoxic rats[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2006,290(2):L284-L290.
[14]Kuhr FK,Smith KA,Song MY,et al.New mechanisms of pulmonary arterial hypertension:role of Ca2+signaling[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2012,302(8): H15466-H1562.
Effects of inhibiting myosin light chain kinase on endothelin-1 induced proliferation and apoptosis of pulmonary arterial smooth muscle cells in rats
YANG Yong-yao,YANG Tian-h(huán)e,JIANG Qing-an,YANG Long,TANG Feng,TAN Hong-wen
(Department of Cardiology,Guizhou Provincial People’s Hospital,Guiyang 550002,China.E-mail:yangyy19@hotmail.com)
AIM:To investigate the effect of inhibiting myosin light chain kinase(MLCK)on endothelin-1 (ET-1)induced proliferation and apoptosis of rat pulmonary artery smooth muscle cells(PASMCs).METHODS:Rat PASMCs were cultured and stimulated with ET-1.The cells were randomly divided into control group,ET-1 group and ET-1+MLCK inhibitor group(ET-1+M).Western blotting,MTT assay,[3H]-TdR incorporation and flow cytometry were employed to test the expression of myosin light chain(MLC)and MLCK,cell proliferation,cell cycle and apoptotic rate of PASMCs,respectively.The phosphorylation of MLC was determined by glycerol-PAGE coupled with Western blotting.RESULTS:Compared with control group,the protein expression of MLCK and MLC phosphorylation significantly enhanced after ET-1 stimulation.ET-1 markedly induced the proliferation and decreased the percentage of apoptotic rate in the PASMCs.However,pretreatment with ML-7,a MLCK inhibitor,significantly reversed the above effects induced by ET-1.CONCLUSION:MLCK inhibitor effectively inhibits the ET-1-induced proliferation and the cell cycle progression.
Myosin light chain kinase;Endothelin-1;Pulmonary artery smooth muscle cells;Cell proliferation;Apoptosis
R363;R393
A
10.3969/j.issn.1000-4718.2015.02.012
1000-4718(2015)02-256-05
2014-08-26
2014-10-28
貴州省科技攻關(guān)項目(黔科合SY字[2008]3065號);貴州省優(yōu)秀科技教育人才省長資金(黔省專合字[2009]
33號)
△通訊作者Tel:0851-5922979;E-mail:yangyy19@hotmail.com