亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        海濱濱麥葉片和根對不同厚度沙埋的生理響應(yīng)差異分析

        2015-01-20 07:16:10周瑞蓮趙彥宏楊潤亞左進城候月立周彬彬
        生態(tài)學(xué)報 2015年21期
        關(guān)鍵詞:脯氨酸可溶性自由基

        周瑞蓮,趙彥宏,楊潤亞,左進城,候月立,周彬彬

        魯東大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院, 煙臺 264025

        海濱濱麥葉片和根對不同厚度沙埋的生理響應(yīng)差異分析

        周瑞蓮*,趙彥宏,楊潤亞,左進城,候月立,周彬彬

        魯東大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院, 煙臺 264025

        以煙臺海岸抗風(fēng)沙植物濱麥為研究材料,通過對不同厚度沙埋下其葉片和根部抗氧化酶活力(超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、 過氧化氫酶(CAT))、丙二醛(MDA)含量和滲透調(diào)節(jié)物含量變化的分析,探討了葉片和根部對沙埋生理響應(yīng)的差異。 試驗按濱麥成株株高(約40 cm)對其進行了輕度沙埋(在株高1/4 處)、中度沙埋(2/4 處)和重度沙埋(3/4 處)。在沙埋第6天,分別測定了不同厚度沙埋處理下,植株各段葉片和根抗氧化酶活力、MDA和滲透調(diào)節(jié)物含量。結(jié)果表明,輕度和中度沙埋均加速植株生長。與對照相比,經(jīng)輕度、中度沙埋處理6 d,葉片平均MDA含量增加,在重度沙埋下降低。不同厚度沙埋6 d, 葉片平均SOD活力和脯氨酸含量增加, 而CAT活力、可溶性糖和可溶性蛋白質(zhì)含量下降。 但不同厚度沙埋均使沙上葉片MDA、脯氨酸、可溶性蛋白質(zhì)含量和SOD和CAT活力增加,尤其是葉片頂部增加最為明顯,使沙下葉片MDA、可溶性糖、可溶性蛋白質(zhì)含量和CAT活力下降,導(dǎo)致同株沙上和沙下葉片MDA、脯氨酸、可溶性糖、可溶性蛋白質(zhì)含量和SOD和CAT活力差異顯著(P<0.05)。與葉片相比,根中MDA、可溶性蛋白質(zhì)含量和SOD和CAT活力較低, 而POD活力和可溶性糖含量較高并與葉片差異顯著(P<0.05)。不同厚度沙埋6 d,濱麥根中MDA和可溶性蛋白質(zhì)含量變化較小,可溶性糖含量和CAT、POD、SOD活力略有降低。研究表明,濱麥根和葉片對不同厚度沙埋的生理響應(yīng)不同。沙埋直接作用于葉片并誘發(fā)葉內(nèi)氧自由基積累,但葉片通過快速激活的抗氧化酶保護系統(tǒng)(CAT、SOD)維持氧自由基代謝平衡,以及滲透調(diào)節(jié)物(脯氨酸、可溶性糖)的積累維護細胞水分代謝平衡,并滿足能量的需求和快速生長。但在不同厚度沙埋下,由于根系不受沙埋直接影響而生理變化較小,并且還維持較低的膜脂過氧化水平,這可能是根能維持正常的吸水輸水功能并在沙埋處理過程中和沙埋后地上葉片快速生長擺脫沙埋的重要物質(zhì)基礎(chǔ)。

        濱麥;海濱;葉片和根;沙埋;生理響應(yīng)

        生于海岸沙地的濱麥(Leymusmollis(Trin.) Hara)具有強大的根系是水土保持和固沙植物,在防沙固沙和生態(tài)小環(huán)境的改善中發(fā)揮著不可替代的作用[1]。同時,由于濱麥是大麥亞族賴草屬(Leymus), 具有抗病、耐鹽堿性,是小麥遺傳改良中具有重要利用價值的野生親緣物種之一[1- 4]。為了將濱麥的抗性性狀應(yīng)用在育種上,人們研究了濱麥滲透脅迫響應(yīng)基因[5]、基因結(jié)構(gòu)特征[6]、抗條銹病基因的定位[7],但對濱麥抗風(fēng)沙生存機理鮮有報道。海岸風(fēng)大浪高,但濱麥卻能在近海岸迎風(fēng)坡地旺盛生長并形成單一種群群落,揭示濱麥抗沙埋生理機理,不僅可豐富植物抗風(fēng)沙理論,而且對開發(fā)其抗風(fēng)沙基因具有重要理論指導(dǎo)作用。

        目前已將“氧自由基理論”引入到沙生植物抗逆生理機理的研究[8- 10]。研究發(fā)現(xiàn)在干旱和鹽脅迫過程中植物體內(nèi)會產(chǎn)生活性氧自由基[11- 19]。而細胞內(nèi)積累的活性氧自由基可破壞活性氧代謝平衡,引起細胞膜脂過氧化,使細胞膜結(jié)構(gòu)和蛋白質(zhì)核酸受損,導(dǎo)致細胞生理代謝紊亂并死亡[14- 15]。但同時研究還發(fā)現(xiàn)在鹽脅迫[16, 19]、冷凍[17- 18]、干旱[11,15]脅迫條件下,植物抗氧化酶保護系統(tǒng)被激活,抗氧化酶(SOD, CAT, POD)活力增高清除活性氧自由基、抑制膜脂過氧化、保護細胞膜完整性。同時,植物細胞中滲透調(diào)節(jié)物(可溶性糖和脯氨酸)含量會快速增高參與滲透調(diào)解,維護細胞水分平衡[19- 20]。因此,人們普遍認為脅迫條件下植物體內(nèi)抗氧化保護酶活力的高低和滲透調(diào)節(jié)物含量的多少與植物抗逆性強弱密切相關(guān)[17- 18,21]。而對海岸砂引草(MesserschmidiasibiricaLinn)[22]和單葉蔓荊(Vitexrifoliavar.Simplicafolia.)[23]在不同厚度沙埋處理過程中抗氧化酶活力和可溶性糖和脯氨酸含量分析也發(fā)現(xiàn):輕度和中度沙埋下,成株和幼株整株葉片平均細胞膜透性增大、POD和SOD活力增高、MDA 和脯氨酸含量和葉片相對含水量增加,同時植株沙上葉片細胞膜透性、MDA含量、SOD和POD活力和葉片可溶性糖均高于沙下。沙埋后抗氧化酶活力和滲透調(diào)節(jié)物含量的增高與抑制膜脂過氧化和沙埋后快速恢復(fù)生長相關(guān)。雖然對海岸紫草科砂引草[22]和馬鞭草科的單葉蔓荊(Vitexrifoliavar.Simplicafolia)[23]抗沙埋生理機理做了研究,但由于植物種類差異會導(dǎo)致參與滲透調(diào)節(jié)的滲透調(diào)節(jié)物種類和參與氧自由基清除的酶類不同[24]。加之,不同科屬生物學(xué)特性差異,如葉片形態(tài)、生活型不同,均會導(dǎo)致它們抗逆生理調(diào)控機理的不同[25]。因此濱麥為何能在迎風(fēng)沙地上生存及其生理調(diào)控的機理是什么?沙埋除了威脅受沙埋的葉生長外,對根系代謝是否有影響?葉和根系抗沙埋是否有抗氧化酶和滲透調(diào)節(jié)物參與并與其維持氧自由基代謝和水分平衡有關(guān)?目前報道較少。

        本文以煙臺海岸沙地天然生長的濱麥為材料,通過在不同厚度沙埋下對其葉片和不同深層土壤中根系抗氧化物酶活力、滲透調(diào)節(jié)物含量和生長速率的分析,以探討濱麥抗沙埋生理調(diào)控機制以及根葉對沙埋的生理響應(yīng)差異,并揭示海岸沙生植物在極端環(huán)境下生存機制,為未來濱麥抗沙埋基因的深入研究提供理論依據(jù)。

        1 材料和方法

        1.1 研究時間和試驗地點

        試驗于2011和2012年5月到8月在煙臺市西泊子海岸沙地天然濱麥生長地進行。煙臺市地處山東半島中部,位于東經(jīng)119°34′—121°57′,北緯36°16′—38°23′。該地區(qū)屬于溫帶季風(fēng)氣候,年平均降水量為651.9 mm,主要集中在7—8月,占年降雨量的49%;年平均氣溫11.8 ℃,最熱月為8月(24.6 ℃),歷年極端最高氣溫38.4 ℃,土壤pH值為4.2—6.8。海岸沙地土壤多為風(fēng)沙土。年平均風(fēng)速內(nèi)陸地區(qū)3—4 m/s,沿海地區(qū)4—6 m/s。西泊子研究區(qū)天然群落以耐沙埋植物為主,主要有篩草(Carexkobomugi)、砂引草(MesserschmidiasibiricaLinn)、腎葉打碗花(Calystegiasoldanella(L.) R. Br)和濱麥(Leymusmollis(Trin.) Hara)等。

        1.2 試驗處理

        (1)試驗地標記 在西泊子近海濱沙地上選擇生長密集均勻的濱麥地塊為樣地,并除去雜草,將樣地插牌作標記。

        (2)試驗材料標記 從標記的樣地中挑選株高約40 cm的植株(成株)用于沙埋,并將其標記。即:在沙埋前,用記號筆將植株基部做標記, 同時測量植株基部到頂部的距離(植株高度),然后進行沙埋。

        (3)沙埋處理 根據(jù)成株高度(約40 cm),將植株分為4段。從植株基部(地面部位,記為0)到頂部依次分為,1/4段(0—1/4,基部),2/4段(1/4—2/4,中部2),3/4段(2/4—3/4,中部1),4/4段(3/4—4/4, 頂部)。沙埋處理設(shè)立:對照;輕度沙埋(埋至株高1/4段處);中度沙埋(2/4段處);重度沙埋(3/4段處)。方法是將紙盒子分別剪制成高30 cm(重度沙埋)、20 cm(中度沙埋)、10cm(輕度沙埋)圍成面積約為1—2m2的方框。按沙埋厚度選取方框?qū)⑺x植株框起, 然后收集遠處地表干沙往框內(nèi)外覆沙至框高,同時一邊覆沙,一邊盡量將葉片向上擼直。沙埋后將方框去除,沙埋區(qū)域周圍再補充少量沙與地面成斜坡狀與自然沙地成一體。每個沙埋處理至少包括15株標記的植物,每個處理重復(fù)3次,整個沙埋試驗重復(fù)2次,兩次結(jié)果類似,在此僅報道其中1次。

        1.3 取樣方法

        在沙埋的第6天,對沙埋處理的植株進行取樣。同一植株取樣的順序為:(1)沙上取樣:首先用剪刀將不同處理的植株沙上葉片剪下,并按沙埋前分段的方法將各段剪開,其中對照植株具有完整的4段,重度沙埋僅具頂部那段,取樣后即刻用紗布包裹液氮固定。(2)沙下取樣:小心用手將不同厚度沙埋處理的沙下葉片周圍沙子撥出,直到植株基部標記部分露出,用剪刀從標記處將葉片的剩余部分剪下,同樣將沙下植株各段剪開,用紗布包裹后用液氮固定。(3)地下根取樣:由于濱麥具有地下根莖,并分布在較深的土層中,故本研究僅從淺層土中取根系,不包括根莖。具體做法是,取完葉片后,接著用手小心將根挖出, 取根長約20 cm, 并將根從10 cm和20 cm處剪開,將0—10cm記為根(1),10—20cm記為根(2)。清除根上沙子后,用液氮固定。所有液氮固定的材料用于滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)(脯氨酸、可溶性糖含量)、保護酶(SOD、POD、CAT)活力、MDA含量的分析,所有生理測定至少重復(fù)6次。

        1.4 試驗方法

        (1)生長速率測定 在沙埋第6天、第12天,小心將葉片周圍沙子撥除直到植株基部標記露出,用量尺測量植株基部標記處到葉尖距離(株高),測量結(jié)束后再用沙子埋到沙埋處理的高度。

        (2)酶液提取 酶液提取是在4℃條件下進行的,準確稱取液氮固定的樣葉于預(yù)冷研缽中,加入酶提取液(pH值=7.8磷酸緩沖液),冰浴上研磨成勻漿,在15000 r/min 4 ℃條件下離心15 min,上清液用于抗氧化酶活力和脯氨酸、可溶性糖和丙二醛含量的測定。

        (3)丙二醛(MDA)含量的測定 采用硫代巴比妥酸法測定MDA含量[26]。

        (4)抗氧化物酶活性的測定 采用愈創(chuàng)木酚法測定POD活性[26];采用氮藍四唑(NBT)光還原法測定SOD活性[12];采用過氧化氫-碘量法測定CAT活性[27]。

        (5)滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量的測定 采用茚三酮比色法測定游離脯氨酸含量[26];采用蒽酮法測可溶性糖含量[26]。由于沙埋6d葉片生長最快,故本實驗僅測定了沙埋6d不同厚度沙埋植株各部位葉片的抗逆生理指標的變化。

        1.5 數(shù)據(jù)處理

        實驗數(shù)據(jù)采用3個以上重復(fù)的平均值±標準誤(Standard Error),用SPSS 11.5軟件進行數(shù)據(jù)分析。不同沙埋處理間采用方差分析, 并以Duncan法進行多重比較, 沙上與沙下葉片間的比較用T檢驗。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 不同厚度沙埋對濱麥葉片生長速率的影響

        圖1 不同厚度沙埋6 d和12 d濱麥植株高度對比 Fig.1 Comparison of plant height of Leymus mollis under different depth of sand burial after 6 days and 12 days同一處理天數(shù),不同沙埋處理間比較用字母標記,兩兩間有相同字母表示差異不顯著, 反之差異顯著(P<0.05)

        結(jié)果表明,在輕度和中度沙埋下,濱麥植株生長明顯加快(P<0.05)(圖1)。與對照相比,輕度和中度沙埋6 d使植株葉片總長度較對照長16%和27%,重度沙埋葉片增長較少,沙下葉片部分發(fā)黃;輕度和中度沙埋12 d使植株葉片總長度較對照長18%和31%,重度沙埋葉片增長較少。說明適度沙埋可加速濱麥生長。

        2.2 不同厚度沙埋對濱麥葉片和根膜脂過氧化的影響

        許多研究發(fā)現(xiàn),逆境條件下,細胞MDA含量與植物存活和抗逆性成負相關(guān)[28]。由于抗氧化酶活力變化在種間和基因型間存在明顯差異[28]。因此,測定MDA 含量已成為篩選植物抗逆品種的一個工具[24, 28]。也是檢測植物膜傷害的一個重要指標[11]。

        與對照相比,輕度、中度沙埋6d使葉片平均MDA含量增加,重度沙埋使葉片平均MDA下降(圖2)。尤其是沙埋使葉片頂部MDA增加最為明顯,輕度、中度、重度沙埋使葉片頂部MDA含量分別較對照增加41%、60%和21%,并與對照差異顯著(P<0.05)。不同沙埋處理下,根中MDA含量變化不明顯,并與對照差異不明顯。與葉片相比,根中膜脂過氧化程度較低, 且兩者差異顯著(P<0.05)。而沙埋使同株沙上和沙下葉片MDA含量差異顯著(P<0.05),經(jīng)輕度、中度、重度沙埋6d,沙上葉片MDA含量分別較沙下高52%、58%、66%。結(jié)果表明,沙埋明顯促使葉片,尤其是葉片頂部膜脂過氧化加劇。該研究與砂引草[22]和單葉蔓荊[23]研究結(jié)果一致。

        圖2 不同厚度沙埋下濱麥葉片和根系丙二醛含量的變化 Fig.2 Changes in the MDA contents of the leaves and roots of Leymus mollis under different depth of sand burial(1)圖中每一處理組從左到右依次為:①葉頂部:②葉中部1;③葉中部2;④葉基部;⑤根 1;⑥根2;白色表示該部位沒有被沙埋;黑色表示該部位被沙埋(2)同一部位不同厚度沙埋之間的比較用大寫字母表示,字母不同表示差異顯著(P<0.05);同一植株不同部位之間的比較用小寫字母表示,字母不同表示差異顯著(P<0.05)(3)沙上與沙下葉片間的比較用T檢驗

        2.3 不同厚度沙埋對濱麥葉片和根抗氧化酶活力的影響

        正常情況下植株葉片各部位CAT活力表現(xiàn)為葉片頂部和中部略高,基部略低,根部CAT活力最低(對照)(圖3)。沙埋6d,隋沙埋厚度增加濱麥沙上葉片CAT活力趨于增加,沙下葉片CAT活力下降,尤其是葉片頂部CAT活力提高幅度較大。與對照相比,輕度、中度和重度沙埋下,葉片頂部CAT活力分別增加11%、25% 和24%, 與對照差異顯著(P<0.01)。同時也導(dǎo)致同株沙上和沙下葉片CAT活力差異極顯著(P<0.01)。輕度、中度和重度沙埋下,沙上葉片比沙下葉片CAT活力分別高109%、126%、和80%。不同厚度沙埋6 d,根中CAT活力變化不明顯且與對照無顯著差異,導(dǎo)致葉平均CAT活力較根部高2—3倍,兩者差異顯著(P<0.05)。結(jié)果表明,沙埋對葉片影響大,而對根沒有明顯影響。

        正常情況下,濱麥葉片各部位SOD活力均較高,根SOD活力較低(圖3)。不同厚度沙埋6 d 使葉片平均SOD活力略為增高(但葉片頂部SOD活力增加更為明顯),深根部位SOD活力下降。不同厚度沙埋6 d,與對照相比,輕度、中度、重度沙埋下葉片頂部SOD活力分別增加11%、27% 和19%,深根部位(根2)SOD分別下降19%、27%、42%,均與對照差異顯著(P<0.05)。同時,同株沙上葉片SOD活力較沙下高,例如,輕度、中度和重度沙埋下,沙上葉片SOD活力較沙下分別增加13%、29% 和18%。且兩者差異顯著(P<0.05)。

        與根系和葉片SOD和CAT活力結(jié)果不同的是,濱麥根POD活力明顯高于葉片,對照根中POD活力較葉高190%(圖3)。但在輕度和中度沙埋6d, 根POD活力較對照下降26%和36%,與對照差異明顯(P<0.05)。同株沙上和沙下葉片POD活力差異不顯著,而且葉片頂部POD活力變化較小與對照差異也不顯著,但葉片和根中POD活力差異顯著(P<0.05)。

        2.4 不同厚度沙埋對濱麥葉片和根滲透調(diào)節(jié)物含量的影響

        對照濱麥葉片可溶性蛋白質(zhì)含量在葉片頂部最高,基部較低,根部最低,葉片可溶性蛋白質(zhì)含量是根的2.3 倍(對照)(圖4)。與對照相比,雖然不同厚度沙埋并未提高葉片平均可溶性蛋白質(zhì)含量,但不同厚度沙埋卻使沙上葉片可溶性蛋白質(zhì)含量上升(尤其是葉片頂部),使沙下葉片可溶性蛋白質(zhì)降低,導(dǎo)致沙上和沙下葉片可溶性蛋白質(zhì)含量差異加大,并差異顯著(P<0.05)。另外,不同厚度沙埋下濱麥根可溶性蛋白質(zhì)含量低、變化小,與同株葉片可溶性蛋白質(zhì)含量差異顯著(P<0.05)。

        對照葉片頂部脯氨酸含量較高, 其余部位脯氨酸含量較低,且差異不顯著但與頂部差異顯著(P<0.05),根部脯氨酸含量最高(圖4)。沙埋使根葉脯氨酸含量均增加。 隨沙埋厚度增加葉片脯氨酸含量增幅加大,在輕度、中度、重度沙埋處理下,葉片平均脯氨酸含量分別較對照增加38%、81%和206%,中度和重度沙埋下根中脯氨酸平均含量分別增加30%和137%,它們均與對照差異顯著(P<0.05)。 同株沙上和沙下葉片脯氨酸含量差異顯著(P<0.05)。中度、重度沙埋使沙上葉片脯氨酸含量分別較沙下高66% 和28%。

        對照濱麥根部可溶性糖含量較葉片高,且兩者差異顯著(P<0.05)。沙埋6 d使沙上葉片可溶性糖含量略有增加,但卻使沙下葉片可溶性糖含量大幅下降,輕度、中度和重度沙埋6 d,沙下葉片可溶性糖含量分別較對照下降31%、53%、61%,致使沙上和沙下差異達到顯著(P<0.05)(圖4)。

        圖4 不同厚度沙埋下濱麥葉片根系可溶性蛋白質(zhì)、脯氨酸、可溶性糖含量的變化 Fig 4 Changes of the contnets of soluble protein、 proline、 soluble sugar in the leaves and roots of Leymus mollis under different depth of sand burial

        3 討論

        沙埋是控制沙地生態(tài)系統(tǒng)植被分布和組成的重要因素。具有耐沙埋特性也是植物能在流動或半流動沙地定植生存的關(guān)鍵,它也是植物在長期適應(yīng)沙埋環(huán)境中進化形成。由于揭示植物耐沙埋生理生態(tài)學(xué)適應(yīng)機理,對未來其開發(fā)利用和沙地群落的管理具有重要指導(dǎo)作用,因而得到許多研究者的關(guān)注[29- 31]。在煙臺海岸,常年海風(fēng)吹襲引起的沙埋作為一種脅迫因子使許多植物不能生存,砂引草、單葉蔓荊和濱麥是該海岸帶僅能生存的幾種植物。目前對海岸沙地砂引草[22]和單葉蔓荊[23]耐沙埋機理已進行了研究。但研究僅局限地上部葉片,而未有對地下根進行研究。盡管砂引草、單葉蔓荊和濱麥同為耐沙埋植物,但由于它們分屬于不同科屬,其生物學(xué)特性不同。尤其是葉片形態(tài)和葉片在植株上分布的差異導(dǎo)致它們對沙埋處理的響應(yīng)可能會不同。如在不同厚度沙埋處理過程中,砂引草和單葉蔓荊植株上不同部位葉片分別處于不同厚度沙埋中。而濱麥的葉片為長條形,在不同厚度沙埋處理中,同一葉片可分屬在不同沙埋層次中。同一葉片的不同部位經(jīng)歷著不同強度的沙埋,它們的生理響應(yīng)方式是否一樣,同一葉片沙埋部位和沒沙埋部位的抗逆生理變化是否有差異?另外陸地植物的根是吸收土壤水、二氧化碳和無機鹽的重要器官,沙埋是否對根代謝有影響,根是否對沙埋脅迫做出生理響應(yīng)呢?目前尚不清楚。

        本文結(jié)果表明,輕度和中度沙埋后沙上葉片生長加快,而沙下葉片變黃。同時伴隨著沙埋厚度增加,沙上葉片MDA含量增加、SOD和CAT活力增高、可溶性蛋白質(zhì)、脯氨酸含量增加。研究表明,沙上葉片快速生長不僅與SOD和CAT活力和可溶性蛋白質(zhì)和脯氨酸含量增加相關(guān),而且也與葉片細胞膜脂過氧化加劇相關(guān)。沙埋引起沙上葉片細胞膜脂過氧化加劇的原因是:(1)沙埋促使沙上綠色葉片光合作用強度增加引起氧自由基積累,因為光合生物產(chǎn)生氧氣的同時,活性氧(ROS)即作為副產(chǎn)品隨之出現(xiàn)[32]。ROS的增加導(dǎo)致膜脂過氧化程度加大和MDA含量增大。尤其是生長最快的頂部葉片MDA含量最高,表明葉片頂部光合作用最強,這也是其葉片頂部生長快的原因。(2)沙埋引起沙上葉片遭遇地面熱輻射和干旱脅迫導(dǎo)致氧自由基在葉片中積累。這是因為沙埋使遠離地表的上部葉片接近沙表面,導(dǎo)致葉片接受的地面熱輻射增多和受干旱和熱脅迫加劇。脅迫使植物呼吸作用加劇導(dǎo)致活性氧自由基積累[32]。但是由于氧自由基產(chǎn)生與抗氧化酶活力的提高相關(guān)[14、|16]。沙埋在使沙上葉片細胞內(nèi)氧自由基積累引起膜脂過氧化加強和MDA含量增高的同時,也誘導(dǎo)和激活抗氧化酶保護系統(tǒng),如提高SOD和CAT活力。而抗氧化酶可抑制細胞膜脂過氧化,維護細胞氧自由基代謝平衡,維護細胞正常代謝而使細胞生存。因此沙埋后沙上葉片通過積累的氧自由基快速激活抗氧化酶系統(tǒng)、維護氧自由基代謝平衡、保護細胞膜完整性,這可能是沙埋脅迫下,沙上綠色葉片可正常光合作用促使葉片伸長生長的關(guān)鍵。另外在沙上葉片MDA含量增多的同時,葉片脯氨酸和可溶性蛋白質(zhì)含量增多。由于脯氨酸的增加常常與缺水有關(guān)。沙埋在引起葉片頂部遭遇熱輻射脅迫引起葉片過度蒸騰失水的同時造成細胞干旱,它是導(dǎo)致脯氨酸積累的誘因,但脯氨酸和可溶性蛋白質(zhì)通過其滲透調(diào)節(jié)作用在防止水分丟失和維護葉片水分平衡中起重要作用。

        研究還發(fā)現(xiàn),與對照同部位葉片相比,不同厚度沙埋6d沙下葉片MDA平均含量下降8%(圖2)、SOD和CAT平均活力減少15%和40%(圖3)、可溶性蛋白質(zhì)和可溶性糖下降26%和48% (圖4)。研究表明,沙埋脅迫中沙下葉片MDA含量與抗氧化酶活力及滲透調(diào)節(jié)物含量變化趨勢呈正相關(guān)。這是因為沙埋使沙下葉片處于低溫潮濕、 黑暗、 缺氧和CO2不足。沙下黑暗和低溫,抑制了葉片光合作用并降低了代謝速率也減小了氧自由基積累速率,同時也抑制了抗氧化酶活力的增高導(dǎo)致沙下抗氧化酶活力低于沙上??梢?,沙下葉片維持細胞氧自由基代謝平衡和水分平衡可能是其葉片免受氧自由基傷害并支持沙上葉片頂部快速生長的關(guān)鍵。另外,由于禾本科葉片是條形葉并具有縱列平行脈序,在沙埋后,沙下部分葉片無法行光合作用時,其可能起輸導(dǎo)作用,維持根到沙上葉片水分和養(yǎng)分連通體系,使沙上葉片光合作用產(chǎn)物可運到根,和將根吸收的水分運到沙上葉片,以維持沙埋后植株的持續(xù)生長。因此沙埋后雖然沙下葉片無法繼續(xù)光合作用,但由于這部位葉片能維持氧自由基代謝平衡而不受氧自由基傷害,同時通過功能的改變和將其所含的可溶性糖運輸?shù)缴成先~片而支持著植株沙埋后的生存。

        此外,濱麥有強大的根莖分布于深土層,為了能了解沙埋對根的影響,本試驗僅研究了與葉直接連接、位于淺土層的根系對沙埋的生理響應(yīng)。 研究結(jié)果表明,沒有沙埋(對照)的濱麥,同株根中MDA含量最低(圖2),SOD和CAT活力和可溶性蛋白質(zhì)含量也最低(圖3, 圖4),只有根中脯氨酸和可溶性糖含量較高(圖4),根部各生理指標與葉片差異顯著(P<0.05)。這主要源于葉片和根生活在不同環(huán)境。根生活在土壤溫差相對較小,水分較高導(dǎo)致根中氧自由基積累較少而MDA含量較低。在不同厚度沙埋處理6 d,根中MDA和可溶性蛋白質(zhì)含量、CAT活力均變化不顯著。而不同厚度沙埋卻使根中POD和SOD活力和可溶性糖含量小幅下降,但仍與葉差異顯著(P<0.05)。這可能是沙埋僅改變著葉生活環(huán)境,而沒有改變根環(huán)境。沙埋后根中可溶性糖含量下降可能與沙下葉片失去光合作用能力使向根輸送的可溶性糖減少,或根中呼吸強度加大消耗所致??梢?,由于根的代謝、結(jié)構(gòu)、環(huán)境與葉不同,使得根細胞可在較低的膜脂過氧化水平下生活,尤其在沙埋后根細胞仍維持較低的MDA含量,根系維護氧自由基代謝平衡可能是濱麥耐沙埋持續(xù)生長的源泉。另外,根莖是繁殖器官和儲存器官,不同程度沙埋不僅沒有影響根代謝和再生能力,而且海岸頻繁的沙埋反而促進根莖上芽生長,這也許就是濱麥能在海岸前丘形成單一種群的原因。

        4 結(jié)論

        生長在海岸前丘沙地的濱麥,其條形葉片在不同厚度沙埋過程中,分屬在不同沙埋厚度中,經(jīng)過6 d沙埋處理,沙上葉片生長加速,由于沙上熱輻射使沙上葉片,尤其是葉片頂部積累氧自由基導(dǎo)致膜脂過氧化加劇,同時也激活抗氧化酶(SOD和CAT)和增加滲透調(diào)劑物(可溶性蛋白質(zhì)和脯氨酸)含量,抑制膜脂過氧化維護細胞氧自由基代謝平衡。 而沙下葉片由于處于黑暗環(huán)境而變黃,葉片膜脂過氧化水平降低,同時還伴隨抗氧化酶活力和滲透調(diào)節(jié)物含量的降低,葉片功能轉(zhuǎn)變?yōu)檩攲?dǎo)系統(tǒng)支持沙上葉片的生長。同時由于沙埋沒有影響到根,因而根細胞一直維持著低的膜脂過氧化水平和抗氧化酶活力。因此,不同厚度沙埋過程中濱麥葉片和根作為一個整體,維護細胞氧自由基代謝平衡和水分平衡、迅速適應(yīng)沙埋環(huán)境調(diào)節(jié)營養(yǎng)分配、保護強大的根莖可能是其適應(yīng)海岸頻發(fā)沙埋的重要生理和生存策略。由于植物對脅迫的適應(yīng)性反應(yīng)是一個非常復(fù)雜的綜合反應(yīng)。至于濱麥適應(yīng)沙埋的基因調(diào)控機制還有待于繼續(xù)探索,因為這有助于作物和樹木的抗風(fēng)沙育種。

        [1] Gagné J M, Houle G. Factors responsible forHonckenyapeploides(Caryophyllaceae) andLeymusmollis(Poaceae) spatial segregation on subarctic coastal dunes. American Journal of Botany, 2002, 89(3): 479- 485.

        [2] McGuire P E, Dvorak J. High salt-tolerance potential in wheatgrasses. Crop Science, 1981, 21(5): 702- 705.

        [3] Kishii M, Wang R R C, Tsujimoto H. Characteristics and behaviour of the chromosomes ofLeymusmollisandL.racemosus(Triticeae, Poaceae) during mitosis and meiosis. Chromosome Research, 2003, 11(8): 741- 748.

        [4] 趙繼新, 周 博, 龐玉輝, 王玉卿, 武軍, 陳新宏, 程雪妮, 劉淑會, 傅杰. 濱麥低分子量谷蛋白亞基(LMW-GS)基因的分離與序列分析. 植物科學(xué)學(xué)報, 2011, 29(6): 704- 711.

        [5] Habora M E, Eltayeb A E, Tsujimoto H, Tanaka K. Identification of osmotic stress-responsive genes fromLeymusmollis, a wild relative of wheat (TriticumaestivumL.). Breeding Science, 2012, 62(1): 78- 86.

        [6] 周博, 陳新宏, 龐玉輝, 趙繼新等. 濱麥HMW GS啟動子和編碼區(qū)基因的分離與序列分析. 麥類作物學(xué)報, 2011, 31(2): 202- 208.

        [7] 周兗晨, 張相岐, 王獻平, 吳立人, 周文娟, 張文俊, 景建康. 濱麥抗條銹病基因的染色體定位和分子標記. 遺傳學(xué)報, 2001, 28(9): 864- 869.

        [8] Huang B R. PlantEnvironment Interactions. 3rd ed. Boca Raton, FL, USA: CRC Press, 2006: 70- 87.

        [9] Mittler R. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends Plant Science, 2002, 7(9): 405- 410.

        [10] Jaspers P, Kangasjarvi J. Reactive oxygen species in abiotic stress signaling. Physiologia Plantarum, 2010, 138(4): 405- 413.

        [11] Zhang J, Kirkham M B. Drought-stress-Induced changes in activities of superoxide dismutase, catalase, and peroxidase in wheat species. Plant & Cell Physiology, 1994, 35(5): 785- 791.

        [12] Sundar D, Perianayaguy B, Reddy A R. Localization of antioxidant enzymes in the cellular compartments of sorghum leaves. Plant Growth Regulation, 2004, 44(2): 157- 163.

        [13] Sairam R K, Srivastava G C. Changes in antioxidant activity in sub-cellular fractions of tolerant and susceptible wheat genotypes in response to long term salt stress. Plant Science, 2002, 162(6): 897- 904.

        [14] Rout N P, Shaw B P. Salt tolerance in aquatic macrophytess: possible involvement of the antioxidative enzymes. Plant Science, 2001, 160(3): 415- 423.

        [15] Boo Y C, Jung J. Water deficit-induced oxidative stress and antioxidative defenses in rice plants. Journal of Plant Physiology, 1999, 155(2): 255- 261.

        [16] Mutlu S, Atici ?, Nalbantoglu B. Effects of salicylic acid and salinity on apoplastic antioxidant enzymes in two wheat cultivars differing in salt tolerance. Biologia Plantarum, 2009, 53(2): 334- 338.

        [17] Zhou R L, Zhao H L. Seasonal pattern of antioxidant enzyme system in the roots of perennial forage grasses grown in alpine habitat, related to freezing tolerance. Physiologia Plantarum, 2004, 121(3): 399- 408.

        [18] Guo F X, Zhang M X, Chen Y, Zhang W H, Xu S J, Wang J H, An L Z. Relation of several antioxidant enzymes to rapid freezing resistance in suspension cultured cells from alpineChorisporabungeana. Cryobiology, 2006, 52(2): 241- 250.

        [19] Deirdre G, Lelu-Walter M A, Parkinson M. Overproduction of proline in transgenic hybrid larch (Larix x leptoeuropaea (Dengler)) cultures renders them tolerant to cold, salt and frost. Molecular Breeding, 2005, 15(1): 21- 29.

        [20] Slama I, Messedi D, Ghnaya T, Savoure A, Abdelly C. Effects of water deficit on growth and proline metabolism inSesuviumportulacastrum. Environmental and Experiment Botany, 2006, 56(3): 231- 238.

        [21] Lascano H R, Antonicelli G E, Luna C M, Melchiorre M N, Gomez L D, Racca R W, Trippi V S, Casano L M. Antioxidant system response of different wheat cultivars under drought: field and in vitro studies. Australian Journal of Plant Physiology, 2001, 28(11): 1095- 1102.

        [22] 王進, 周瑞蓮, 趙哈林, 趙彥宏, 侯玉萍. 海濱沙地砂引草對沙埋的生長和生理適應(yīng)對策. 生態(tài)學(xué)報, 2012, 32(14): 4291- 4299.

        [23] 周瑞蓮, 王進, 楊淑琴, 楊樹德. 海濱沙灘單葉蔓荊對沙埋的生理響應(yīng)特征. 生態(tài)學(xué)報, 2013, 33(6): 1973- 1981.

        [24] Cavalcanti F R, Oliveira J T, Martins-Miranda A S, Viégas R A, Silveira J A G. Superoxide dismutase, catalase and peroxidase activities do not confer protection against oxidative damage in salt-stressed cowpea leaves. New Phytologist, 2004, 163(3): 563- 571.

        [25] 周瑞蓮, 侯玉平, 王艷芳, 左進城. 不同沙地共有種沙生植物對環(huán)境的生理適應(yīng)機理. 生態(tài)學(xué)報, 2015, 35(2): 340-349

        [26] 張志良, 瞿偉菁. 植物生理學(xué)實驗指導(dǎo). 北京: 高等教育出版社, 2003: 123- 276.

        [27] Drazkiewicz M, Skórzyńska-Polit E, Krupa Z. Copper-induced oxidative stress and antioxidant defence in Arabidopsis thaliana. Biometals, 2004, 17(4): 379- 387.

        [28] Luna C, Garcia-Seffino L, Arias C, Taleisnik E. Oxidative stress indicators as selection tools for salt tolerance. Plant Breeding, 2000, 119(4): 341- 345.

        [29] 何玉惠, 趙哈林, 趙學(xué)勇, 劉新平. 沙埋對小葉錦雞兒幼苗生長和生物量分配的影響. 干旱區(qū)地理, 2008, 31(5): 701- 706.

        [30] 趙哈林, 何玉惠, 岳廣陽, 周瑞蓮. 風(fēng)吹、沙埋對沙地植物幼苗生長和光合蒸騰特性的影響. 生態(tài)學(xué)雜志, 2010, 29(3): 413- 419.

        [31] 劉海江, 郭柯. 沙埋對中間錦雞兒幼苗生長發(fā)育的影響. 生態(tài)學(xué)報, 2005, 25(10): 2550- 2555.

        [32] Asada K. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygens and dissipation of excess photons. Annual Review of Plant Physiology Plant Molecular Biology, 1999, 50: 601- 639.

        Analysis of the different physiological responses ofLeymusmollis(Trin.) Hara leaves and roots to sand burial on the coast of Yantai, China

        ZHOU Ruilian*, ZHAO Yanhong, YANG Runya, ZUO Jincheng, HOU Yueli, ZHOU Binbin

        SchoolofLifeScience,LudongUniversity,Yantai264025,China

        In this study, we tested the physiological responses ofLeymusmollis(Trin.) leaves and roots to sand burial on the Yantai coast of China to understand the biochemical and physiological adaptive mechanisms of this species to sand burial. Based on the height ofL.mollis(about 40 cm) four levels of sand burial treatments were set up: no-sand burial (control), light sand burial (1/4 plant height), moderate sand burial (1/2 plant height), and severe sand burial (3/4 plant height). After 6 days of sand burial, samples were taken from the leaves and roots of plants in each treatment. Changes in malonaldehyde (MDA) content, an osmotic regulator, in addition to antioxidant enzymes superoxide dismutase (SOD), peroxidase (POD), and catalase (CAT) activity, were measured in the leaves above and below the sand and in the roots at various depths. Plants under light and moderate sand-burial grew fast until they protruded from the sand, becoming taller than control plants after 6 days. Compared to the control, the average MDA content increased in whole leaves under light and moderate sand burial, but and decreased in leaves subject to severe sand burial. In all three sand burial treatments, SOD activity and proline content increased in whole leaves, whereas CAT activity and soluble sugar and soluble protein contents decreased. In all three burial treatments, MDA, proline, and soluble protein content increased in leaves above the sand, along with SOD and CAT activity, especially in the top section of the leaves. In contrast, MDA, soluble sugar, and soluble protein content, in addition to CAT activity, decreased in the leaves beneath the sand. This resulted in significant differences in MDA, proline, soluble sugar, and soluble protein content, in addition to SOD and CAT activity, between leaves above and below the sand (P< 0.05). Compared to above ground leaves, underground roots had lower MDA and soluble protein content, in addition to lower SOD and CAT activity, but higher POD activity and soluble sugar content. After 6 days of sand burial, there was a small change in MDA and soluble sugar content, with soluble sugar content and CAT, POD, and SOD content slightly decreasing in the roots. On the same plant, leaves above ground had significantly higher (P<0.05) MDA and soluble protein content, along with higher CAT and SOD activity, than the underground roots. This result indicates that sand burial had a greater effect on the aboveground structures (branches and leaves) above ground compared to the underground structures. Sand-burial caused the accumulation of oxygen free radicals in the cells, which induced lipid peroxidation and activated the antioxidant enzymatic protection system to scavenge oxygen free radicals and maintain the metabolic balance of oxygen free radicals. This action also promoted osmotic adjustments to maintain the balance of water metabolism and provide energy and nutrition. Thus, under sand burial, it may be important to enhance cell antioxidant and osmotic adjustment capacity rapidly to maintain the balance of oxygen free radical metabolism and metabolic water balance, a key physiological regulation strategy forL.mollisfor sand burial adaptation. Moreover, the root system was not affected by the different levels of sand burial, and continued to sustain lower levels of lipid peroxidation, allowing the roots to maintain normal functions of water suction and transportation, and to support the fast growth of leaves out of the sand.

        Leymusmollis; coast; leaves and roots; sand burial; physiological response

        煙臺市科技局資助課題(2013ZH351);國家973課題(2009CB421303);國家自然科學(xué)基金項目 (30972422)

        2013- 12- 17;

        日期:2015- 04- 14

        10.5846/stxb201312172966

        *通訊作者Corresponding author.E-mail: zhourl726@163.com

        周瑞蓮,趙彥宏,楊潤亞,左進城,候月立,周彬彬.海濱濱麥葉片和根對不同厚度沙埋的生理響應(yīng)差異分析.生態(tài)學(xué)報,2015,35(21):7080- 7088.

        Zhou R L, Zhao Y H, Yang R Y, Zuo J C, Hou Y L, Zhou B B.Analysis of the different physiological responses ofLeymusmollis(Trin.) Hara leaves and roots to sand burial on the coast of Yantai, China.Acta Ecologica Sinica,2015,35(21):7080- 7088.

        猜你喜歡
        脯氨酸可溶性自由基
        國家藥監(jiān)局批準脯氨酸恒格列凈片上市
        中老年保健(2022年3期)2022-11-21 09:40:36
        自由基損傷與魚類普發(fā)性肝病
        自由基損傷與巴沙魚黃肉癥
        植物體內(nèi)脯氨酸的代謝與調(diào)控
        鮮地龍可溶性蛋白不同提取方法的比較
        中成藥(2018年8期)2018-08-29 01:28:34
        陸克定:掌控污染物壽命的自由基
        反式-4-羥基-L-脯氨酸的研究進展
        干旱脅迫對馬尾松苗木脯氨酸及游離氨基酸含量的影響
        可溶性Jagged1對大鼠靜脈橋狹窄的抑制作用
        檞皮苷及其苷元清除自由基作用的研究
        大胆欧美熟妇xxbbwwbw高潮了| 国产让女高潮的av毛片| 国产卡一卡二卡3卡4乱码| 成人黄色网址| 久久这里只精品国产2| 久久精品国产亚洲av蜜臀久久| 一本色道久久亚洲综合| 亚洲日产精品一二三四区| 五月中文字幕| 国产自产自现在线视频地址| 一区二区三区免费看日本| 日日噜噜噜夜夜狠狠久久蜜桃| 在线精品亚洲一区二区动态图| 色五月丁香五月综合五月4438| 天天躁日日操狠狠操欧美老妇| 久久蜜臀av一区三区| 色大全全免费网站久久| 亚洲国产一区二区a毛片| 国产精品无码久久久久免费AV| 亚洲精品在线一区二区三区| 老鸭窝视频在线观看| 天堂8中文在线最新版在线| 久久99精品久久久66| 国产精女同一区二区三区久| 国产精品无码无卡无需播放器| 伊人色综合九久久天天蜜桃| 亚洲AV成人综合五月天在线观看| 国语对白精品在线观看| 亚洲成av人片在www| 日本a在线看| 美腿丝袜中文字幕在线观看| 未满十八18禁止免费无码网站| 色狠狠av老熟女| 亚洲AV无码一区二区一二区色戒| 全亚洲最大的私人影剧院在线看| 免费视频成人片在线观看| 伊人网综合在线视频| 色老板在线免费观看视频日麻批| 天天综合网网欲色| 国产精品无码不卡一区二区三区| 色窝窝手在线视频|