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        茯苓皮藥材的HPLC指紋圖譜研究Δ

        2015-03-10 02:33:56謝昭明劉塔斯鄧富民舒志芬劉金香冉玲菊李如意湖南中醫(yī)藥大學(xué)湖南省中藥粉體與創(chuàng)新藥物省部共建國家重點實驗室培育基地長沙40208湖南省中醫(yī)藥研究院中藥研究所長沙4003
        中國藥房 2015年15期
        關(guān)鍵詞:茯苓乙腈指紋

        宋 瀟,謝昭明,黃 丹,劉塔斯,鄧富民,舒志芬,劉金香,冉玲菊,李如意(.湖南中醫(yī)藥大學(xué)/湖南省中藥粉體與創(chuàng)新藥物省部共建國家重點實驗室培育基地,長沙 40208;2.湖南省中醫(yī)藥研究院中藥研究所,長沙 4003)

        茯苓皮為多孔菌科真菌茯苓Poria cocos(Schw.)Wolf干燥菌核的黑色外皮,性平,味甘、淡[1]。其具有利水消腫的作用,主要用于治療小便不利、水腫[2]。茯苓野生資源很少、不易發(fā)現(xiàn)和采挖,全國雖有近20個省栽培茯苓,但茯苓主要產(chǎn)于安徽、湖北、湖南、云南、貴州等地[3]。隨著《中藥材生產(chǎn)質(zhì)量管理規(guī)范(試行)》(GAP)的實施和推廣,茯苓皮藥材質(zhì)量與產(chǎn)地相關(guān)性的研究意義逐漸突出。中藥指紋圖譜為新興的中藥質(zhì)量研究可行性手段之一[4]。本文對全國茯苓栽培產(chǎn)地的18批茯苓皮藥材進(jìn)行了高效液相色譜(HPLC)指紋圖譜方法學(xué)研究,以期通過建立茯苓皮藥材HPLC指紋圖譜的質(zhì)量評價方法,為茯苓皮藥材質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)建立和GAP種植提供科學(xué)依據(jù)。

        1 材料

        1260型HPLC儀,包括二極管陣列(DAD)檢測器、在線真空脫氣機(jī)、四元梯度泵、柱溫箱(美國Agilent公司);色譜數(shù)據(jù)的采集與處理由Agilent化學(xué)工作站完成;KQ2200B型超聲波清洗儀(昆山市超聲儀器有限公司)。

        茯苓酸A對照品(成都克洛瑪有限公司,批號:140213);甲醇、磷酸、乙腈(色譜純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司),水為超純水。

        本試驗所用茯苓皮藥材經(jīng)湖南省中醫(yī)藥研究院中藥研究所謝昭明研究員鑒定為多孔菌科真菌茯苓Poria cocos(Schw.)Wolf干燥菌核的黑色外皮,共18批。18批茯苓皮藥材來源見表1。

        表1 18批茯苓皮樣品來源Tab 1 Origins of 18 batches of Cortex Poriae samples

        2 方法與結(jié)果

        2.1 色譜條件

        色譜柱:Hypersil ODS C18(200 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:乙腈(A)-0.1%磷酸水(B),梯度洗脫(0~25 min,40%~48%A;25~40 min,48%A;40~50 min,48%~75%A;50~76 min,75%~90%A;76~80 min,90%~100%A);檢測波長:210 nm;柱溫:35 ℃;流速:1.0 ml/min;進(jìn)樣量:20 μl;記錄時間:85 min。

        2.2 對照品溶液的制備

        精密稱取茯苓酸A對照品6.7 mg,置于50 mg量瓶中,加流動相[乙腈-0.1%磷酸水(70∶30,V/V)]溶解并稀釋至刻度。

        2.3 供試品溶液的制備

        取茯苓皮藥材粉末(過80目篩)約1 g,精密稱定,置于具塞錐形瓶中,加入50 ml甲醇,稱定質(zhì)量,超聲(功率:100 W,頻率:40 kHz)處理20 min,冷卻,補(bǔ)足損失的甲醇量,過濾,取續(xù)濾液,用微孔濾膜(0.45 μm)濾過,即得。

        2.4 方法學(xué)考察

        2.4.1 精密度試驗 取同一供試品溶液,按“2.1”項下色譜條件連續(xù)進(jìn)樣6次,記錄色譜圖。結(jié)果,各共有峰相對保留時間和相對峰面積的RSD均<3.0%,表明方法精密度良好。

        2.4.2 穩(wěn)定性試驗 取同一供試品溶液,分別于放置0、2、4、6、8、12 h時按“2.1”項下色譜條件進(jìn)樣測定,記錄色譜圖。結(jié)果,各共有峰相對保留時間和相對峰面積的RSD均<3.0%,表明供試品溶液在12 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

        2.4.3 重復(fù)性試驗 取同一批茯苓皮藥材粉末(過80目篩)6份,按“2.2”項下方法制備供試品溶液,按“2.1”項下色譜條件進(jìn)樣,記錄色譜圖。結(jié)果,各共有峰相對保留時間和相對峰面積的RSD均<3.0%,表明本方法重復(fù)性較好。

        2.5 茯苓皮HPLC指紋圖譜的建立

        2.5.1 指紋圖譜的建立及共有峰的標(biāo)定 根據(jù)18個產(chǎn)地茯苓皮藥材供試品溶液HPLC圖提供的相關(guān)參數(shù),建立茯苓皮藥材三萜類成分的HPLC指紋圖譜(圖1)。比較18批茯苓皮樣品的色譜圖,確定了16個共有峰。其中7號峰峰面積較大,經(jīng)對照品比對歸屬為茯苓酸A,且在不同批次樣品中均穩(wěn)定存在,故選其為參照峰,其他各共有峰的相對保留時間和相對峰面積均通過7號峰比對獲得。結(jié)果顯示,各個共有峰的相對保留時間的RSD均<3.0%,但各個共有峰的相對峰面積的RSD有很大差異,以峰1、5、8、15、16所代表成分最為明顯,說明這5個色譜峰所代表的成分在各藥材樣品中的量存在很大差異(圖2)。

        圖1 18批茯苓皮藥材的HPLC指紋圖譜Fig 1 HPLC fingerprint of 18 batches of Cortex Poriae

        2.5.2 相似度評價 首先對18批茯苓皮樣品進(jìn)行系統(tǒng)聚類分析,應(yīng)用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件,采用組間均聯(lián)法(Between group linkage),以夾角余弦(Consine)作為樣品的分類依據(jù)。18批樣品可分為兩類,樣品3、6、9、14批為一類;樣品1、2、4、5、7、8、10、11、12、13、15、16、17、18批為另一類,聚類分析結(jié)果見圖3。

        圖2 18批茯苓皮藥材共有峰的HPLC指紋圖譜Fig 2 HPLC chromatogram of 18 batches of Cortex Poriae common peak

        圖3 18批茯苓皮藥材的聚類分析圖Fig 3 Cluster analysis of 18 batches of Cortex Poria

        采用國家藥典委員會頒布的《中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統(tǒng)》(2004版)對所得的色譜數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,通過多點校正的方法對色譜峰進(jìn)行自動匹配生成樣品的色譜指紋圖譜共有模式,以第7批藥材圖譜作為參照圖譜,進(jìn)行相似度計算,結(jié)果見表2。結(jié)果,3、6、9、14批樣品相似度小于0.95,其余樣品相似度均在0.95以上。此結(jié)果與系統(tǒng)聚類分析結(jié)果一致,2種方法得到了相互驗證,因此可以認(rèn)為相似度在0.95以上的為推薦品,0.95以下的為非推薦品。

        表2 18批茯苓藥材的相似度評價結(jié)果Tab 2 Results of similarity evaluation of 18 batches of Cortex Poriae

        3 討論

        3.1 提取溶劑和方法的考察

        對提取溶劑甲醇、無水乙醇、乙酸乙酯進(jìn)行考察,以甲醇提取的樣品色譜峰個數(shù)較多、峰面積較大,故提取溶劑選擇甲醇。筆者對超聲提取法和加熱回流提取法進(jìn)行比較,2種提取方法提取效率相當(dāng),考慮到超聲提取法操作較簡便,故提取方法選擇超聲提取法;同時又對不同的提取時間(10、20、30、40 min)進(jìn)行考察,20 min及以后的提取效率基本一致,故選擇超聲時間為20 min。故確定提取方法為甲醇超聲20 min。

        3.2 色譜條件的考察

        筆者分別考察了甲醇-水、乙腈-水、甲醇-水-磷酸、乙腈-水-磷酸4個流動相系統(tǒng),結(jié)果表明采用乙腈-水-磷酸流動相系統(tǒng)時,各峰的分離度較好,且基線平穩(wěn),有利于指紋圖譜的分析,因此確定乙腈-水-磷酸作為本研究的流動相[5]。隨后又分別考察了25、30、35 ℃3個檢測柱溫,結(jié)果表明色譜柱檢測溫度在35 ℃時,分離度最好、峰形較好。故選擇柱溫為35 ℃條件下進(jìn)行茯苓皮藥材HPLC指紋圖譜檢測。

        3.3 檢測波長的選擇

        使用DAD檢測器進(jìn)行紫外區(qū)全波長掃描,在210 nm波長下,色譜圖基線噪音較低,特征峰響應(yīng)較高,色譜峰信息較完全。綜合比較后,選擇210 nm作為本研究的檢測波長。

        綜上所述,本試驗建立了茯苓皮藥材的HPLC指紋圖譜,并采用不同分析方式將18批茯苓皮藥材分為兩大類[6]。雖然上述兩大類茯苓皮HPLC指紋圖譜十分相似,但3、6、9、14批茯苓皮樣品的各成分質(zhì)量分?jǐn)?shù)低于其他批號茯苓皮樣品,表明3、6、9、14批茯苓皮樣品質(zhì)量次于其他批號的茯苓皮樣品。由此提示茯苓皮藥材的質(zhì)量與土壤類型、蓋土厚度、海拔、緯度、氣候條件、菌種、種植方法等密切相關(guān),其具體原因有待進(jìn)一步研究。

        [1]國家藥典委員會.中華人民共和國藥典:一部[S].2010年版.北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:224.

        [2]張怡莎,陳華國,周欣,等.不同產(chǎn)地茯苓及茯苓皮中多糖成分的研究[J].貴州師范大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2010,28(3):101.

        [3]於小波,昝俊峰,王金波,等.我國茯苓藥材主要產(chǎn)區(qū)資源調(diào)查[J].時珍國醫(yī)國藥,2011,22(3):714.

        [4]張琦,王振中,蕭偉,等.茯苓UPLC特征指紋圖譜[J].中國中藥雜志,2012,37(7):966.

        [5]曾超,陸東,段偉昌,等.肉桂配方顆粒的HPLC指紋圖譜研究[J].中國藥房,2014,25(7):635.

        [6]陳蓉,沈蓓,吳啟南.基于主成分分析和聚類判別模式對不同產(chǎn)地芡實HPLC指紋圖譜研究[J].中成藥,2012,34(5):781.

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