高玉榮,徐國棟,李大鵬,王洪江,張麗媛,劉偉,盧旭華
(1.黑龍江八一農(nóng)墾大學食品學院,大慶 163319;2.黑龍江農(nóng)墾寶泉嶺香其醬業(yè)有限公司)
豆豉是以黑豆或大豆為材料,經(jīng)過微生物發(fā)酵而成的一種具有傳統(tǒng)歷史的發(fā)酵食品[1]。豆豉不僅可以用于烹調(diào),也可替代菜供人們食用[2]。依據(jù)豆豉制曲工藝中所使用微生物的不同,豆豉可分為毛霉、根霉、曲霉和細菌型豆豉[3]。
豆豉的發(fā)酵過程是利用在制曲過程中由微生物代謝產(chǎn)生的蛋白酶等酶系分解大豆中的蛋白質(zhì)、淀粉、結(jié)合態(tài)異黃酮等物質(zhì),生成氨基酸、糖和游離態(tài)異黃酮等,再經(jīng)過一些生化反應,從而使豆豉具有獨特的風味和營養(yǎng)[4-5]。但目前傳統(tǒng)工藝制得的豆豉中游離態(tài)異黃酮含量很低,主要是以與糖苷結(jié)合態(tài)形式存在[6-8]。通過糖苷酶可將結(jié)合態(tài)的異黃酮水解成的游離態(tài)的異黃酮苷元小物質(zhì),游離態(tài)異黃酮在預防癌癥、預防骨質(zhì)疏松、預防心血管疾病等方面具有較好效果[9]。
為了制備富含游離態(tài)異黃酮的豆豉,實驗以前期篩選的高產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的菌株為制曲菌種,以蛋白酶活力與β-葡萄糖苷酶活力為指標,通過單因素和響應面法進行豆豉制曲工藝優(yōu)化,以期為富含游離異黃酮的功能性豆豉的工業(yè)化生產(chǎn)提供理論參考與數(shù)據(jù)支持。
曲霉:D30,自行篩選獲得,β-葡萄糖苷酶酶活達到257.621 U·L-1,黑龍江八一農(nóng)墾大學食品學院實驗保藏。
黃豆為市售;Folin-酚試劑,上海三杰生物技術(shù)有限公司;pNPG,北京諾博萊德科技有限公司,均為分析純。
722S型可見分光光度計,沈陽市博騰儀器設(shè)備有限公司;BSA224S型電子分析天平,德國賽多利斯公司;XFH-50MA型電熱式壓力蒸汽滅菌鍋,深圳市鼎鑫宜實驗設(shè)備有限公司;HH-S4型電熱恒溫水浴鍋,常州市萬合儀器制造有限公司。
選擇顆粒飽滿均勻、無蟲蝕的新鮮大豆,加入大豆質(zhì)量2倍的水,25℃浸泡8 h。121℃蒸煮35min,冷卻至35℃進行制曲[10]。以蛋白酶和β-葡萄糖苷酶活力為指標,采用單因素實驗研究接種量、制曲溫度、制曲時間對制曲的影響。每個處理重復3次,取平均值。
在單因素實驗基礎(chǔ)上,以蛋白酶和β-葡萄糖苷酶酶活性為指標,進行三元二次回歸正交旋轉(zhuǎn)組合實驗設(shè)計,數(shù)據(jù)用Design-Expert 8.0.6軟件處理,確定最優(yōu)制曲工藝參數(shù)。
蛋白酶活力測定:采用Folin-酚法[11]。β-葡萄糖苷酶活力測定:采用比色法[12]。
豆豉制曲的目的主要是產(chǎn)生大量的蛋白酶,在發(fā)酵過程中可將大豆中的蛋白質(zhì)水解成氨基酸。為了制備富含游離異黃酮的豆豉,豆曲中不僅要含有較高的蛋白酶活性,而且要含有較高的β-葡萄糖苷酶的活性[13]。因此,實驗以蛋白酶活力和β-葡萄糖苷酶活力為指標,進行富含游離異黃酮豆豉的制曲工藝研究。
3.1.1 接種量對制曲工藝的影響
每克冷卻的黃豆分別接種 104、105、106、107、108個孢子,28℃培養(yǎng)3 d,測定蛋白酶活力和β-葡萄糖苷酶活力,實驗結(jié)果如圖1所示。
圖1 接種量對酶活力的影響Fig.1 Effects of inoculation amount on enzyme activity注:a~e代表不同接種量對蛋白酶活性的差異顯著性,v~z代表不同接種量對β-葡萄糖苷酶活性的差異顯著性,字母不同表示差異顯著(P<0.05),字母相同表示差異不顯著(P>0.05)。
從圖1可以看出,在104~106個孢子·g-1黃豆范圍內(nèi),接種量對蛋白酶活力和β-葡萄糖苷酶活力影響顯著(P<0.05)。隨著接種量的增加,酶活呈先升高后下降的趨勢,這是因為當接種量過大時,菌種生長消耗了大量的營養(yǎng)物質(zhì),影響了代謝產(chǎn)物的產(chǎn)生,導致酶活力降低,因此單因素確定適宜的接種量為106個孢子·g-1黃豆。
3.1.2 溫度對制曲工藝的影響
每克冷卻的黃豆接種106個孢子,分別在24、28、32、36、40℃下培養(yǎng)3 d,測定蛋白酶和β-葡萄糖苷酶活力,實驗結(jié)果如圖2所示。
圖2 制曲溫度對酶活力的影響Fig.2 Effects of koji-making temperature on enzyme activity注:a~c代表不同的制曲溫度對蛋白酶活性的差異顯著性,x~z代表不同制曲溫度對β-葡萄糖苷酶的差異顯著性,字母不同表示差異顯著(P<0.05),字母相同表示差異不顯著(P>0.05)。
從圖2可以看出,在實驗選取的溫度范圍內(nèi),溫度對蛋白酶活力和β-葡萄糖苷酶活力影響顯著(P<0.05)。蛋白酶活力最大的溫度為28℃,β-葡萄糖苷酶活力最大的溫度為32℃,因此,單因素實驗確定的制曲溫度范圍為28~32℃。
3.1.3 時間對制曲工藝的影響
每克冷卻的黃豆接種106個孢子,在28℃下分別培養(yǎng)1、2、3、4、5 d,測定蛋白酶和β-葡萄糖苷酶活力,實驗結(jié)果如圖3所示。
圖3 制曲時間對酶活力的影響Fig.3 Effects of koji-making time on enzyme activity注:a~c代表不同制曲時間對蛋白酶活性的差異顯著性,x~z代表不同制曲溫度對β-葡萄糖苷酶的差異顯著性,字母不同表示差異顯著(P<0.05),字母相同表示差異不顯著(P>0.05)。
從圖3可以看出,制曲時間對蛋白酶活力和β-葡萄糖苷酶活力的影響顯著(P<0.05)。在1~3 d范圍內(nèi),隨著時間的延長,酶活性逐漸升高,當制曲時間大于3 d,兩種酶活力開始下降。這是由于制曲后期,曲霉生長進入衰亡期,代謝能力減慢,并有一部分酶發(fā)揮酶解作用,從而使曲中總酶含量減少。因此根據(jù)單因素確定適宜的制曲時間為3 d。
在單因素實驗的基礎(chǔ)上,選擇接種量、制曲溫度、制曲時間作為自變量,以蛋白酶活力和β-葡萄糖苷酶活力作為指標,進行二元三次旋轉(zhuǎn)組合實驗,因素編碼及實驗結(jié)果見表1和表2[14]。
采用Design-Expert 8.0.6對實驗數(shù)據(jù)進行回歸分析,得到蛋白酶活性(y1)、β-葡萄糖苷酶活性(y2)與接種量(x1)、制曲溫度(x2)和制曲時間(x3)編碼值的二次回歸方程如下:
表1 因素水平編碼Table 1 Coding table of factor level
表2 響應面實驗設(shè)計及結(jié)果Table 2 Experimental design and results of response surface
續(xù)表2 響應面實驗設(shè)計及結(jié)果Continued table 2 Experimental design and results of response surface
蛋白酶活性模型的決定系數(shù)R2=0.919 4,校正R2=0.863 6,β-葡萄糖苷酶活性模型的決定系數(shù)R2= 0.930 5,校正R2=0.882 4。
表3 蛋白酶活性方差分析Table 3 Variance analysis of protease activity
表4 β-葡萄糖苷酶活性方差分析Table 4 Variance analysis ofβ-glucosidase activity
由表3和表4可以看出蛋白酶活性模型的F值為16.48,P<0.000 1,模型極顯著,失擬項的P值為0.579 8,大于0.05,說明該模型擬合程度較好,可用此模型對制曲工藝條件進行優(yōu)化。影響蛋白酶酶活力的因素主次順序依次為:制曲時間>制曲溫度>接種量。
β-葡萄糖苷酶活性模型的F值為19.35,對應的P<0.000 1,說明模型極顯著,失擬項的P值為0.551 7,大于0.05,說明該模型擬合程度較好,可用此模型對制曲工藝條件進行優(yōu)化。影響β-葡萄糖苷酶活力因素主次順序依次為:制曲溫度>接種量>制曲時間。
為了得到最佳的制曲條件,分析蛋白酶和β-葡萄糖苷酶模型,進入 Design-Expert軟件,選擇Numerical選項,在Criteria選項下,將兩種酶活性設(shè)置為maximize,得到最優(yōu)的蛋白酶和β-葡萄糖苷酶活力的制曲條件:接種量為105.36個孢子·g-1大豆、制曲溫度為26.48℃、制曲時間為4 d,理論的蛋白酶酶活力為 638.44 U·g-1,β-葡萄糖苷酶活力254.10 U·g-1。
根據(jù)優(yōu)化的結(jié)果,取最佳制曲條件為接種量105.4(約為2.5×105)個孢子·g-1大豆,制曲溫度26.5℃,制曲時間4 d,進行三次驗證實驗,實驗結(jié)果見表5。
表5 驗證實驗結(jié)果Table 5 Results of test plans
由表5可以看出,在最佳的制曲條件下,豆曲中蛋白酶和β-葡萄糖苷酶活力分別為623.17 U·g-1和245.24 U·g-1。
(1)接種量、發(fā)酵溫度和發(fā)酵時間對豆曲中蛋白酶和β-葡萄糖苷酶的活力影響顯著(P<0.05)。
(2)采用三元二次正交旋轉(zhuǎn)組合實驗設(shè)計對制曲工藝進行優(yōu)化,確定最佳的制曲工藝條件為接種量105.4個孢子·g-1大豆、制曲溫度26.5℃、制曲時間4 d,在此條件下,β-葡萄糖苷酶酶活力為245.24 U·g-1,蛋白酶酶活力為623.17 U·g-1,為富含游離態(tài)異黃酮豆豉的制備奠定了基礎(chǔ)。
[1]林曉華.曲霉型豆豉的發(fā)酵條件及揮發(fā)性成分的研究[D].南昌:南昌大學,2013.
[2]陳廷濤.發(fā)酵乳和豆豉中微生物菌群DGGE分析及益生作用研究[D].南昌:南昌大學,2013.
[3]蔣立文.發(fā)酵豆豉的研究進展[J].食品安全質(zhì)量檢測學報,2013,4(6):1803-1809.
[4]孫森,宋俊梅,曲靜然.豆豉后發(fā)酵過程中微生物菌相的變化[J].中國食品添加劑,2008,87(2):139-143.
[5]張建華.曲霉型豆豉發(fā)酵機理及其功能性的研究[D].北京:中國農(nóng)業(yè)大學,2003.
[6]錢麗麗,左鋒,唐彥軍.大豆異黃酮提取方法的研究進展[J].黑龍江八一農(nóng)墾大學學報,2006,18(5):64-67.
[7]劉錦繡.豆豉混菌發(fā)酵及其功能成分的研究[D].泰安:山東農(nóng)業(yè)大學,2013.
[8]齊斌,劉賢金.產(chǎn)大豆異黃酮β-葡萄糖苷酶菌株的篩選及酶學性質(zhì)研究[J].食品科學,2007,28(8):290-293.
[9]李寧.影響大豆異黃酮抗氧化活性的物理因素及其生物學功效的研究[D].哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學,2008.
[10]劉勤華,馬漢軍.香辛料對醬鴨醬制工藝的影響究[J].河南科技學院學報:自然科學版,2014,42(1):12-15.
[11]繆素娜,鄧少雅,譚麗賢,等.一種測定醬油曲中蛋白酶活力方法研究[J].中國釀造,2014,33(2):37-41.
[12]劉穎,劉婧美,王佳瑞,等.傳統(tǒng)發(fā)酵豆醬高β-葡萄糖苷酶活力制曲工藝研究[J].食品與機械,2009,134(6):134-137.
[13]劉婧美.富含大豆異黃酮苷元營養(yǎng)型豆醬生產(chǎn)工藝研究[D].哈爾濱:哈爾濱商業(yè)大學,2010.
[14]楊麗娟,陸海燕,貝麗霞,等.響應面法優(yōu)化副干酪乳桿菌增菌培養(yǎng)基[J].黑龍江八一農(nóng)墾大學學報,2013,25(1):1-6.