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        豬圓環(huán)病毒2型SYBR GreenⅠ熒光定量PCR診斷方法的建立

        2015-01-20 11:37:37余波周思旋譚詩(shī)文
        湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年22期

        余波 周思旋 譚詩(shī)文 等

        摘要:根據(jù)GenBank中豬圓環(huán)病毒2型ORF2基因序列設(shè)計(jì)特異性引物,PCR擴(kuò)增獲得豬圓環(huán)病毒2型ORF2基因片段,并克隆到pMD-18T載體上作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品。通過對(duì)SYBR Green I熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化,建立了豬圓環(huán)病毒2型的SYBR Green I熒光定量PCR診斷方法。擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解曲線分析只出現(xiàn)1個(gè)單特異峰,無引物二聚體,對(duì)PRV、PPV、E.coli、CSFV、PRRSV均無陽(yáng)性信號(hào),可重復(fù)性好,測(cè)靈敏度可達(dá)4.0×101拷貝/μL。結(jié)果表明,建立的豬圓環(huán)病毒2型SYBR Green I 實(shí)時(shí)熒光定量PCR具有特異、靈敏、快速、重復(fù)性好,適合于豬圓環(huán)病毒2型臨床樣品的檢測(cè)。

        關(guān)鍵詞:豬圓環(huán)病毒2型;ORF2基因;SYBR Green I熒光定量PCR

        中圖分類號(hào):S854.4+3 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2014)22-5474-04

        豬圓環(huán)病毒2型(Porcine circovirus type 2, PCV-2)主要導(dǎo)致斷奶仔豬多系統(tǒng)衰竭綜合征(PMWS)的發(fā)生,表現(xiàn)為免疫系統(tǒng)損傷,淋巴細(xì)胞減少、淋巴結(jié)腫大等病變,同時(shí)引起其他病原的繼發(fā)感染,目前已成為嚴(yán)重阻礙養(yǎng)豬業(yè)發(fā)展的主要病原之一[1-3]。目前檢測(cè)PCV-2主要有ELISA、膠體金、PCR等方法,但ELISA、膠體金主要用于檢測(cè)PCV-2抗體,且操作復(fù)雜、耗時(shí)長(zhǎng)[4,5]。普通PCR不能進(jìn)行定量分析,且靈敏度相對(duì)較低,無法檢測(cè)豬場(chǎng)的隱性感染。熒光定量PCR是與常規(guī)PCR比較,具有重復(fù)性好、靈敏度高、能夠定量等優(yōu)點(diǎn),已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于多種疾病病原的檢測(cè)[6,7]。本研究根據(jù)GenBank中豬圓環(huán)病毒2型ORF2基因序列設(shè)計(jì)特異性的引物,利用PCR技術(shù)擴(kuò)增獲得豬圓環(huán)病毒2型ORF2基因片段,并克隆到pMD-18T載體上作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品。通過對(duì)SYBR Green I熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化,建立豬圓環(huán)病毒2型的SYBR Green I熒光定量PCR診斷方法,為豬圓環(huán)病毒2型臨床樣品的檢測(cè)提供科學(xué)的診斷方法。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        菌株:PCV-2、PRV閩-1株、PPV強(qiáng)毒株7909、CSFV、PRRSV、豬源大腸桿菌由貴州省畜禽疫病研究實(shí)驗(yàn)室保存。

        主要試劑及儀器:Goldview、Tris、EDTA、Taq DNA Polymerase(5U/μL)及相應(yīng)10×Taq Buffer、dNTP、DH5α,pMD-18T、SYBR Green I熒光定量PCR酶等購(gòu)自寶生物(大連)工程有限公司;TIANamp病毒基因組DNA/RNA提取試劑盒、瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒購(gòu)自天根生化科技有限公司。熒光定量PCR儀為Eppendorf Mastercycler ep realplex 4實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 引物設(shè)計(jì) 根據(jù)ORF2 GenBank中豬圓環(huán)病毒2型ORF2基因序列設(shè)計(jì)1對(duì)特異性引物,上游引物:5′-GGAAGACCAATGTACACGTCATT-3′,下游引物:5′-GGTGGTTTCCAGTATGTGGTTTC-3′,引物由寶生物(大連)工程有限公司合成。

        1.2.2 病毒核酸的提取

        1)組織樣品:取待檢樣品淋巴結(jié)組織樣品共約0.5 g,加入500 μL PBS緩沖液,待檢樣品研磨后-70 ℃反復(fù)凍融3次,12 000 r/min離心取上清液用于核酸的提取。病毒DNA/RNA的提取參照TIANamp病毒基因組DNA/RNA提取試劑盒說明書進(jìn)行,將提取的DNA/RNA于-70 ℃保存。豬大腸桿菌參照細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒說明書進(jìn)行,將提取的DNA-20 ℃保存。

        2)血清樣品:取50 μL血清加入等體積的血清裂解緩沖液(50 μmol/L Tris-HCl(pH 8.0),150 μmol/L NaCl,2 μmol/L EDTA,1%Triton×100,5%SDS),混勻后煮沸5 min,12 000 r/min離心取上清液2 μL用于熒光定量PCR和普通PCR。

        1.2.3 pMD-18T-PCV2-ORF2陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品的制備

        用“1.2.1”中的引物,對(duì)PCV-2進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)條件為:94 ℃ 5 min;94 ℃ 1 min,55 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,30個(gè)循環(huán); 72 ℃ 10 min。將擴(kuò)增的目的片段與pMD-18-克隆載體連接,轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞DH5α,重組體命名為pMD-18T-PCV2-ORF2,同時(shí)送寶生物工程(大連)有限公司測(cè)序。用紫外分光光度計(jì)測(cè)定測(cè)序正確的重組質(zhì)粒pMD-18T-PCV2-ORF2在D260 nm/D280 nm處的吸光度,得到重組質(zhì)粒的濃度和純度,進(jìn)行10倍梯度倍比稀釋,作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品。

        1.2.4 熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化 熒光定量PCR反應(yīng)在25 μL反應(yīng)體系中進(jìn)行,對(duì)熒光定量PCR反應(yīng)條件,包括退火溫度(50、55、60 ℃)、引物濃度(5、10、20 μmol/L)進(jìn)行優(yōu)化以確定最佳反應(yīng)條件。上下游引物(5、10、20 μmol/L)各1 μL,Premix Ex Taq 12.5 μL,ROX Reference Dye 0.5 μL,模板1 μL,用超純水補(bǔ)足至25 μL,同時(shí)以去離子水作為空白對(duì)照。反應(yīng)條件為:94 ℃ 10 s;94 ℃ 5 s、退火溫度(50、55、60 ℃)10 s、72 ℃10 s,40個(gè)循環(huán)。

        1.2.5 熒光定量PCR反應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立 用紫外分光光度計(jì)測(cè)定測(cè)序正確的重組質(zhì)粒pMD-18T-PCV2-ORF2,計(jì)算出重組質(zhì)粒的濃度和純度,計(jì)算DNA拷貝數(shù),隨后將標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性樣本進(jìn)行連續(xù)10倍系列稀釋,以“1.2.4”的條件進(jìn)行擴(kuò)增,每個(gè)稀釋倍數(shù)3個(gè)重復(fù),以拷貝數(shù)為橫坐標(biāo),以Ct值為縱坐標(biāo)建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.2.6 敏感性試驗(yàn) 將重組質(zhì)粒pMD-18T-PCV2-ORF2計(jì)算DNA拷貝數(shù)后,進(jìn)行10倍比稀釋后分別進(jìn)行熒光定量PCR反應(yīng),每個(gè)稀釋倍數(shù)3個(gè)重復(fù),以確定建立的熒光定量PCR診斷的敏感性。

        1.2.7 特異性試驗(yàn) 以PCV-2、PPV、PRV、E.coli DNA、CSFV、PRRSV cDNA進(jìn)行熒光定量PCR反應(yīng),每個(gè)樣品3個(gè)重復(fù),以確定建立的熒光定量PCR診斷方法的特異性。

        1.2.8 重復(fù)性試驗(yàn) 應(yīng)用建立的熒光定量PCR方法重復(fù)檢測(cè)PCV-2 DNA樣品3次,以檢驗(yàn)結(jié)果的可靠性。

        1.2.9 熒光定量PCR方法對(duì)臨床樣品的檢測(cè) 對(duì)2012~2013年貴州省貴陽(yáng)市、黔西南、遵義、黔南州、銅仁地區(qū)幾個(gè)生豬養(yǎng)殖場(chǎng)和養(yǎng)殖專業(yè)戶采集的75份疑似病料(組織),194頭份發(fā)病豬場(chǎng)未發(fā)病豬血清,應(yīng)用建立的熒光定量PCR檢測(cè)方法進(jìn)行檢測(cè),同時(shí)應(yīng)用文獻(xiàn)[8]中的方法進(jìn)行普通PCR檢測(cè)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 pMD-18T-PCV2-ORF2陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品的制備

        用“1.2.1”中的引物,對(duì)PCV-2進(jìn)行PCR擴(kuò)增,能有效擴(kuò)增出目的片段,片段大小為105 bp,無非特異性片段產(chǎn)生(圖1)。將寶生物(大連)工程有限公司測(cè)序結(jié)果與GenBank中的PCV-2 ORF2基因序列比對(duì),核苷酸相似度為98.9%~100%。

        2.2 熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化

        熒光定量PCR反應(yīng)在25 μL反應(yīng)體系中最佳反應(yīng)條件為:退火溫度55 ℃,引物濃度10 μmol/L,能出現(xiàn)最高的熒光值、最小的Ct值,且在溶解曲線分析中不出現(xiàn)非特異性峰。

        2.3 熒光定量PCR反應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        將標(biāo)準(zhǔn)樣品10倍倍比稀釋,取4.0×107、4.0×106、4.0×105、4.0×104、4.0×103、4.0×102、4.0×101拷貝/μL 7種不同濃度重組質(zhì)粒作為模板進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增反應(yīng),得到擴(kuò)增反應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2),線性回歸方程為Ct=-2.894×lgcopies+32.89(R2=0.994)。

        2.4 溶解曲線分析

        在SYBR Green I熒光定量PCR結(jié)束后對(duì)擴(kuò)增反應(yīng)溶解曲線分析,結(jié)果見圖3。由圖3可見,擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解溫度Tm為84.0~84.4 ℃,沒有引物二聚體和非特異性產(chǎn)物等其他峰值出現(xiàn)。

        2.5 敏感性試驗(yàn)

        將標(biāo)準(zhǔn)樣品倍比稀釋,取4.0×107、4.0×106、4.0×105、4.0×104、4.0×103、4.0×102、4.0×101、4.0×100拷貝/μL 8種不同濃度重組質(zhì)粒作為模板進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增。由圖4可見,結(jié)果顯示其靈敏度為4.0×101拷貝/μL。

        2.6 特異性試驗(yàn)

        由圖5可見,以PCV-2、PPV、PRV、E.coli DNA、CSFV、PRRSV cDNA進(jìn)行熒光定量PCR反應(yīng),以確定建立的熒光定量PCR診斷方法的特異性。結(jié)果PCV-2為陽(yáng)性,而PPV、PRV、E.coli DNA、CSFV、PRRSV cDNA為陰性。

        2.7 重復(fù)性試驗(yàn)

        應(yīng)用建立的熒光定量PCR方法重復(fù)檢測(cè)PCV-2 DNA樣品3次,以檢驗(yàn)結(jié)果的可靠性,結(jié)果均一致。

        2.8 熒光定量PCR對(duì)臨床樣品的檢測(cè)

        對(duì)2012~2013年貴州省貴陽(yáng)市、黔西南、遵義、黔南州、銅仁地區(qū)幾個(gè)生豬養(yǎng)殖場(chǎng)和養(yǎng)殖專業(yè)戶75份疑似病料(組織)熒光定量PCR陽(yáng)性率為29.3%(22/75),普通PCR陽(yáng)性率為29.3%(22/75)。194頭份發(fā)病豬場(chǎng)未發(fā)病豬血清熒光定量PCR陽(yáng)性率為9.2%(18/194),普通PCR陽(yáng)性率為0%(0/194)。

        3 小結(jié)與討論

        目前利用PCR技術(shù)或者是血清學(xué)方法對(duì)豬場(chǎng)中的PCV-2感染情況進(jìn)行檢測(cè)是控制PMWS的有效方法[9]。普通PCR在PCV-2的凈化中發(fā)揮了重要作用,但普通PCR檢測(cè)的靈敏度相對(duì)較低,主要用于組織病料的檢測(cè),不能有效檢出豬群血清中PCV-2的隱形感染。陳蓉等[10]建立基于TaqMan探針的豬圓環(huán)病毒2型熒光定量PCR檢測(cè)方法,該方法的敏感性為6×101拷貝/μL,比普通PCR高2個(gè)數(shù)量級(jí),對(duì)臨床樣本的陽(yáng)性檢出率(64%)明顯高于普通PCR(44%)。曾思遙等[11]以豬圓環(huán)病毒2型核衣殼蛋白ORF2基因,設(shè)計(jì)合成特異性引物和探針,建立了PCV-2的TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法,可達(dá)100拷貝/μL,可有效檢測(cè)出淋巴結(jié)、肺臟等組織中的PCV-2,但其未對(duì)感染豬場(chǎng)未發(fā)病豬血清進(jìn)行檢測(cè)。

        基于SYBR GreenⅠ的實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)則無需探針,且價(jià)格較TaqMan探針低廉,雖然引物二聚體及非特異性擴(kuò)增可能影響檢測(cè)結(jié)果的特異性,但可以通過融解曲線分析克服這一缺陷[12]。本研究根據(jù)豬圓環(huán)病毒2型ORF2基因序列設(shè)計(jì)特異性的引物,利用PCR技術(shù)擴(kuò)增獲得豬圓環(huán)病毒2型ORF2基因片段,并克隆到pMD-18T載體上作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品。通過對(duì)SYBR Green I熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化,建立了豬圓環(huán)病毒2型的SYBR Green I熒光定量PCR診斷方法,靈敏度可達(dá)4.0×101拷貝/μL,擴(kuò)增產(chǎn)物的溶解溫度Tm為84.0~84.4℃,沒有引物二聚體和非特異性產(chǎn)物等其他峰值出現(xiàn),適合于PCV-2臨床樣品的檢測(cè)。

        本研究中75份疑似病死豬病料(組織)中病毒含量量較高,因此熒光定量PCR和普通PCR符合率為100%,而發(fā)病豬場(chǎng)未發(fā)病豬血清PRV病毒含量較低,普通PCR未檢測(cè)到血清中的病毒,而建立的實(shí)時(shí)熒光定量PCR能檢測(cè)到PCV-2 DNA。且本研究建立的血清中病毒提取方法,能夠快速的提取病毒DNA。因此,本研究建立的PCV-2 SYBR Green I 實(shí)時(shí)熒光定量PCR可應(yīng)用于PCV-2早期感染和隱性感染檢測(cè),有利于豬場(chǎng)PCV-2的凈化。

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        (責(zé)任編輯 程碧軍)

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        (責(zé)任編輯 程碧軍)

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        (責(zé)任編輯 程碧軍)

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