黃 卉，何 丹,2，李來好，林婉玲，魏 涯，楊賢慶，郝淑賢,*

（1.中國水產(chǎn)科學研究院南海水產(chǎn)研究所，農(nóng)業(yè)部水產(chǎn)品加工重點實驗室，國家水產(chǎn)品加工技術研發(fā)中心，廣東 廣州 510300；2.上海海洋大學食品學院，上海 201306）

復合添加劑對鱘魚籽醬（Huso dauricused × sturger schrenckii）揮發(fā)性成分的影響

黃 卉1，何 丹1,2，李來好1，林婉玲1，魏 涯1，楊賢慶1，郝淑賢1,*

（1.中國水產(chǎn)科學研究院南海水產(chǎn)研究所，農(nóng)業(yè)部水產(chǎn)品加工重點實驗室，國家水產(chǎn)品加工技術研發(fā)中心，廣東 廣州 510300；2.上海海洋大學食品學院，上海 201306）

采用固相微萃取-氣相色譜-質譜聯(lián)用分析技術，分別檢測未經(jīng)添加劑處理的鱘魚籽醬、添加0.5‰山梨酸鉀和0.2‰抗壞血酸的鱘魚籽醬（A1組），添加0.5‰山梨酸鉀、0.2‰抗壞血酸和0.2‰乳酸鏈球菌素（Nisin）的鱘魚籽醬（A2組），添加0.5‰山梨酸鉀、0.2‰抗壞血酸和0.2‰ L-抗壞血酸棕櫚酸酯的鱘魚籽醬（A3組），在0℃冷藏時揮發(fā)性物質的變化，經(jīng)NIST 05a.L和NIST 05.l譜庫數(shù)據(jù)庫檢索，確定其揮發(fā)性成分。結果表明：初始鱘魚籽醬檢測出46種揮發(fā)性成分，醛類物質作為主要氣味貢獻組分，其中壬醛、己醛、辛醛和庚醛含量較高，另外，一定含量的D-檸檬烯、長葉烯和石竹烯可能賦予新鮮鱘魚籽醬獨特的檸檬香、木香等清新氣味。3組復合添加劑的使用，都有利于防止在貯藏過程中魚籽醬揮發(fā)性物質的流失，減少了酮類和醇類物質的變化。其中，A2組中，山梨酸鉀、抗壞血酸和Nisin的添加 促進了貯藏3個月后魚籽醬中醛類物質的還原反應，導致醛類物質的大量減少，酯類物質的大量增加。最后，在貯藏期間醛類物質的變化，顯示A1組和A3組復合防腐劑的處理促使鱘魚籽醬具有更濃的腥味、青草味。

鱘魚籽醬；固相微萃取；氣相色譜-質譜法；揮發(fā)性成分

魚籽醬是從雌魚卵巢的結締組織中分離后得到的魚籽，經(jīng)篩選、鹽漬而制得的產(chǎn)品[1]。世界上最著名的魚卵產(chǎn)品是鱘魚籽醬，素有“黑色黃金”之稱，與鵝肝，松露并稱為世界三大美食。鱘魚籽醬富含大量的蛋白質和脂肪，尤其是長鏈不飽和脂肪酸。然而，由于魚籽中的n-3長鏈不飽和脂肪酸易氧化，從而縮短魚籽醬的貨架期，所以魚籽醬的保藏方法非常重要。鱘魚籽醬的鹽濃度和低溫貯藏是保證其貯藏質量的重要因素，但是隨著人們越來越偏好于低鹽度的魚籽醬（2.8%～3.5%鹽含量）[2]，而且低溫貯藏不能終止脂肪氧化和蛋白質氧化等化學反應[3]，所以為延長鱘魚籽醬的貯藏期，其他有效的保藏措施是必要的。Sternin等[4]曾提出鱘魚籽醬的巴氏消毒溫度控制在60℃以下，可以防止魚籽醬中的蛋白質變性。然而，巴氏消毒到會影響魚籽醬產(chǎn)品的質量，一直未被廣泛使用。作為即食產(chǎn)品的魚籽醬，添加適宜防腐劑的魚籽醬可以消除市場的安全隱患。硼砂、硝酸鉀、山梨酸、乳酸鏈球菌素（Nisin）等是俄羅斯的鱘魚籽醬產(chǎn)品中常用添加劑，其中硼砂只有一些歐洲國家允許做為食品添加劑，包括中國在內(nèi)的大多數(shù)國家，硼砂不允許用于食品中[1]。近幾年復合添加劑的研究成為熱點，如Nisin和有機酸的聯(lián)用可以有效延長即食食品的貨架期[5]，以及L-抗壞血酸和L-抗壞血酸棕櫚酸酯的結合使用也有很好的效果。

目前，對水產(chǎn)品質量進行鑒定的方法主要有感官評定、微生物和生化指標的分析，然而，感官評定的結果不確定性較大，微生物分析耗時耗力，某些生化指標不能顯示水產(chǎn)品的質量變化，比如揮發(fā)性鹽基氮（total volatile base nitrogen，TVB-N）和三甲胺（trimethylamine，TMA）只在魚塊貯藏后期才升高[6]。所以，找到一種新型的能快速鑒定水產(chǎn)品質量的方法非常有必要。作為世界三大珍饈的鱘魚籽醬，其獨特的風味和氣味是吸引消費者的重要因素。Caprino等[7]發(fā)現(xiàn)來自不同飼料喂養(yǎng)的養(yǎng)殖鱘魚，其魚籽醬揮發(fā)性成分沒有顯著性差異。Golovnya等[8]比較了鱘魚籽醬與鮭魚子醬揮發(fā)性成分中的單羰基化合物，發(fā)現(xiàn)鱘魚籽醬含較多的飽和醛和2-烯醛，而2,4-二烯醛和甲基酮含量較鮭魚子醬少。氣味是確定水產(chǎn)品品質、質量的重要因素，作為鮮魚特征揮發(fā)性成分的醛和酮，其含量隨著腐敗過程中酶[9]和微生物[10]的作用而改變，通過揮發(fā)性成分的變化評估水產(chǎn)品貯藏質量已有較多報道[11-13]。Edirisinghe等[11]發(fā)現(xiàn)3-甲基-1-丁醇和十五烷與冷藏過程中黃鰭金槍魚（Thunnus albacares）的質量有顯著關系。Soncin等[13]發(fā)現(xiàn)金頭鯛（Sparus aurata）和對蝦（Penaeus vannamei）在冷藏過程中，3-甲基-1-丁醇，2-甲基-丁醛，3-甲基-丁醛和3-羥基-2-丁酮的含量逐漸增加，可作為其產(chǎn)品腐敗的標志物。

目前，國內(nèi)外有關魚籽醬保藏質量的研究有限，且主要集中于微生物[14-15]和生化指標[16]的分析。貯藏過程中魚籽醬揮發(fā)性成分的分析尚未報道。

固相微萃取（solid phase micro-extraction，SPME）結合氣相色譜-質譜（gas chromatography-mass spectrometry，GC-MS）的聯(lián)用近年來被廣泛用于研究水產(chǎn)品揮發(fā)性有機化合物，它是一種快速、無溶劑的新技術[17]，是一種可用于產(chǎn)品的快速質量檢測和貨架期的評估方法。本研究采用SPME-GC-MS法，將鱘魚籽醬產(chǎn)品復合添加日常食品防腐劑：山梨酸鉀與Nisin、L-抗壞血酸和L-抗壞血酸棕櫚酸酯，并于0℃環(huán)境中冷藏，以揮發(fā)性成分為指標，探索最能保持魚籽醬氣味的防腐劑保藏方法。

1 材料與方法

1.1材料與試劑

實驗所用鱘魚籽醬 杭州千島湖鱘龍科技股份有限公司。鱘魚籽醬用金屬罐罐裝，每罐大約30 g，經(jīng)冰藏 運輸至實驗室。

山梨酸鉀（食品級） 南通醋酸化工股份有限公司；Nisin（食品級）浙江銀象生物工程有限公司；抗壞血酸、L-抗壞血酸棕櫚酸酯（食品級食品添加劑） 廣州市食品工業(yè)研究所。

1.2儀器與設備

PC-420D手動SPME進樣手柄、聚二甲基硅氧烷/二乙基苯（polydimethylsiloxane/divinylbenzene，PDMS/ DVB）65 ?m型萃取頭 美國色譜科公司；CNW18-400頂空進樣瓶 上海安普科學儀器有限公司；2010PLUS GC-MS儀 日本島津公司。

1.3方法

1.3.1樣品處理

將鱘魚籽醬分為4組，分別為對照組A和復合添加劑組A1、A2、A3。各組添加劑的具體添加量為，A1組：0.5‰山梨酸鉀和0.2‰抗壞血酸的鱘魚籽醬；A2組：0.5‰山梨酸鉀、0.2‰抗壞血酸和0.2‰Nisin的鱘魚籽醬；A3組：0.5‰山梨酸鉀、0.2‰抗壞血酸和0.2‰ L-抗壞血酸棕櫚酸酯。將各添加劑按照質量分數(shù)稱取定量的添加劑后，小心攪拌2 min，最后罐裝、置于0℃冰箱中冷藏。

1.3.2SPME

取3 g魚籽醬用研缽研2 min，按料液比1∶3（m/V）比例加飽和食鹽水，冰水浴中勻漿，迅速倒入15 mL頂空樣品瓶中，置于磁力攪拌臺上。DVB/PDMS萃取頭對分子質量小、沸點低的醛、醇和酮物質具有 較好提取效果，是常見的提取水產(chǎn)品揮發(fā)性物質的萃取頭[18]。另外萃取溫度低不利于揮發(fā)性成分的釋放，而萃取溫度過高會降低萃取頭的吸附能力使吸附量下降，當萃取溫度為60℃時，DVB/PDMS萃取頭的萃取效果最好[18]。將65μmDVB/PDMS萃取頭插入樣品瓶頂空部位，萃取溫度60℃、磁力攪拌條件下平衡10 min，頂空萃取40 min后取出萃取頭，迅速用GC-MS聯(lián)用儀進行分析鑒定[19]。

1.3.3 GC條件

色譜柱：DB-5MS毛細管柱（30 m×0.25 mm，0.25μm）；升溫程序：柱初溫40℃，保持2 min，以6℃/min升溫到200℃保持3 min，再以10℃/min上升到250℃保持3 min；載氣（He）流速1.0 mL/min；不分流進樣；進樣口溫度250℃。

1.3.4MS條件

電子電離源；電子能量70 eV；溶劑切除時間2 min；傳輸線溫度270℃；離子源溫度230℃；質量掃描范圍m/z35～350。

1.3.5定性和定量方法

定性：與NIST Library（10.7萬 種化合物）和Wiley Library（32萬 種化合物，Version 6.0）相匹配，取匹配度85%以上者[19]；同時，根據(jù)保留時間，參考相關文獻對實驗中檢測到的物質核對和確認。定量：按峰面積歸一化法計算化合物相對含量。

2 結果與分析

2.1不同添加劑處理的鱘魚籽醬冷藏過程揮發(fā)性物質組成的變化

圖1 復合添加劑處理的鱘魚籽醬揮發(fā)性成分的GC-MS總離子流圖Fig.1 Total ion current chromatograms of volatile compounds in sturgeon caviar treated with different synthetic preservatives

對初始魚籽醬，以及不同防腐劑處理后，貯藏3個月和6個月的鱘魚籽醬進行GC-MS分析，9組魚籽醬的揮發(fā)性成分總離子流色譜圖見圖1。經(jīng)NIST譜庫數(shù)據(jù)庫檢索、分析，鑒定出不同階段的鱘魚籽醬的揮發(fā)性物質，將這些揮發(fā)性成分按結構分類，結果見圖2。

圖2 復合添加劑處理的鱘魚籽醬冷藏過程中揮發(fā)性物質組成比較Fig.2 Comparison of volatile compounds profiles in different caviars treated with different synthetic preservatives during cold storage

由圖2可知，初始鱘魚籽醬的揮發(fā)性成分物質含有46種，其中烴類和醛類占大多數(shù)，且不含酸類物質。貯藏6個月后，對照組鱘魚籽醬（圖1F）的揮發(fā)性物質從貯藏3個月的52種減少到43種，且貯藏6個月對照組魚籽醬的峰面積大小明顯小于其他的峰面積大?。▓D1F）。然而，添加防腐劑的鱘魚籽醬其揮發(fā)性成分的種類數(shù)隨著貯藏期的延長而增多，峰面積也沒有出現(xiàn)顯著性變化。結果表明，實驗中復合防腐劑的添加，有利于防止在貯藏過程中魚籽醬揮發(fā)性物質的流失。

由圖2可知，醛類、醇類、酯類和烴類是鱘魚籽醬的主要揮發(fā)性成分，且隨著貯藏時間的延長和不同的添加劑處理，魚籽醬揮發(fā)性物質的組成和相對含量都在發(fā)生變化。羰基化合物包括醛類物質和酮類物質，其閾值較低，對食品揮發(fā)性物質的形成貢獻很大[20]。醛類物質是養(yǎng)殖鱘魚籽醬的主要特征揮發(fā)性物質，占總揮發(fā)性有效成分的60%以上[7]。醛類物質能在脂質氧化中快速形成，酮類物質可能由多不飽和脂肪酸的熱氧化或氨基酸降解產(chǎn)生的[21]。研究[20]表明，醛類和酮類與水產(chǎn)品青草味、腥味、油脂味等有關，兩者存在協(xié)同作用，使腥味增強或改變，是很多淡水魚肉揮發(fā)性物質的主要成分。醇類物質一般來源于糖、氨基酸以及醛類物質的還原，C4～C11醇類物質會產(chǎn)生使人不愉快的類似金屬或泥土的氣味，且不飽和醇的閾值較低，對魚肉氣味貢獻較大[20]。對醛類物質，除A2組在貯藏3個月后出現(xiàn)顯著性減少，所有魚籽醬的醛類物質相對含量隨著貯藏期的延長而顯著增加或者伴有小波動。這與李陽等[22]研究白鰱魚肉-18℃凍藏一周后醛類物質的減少相反，可能與實驗原料和貯藏溫度的不同有關。

對于酮類和醇類物質，所有的鱘魚籽醬都是先增加后減少的趨勢，且對照組的變化幅度最大。在貯藏過程中，在脂肪氧合酶的作用下，鱘魚籽醬發(fā)生了脂肪氧化，長鏈不飽和脂肪酸被氧化為揮發(fā)性短鏈 羰基化合物、不飽和醇和雙烯化合物[12]。然而，低溫貯藏對脂肪氧合酶的抑制作用，導致多不飽和脂肪酸降解產(chǎn)物含量降低[23]。在貯藏后期，隨著脂肪氧化速度放慢和酯化反應的進行，酮類和醇類的損失量大于它的生成量。實驗結果表明，3組復合添加劑的處理都明顯抑制了魚籽醬的脂肪氧化，減少了酮類和醇類物質的 變化。

酯類 化合物由脂質代謝生成的羧酸和醇經(jīng)酯化反應而形成，酯類大多給予食品一種果香或花香味[20]。除A2組隨著貯藏期的延長，其相對含量增加外，其余魚籽醬樣品是先減少后顯著增加的趨勢，與醇類物質的變化相反，這是由于醇類物質發(fā)生酯化反應生成酯類。實驗結果表明，A2組中，山梨酸鉀、抗壞血酸和Nisin的添加促進了貯藏3個月后魚籽醬中醛類物質的還原反應，導致醛類物質的大量減少，酯類物質的大量增加。

烴類物質一般來源于脂肪酸烷氧自由基的均裂，其閾值較大，一般認為對魚肉氣味的形成直接貢獻不大[21]。除A1組和對照組出現(xiàn)增加的趨勢，其余魚籽醬的烴類物質相對含量隨著貯藏期的延長而減少，這與醛類物質正好相反，這是由于烴類物質尤其是烯烴類物質在一定條件下形成了醛 類物質[20]。另外，在實驗中，A1組和對照組隨著貯藏期的延長而明顯增加，A2組和A3組的酸類物質相對含量出現(xiàn)先顯著增加后下降的趨勢；對于其他的物質，除對照組和A3組在末期出現(xiàn)小幅增加，所有鱘魚籽醬的其他物質相對含量隨著貯藏期的延長而減少。

2.2初始鱘魚籽醬中主要揮發(fā)性物質的變化分析

由表1可知，初始鱘魚籽醬中，閾值高的烴類和其他類所占比例較高，表明初始魚籽醬的揮發(fā)性物質較少。在初始魚籽醬的揮發(fā)性物質組成中，D-檸檬烯（2.26%）、壬醛（2.18%）、己醛（1.50%）、石竹烯（1.44%）、長葉烯（0.73%）、辛醛（1.18%）、庚醛（0.94%）的相對含量較高，其中，壬醛、己醛、辛醛和庚醛等醛類物質，在鱘魚肉中也被檢出[19]，這些低級醛被認為是魚腥味的代表物質。己醛普遍存在于淡水魚及海水魚中，閾值為4.5 ?g/kg，主要表現(xiàn)為腥味、青草味等氣味，可能由n-6不飽和脂肪酸氧化產(chǎn)生[24]。辛醛具有青草味和油脂味，壬醛和庚醛具有油脂哈喇味[22]。長葉烯和石竹烯具有木香以及溫和的丁香香氣，對鱘魚籽醬的清新氣味有一定作用[19]。劉奇等[19]在鱘魚體內(nèi)也檢測出較多長葉烯和石竹烯。D-檸檬烯具有新鮮檸檬樣香氣，在白鰱魚肉[22]和大黃魚肉[25]中也有較多存在。

2.3不同防腐劑處理的鱘魚籽醬貯藏過程中主要揮發(fā)性物質組分的變化分析

由表1可知，鱘魚籽醬中有很多揮發(fā)性物質是在貯藏過程中產(chǎn)生的。醛類物質的閾值一般較其他物質的閾值低，是水產(chǎn)品中重要的氣味組成部分。許多醛類物質根據(jù)其碳原子數(shù)和不飽和度，能賦予水產(chǎn)品特有的香味（表2）[26]。醛類物質中，2-己烯醛、3-甲硫基-丙醛、2-庚烯醛、2,4-庚二烯醛、2-辛烯醛、2,4-癸二烯醛、2-十二烯醛、4-乙基苯甲醛是在貯藏過程中新生成的，表明隨著貯藏期的延長，鱘魚籽醬的揮發(fā)性物質更加豐富。2-己烯醛、2-庚烯醛、2-辛烯醛、2-十二烯醛等單烯醛化合物閾值較低，為多不飽和脂肪酸的氧化降解產(chǎn)物，其氣味特征是果香和清香，以及明顯的脂肪香氣[26]。2,4-庚二烯醛為亞麻酸的氧化產(chǎn)物，具有草腥味[18,27]。2,4-癸二烯醛來自于亞油酸和花生四烯酸的降解產(chǎn)物，具有脂肪味，也是很多魚類的典型腥味物質[20]。飽和醛類物質主要來自n-6的n-9的多不飽和脂肪酸或單不飽和脂肪酸的氧化降解，一般具有草香、清香等氣味，C6～C12短鏈飽和醛類物質閾值較低，對氣味貢獻較大，而長鏈飽和醛類物質具有較高的閾值，對氣味貢獻較小[28]。己醛在魚籽醬貯藏過程中整體呈增長趨勢，且A1組和A3組處理的魚籽醬增加幅度尤其大。庚醛和辛醛在6個月的貯藏過程中，A1組和A3組魚籽醬變化不明顯，而對照組和A2組顯著減少。壬醛在貯藏過程中，所有魚籽醬的含量都明顯減少甚至未能檢測到，而癸醛的變化相反，其含量隨著貯藏期的延長而增加?？傮w來看，除己醛變化明顯，其余短鏈醛類的變化較小，這和Ross等[29]發(fā)現(xiàn)己醛相對于其他脂肪氧化產(chǎn)物，能更有效預測肉的脂肪氧化程度。從己醛的變化可知，A1組和A3組復合防腐劑的處理促使鱘魚籽醬具有更濃的腥味、青草味。

酮類可能產(chǎn)生于脂肪酸氧化、氨基酸降解及微生物氧化等作用[30]，具有獨特的清香和果香氣味，并且隨著碳鏈的增長呈現(xiàn)更強的花香特征，但閾值高、含量少，一般認為它們對氣味特征貢獻較小[21]。鱘魚籽醬中共檢測到3種酮類物質，其中環(huán)己酮和苯乙酮隨著貯藏時間的延長而減少甚至消失，3-辛酮其氣味特征為醚味[31]，其相對含量先增加，后期減少。

醇 類物質一般來源于糖、氨基酸以及醛類物質的還原[31]。實驗中共檢測到11種醇類物質，貯藏3個月對照組魚籽醬的醇類相對含量較多，達到36.11%，其中2-亞甲基-環(huán)戊丙醇、3-甲基-1-丁醇、3,7-二甲基-1-辛醇的含量較高。醇類物質是由脂肪氧合酶催化n-3和n-6多不飽和脂肪酸的過氧化反應形成，其閾值較高，且飽和醇的閾值比不飽和醇的閾值要高，對氣味貢獻值極小[9]。在實驗中，油醇作為不飽和醇，其含量隨著貯藏期的延長而增加，符合貯藏中魚籽醬發(fā)生脂肪氧化的事實。Soncin等[13]發(fā)現(xiàn)預熟對蝦（Penaeus vannamei）和金頭鯛（Sparus aurata）揮發(fā)性成分中的3-甲基-1-丁醇，隨著貯藏期的延長而增加，可作為微生物腐敗的標志。

酯類物質的產(chǎn)生來自于酸和醇之間的酯化作用，實驗中共檢測到11種酯類物質，其中4-己烯酸乙酯和2,4-己二烯酸乙酯分別在貯藏6個月的A2組和A3組相對含量達到52.30%和38.79%。

烴類物質中，主要飽和烷烴有2,6,10,14-四甲基-十五烷、十二烷、十五烷、十九烷。C6～C19的各種烷烴都在魚肉的揮發(fā)性成分中被發(fā)現(xiàn)，但因閾值較高，對食品的整體氣味貢獻很小，然而一些支鏈烴可能對魚肉的香氣有貢獻[32]。其中，2,6,10,14-四甲基-十五烷具有青草味，主要來源于類胡蘿卜素的降解和烷基自由的脂肪酸自動氧化，在鱘魚肉中也有發(fā)現(xiàn)[19]。對照組和A2組魚籽醬中2,6,10,14-四甲基-十五烷相對含量隨貯藏期延長而先增加后減少，相反，A1組和A3組會減少其含量。不飽和烷烴主要有3,5-辛二烯、4-辛炔、α-蒎烯、長葉烯、長葉環(huán)烯、石竹烯、2-十五烯-4-炔、D-檸檬烯、4-叔丁基-環(huán)己烯。雖然這些物質的本身閾值較高，對鱘魚籽醬的揮發(fā)性成分貢獻不大，但是不飽和烷烴可進一步氧化，生成酮、醛類化合物，是風味化合物的潛在前體物質[33]。芳香類物質主要有甲苯、乙苯、對二甲苯和丁羥甲苯，這些物質的來源尚不清楚，但在野生金頭鯛（（Sparus aurata）[9]和扇貝（Patinopecten yessoensis）[34]中都有發(fā)現(xiàn)。

表1 復合防腐劑處理的魚籽醬冷藏過程中揮發(fā)性成分及其相對含量Table 1 Changes in volatile compounds and their relative contents in caviars treated with synthetic preservatives during cold storage%

續(xù)表1%

表2 魚籽醬揮發(fā)性成 分中特征揮發(fā)性成分的來源、閾值和氣味描述Table 2 The possible origin, odor threshold and odor description of volatile compounds in sturgeon caviar

3 結 論

采用頂空SPME技術，提取出鱘魚籽醬的揮發(fā)性成分，經(jīng)GC-MS測定，初步鑒定出新鮮鱘魚籽醬含46種揮發(fā)性物質，并確定其相對含量。通過分析發(fā)現(xiàn)，壬醛、己醛、辛醛和庚醛等醛類物質是新鮮鱘魚籽醬的主要揮發(fā)性成分，賦予鱘魚籽醬青草味和腥味。另外，一定含量的D-檸檬烯、長葉烯和石竹烯可能賦予新鮮鱘魚籽醬獨特的檸檬香、木香等清新氣味[19]。

本實驗中3組復合防腐劑的使用，有利于防止在貯藏過程中魚籽醬揮發(fā)性物質的流失，抑制了魚籽醬的脂肪氧化，從而減少了酮類和醇類物質的變化。其中，A2組中，山梨酸鉀、抗壞血酸和Nisin的添加促進了貯藏3個月后魚籽醬中醛類物質的還原反應，導致醛類物質的大量減少，酯類物質的大量增加。另外，醛類物質作為鱘魚籽醬的主要氣味貢獻組分，在貯藏期間醛類物質的變化，顯示A1組和A3組復合防腐劑的處理促使鱘魚籽醬具有更濃的腥味、青草味。本研究對鱘魚籽醬在冷藏過程中揮發(fā)性成分的變化進行分析，其研究成果可為以后通過揮發(fā)性成分的變化判定鱘魚籽醬的質量提供理論基礎。

[1] 郝淑賢, 何丹, 魏涯, 等. 魚卵加工產(chǎn)品類型與魚籽醬保鮮技術研究進展[J]. 南方水產(chǎn)科學, 2014, 10(3): 104-108.

[2] BLEDSOE G E, BLEDSOE C D, RASCO B. Caviars and fish roe products[J]. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2003, 43(3): 317-356.

[3] MAQSOOD S, BENJAKUL S. Synergistic effect of tannic acid and modified atmospheric packaging on the prevention of lipid oxidation and quality losses of refrigerated striped catfish slices[J]. Food Ch emistry, 2010, 121(1): 29-38.

[4] STERNIN V, DUNCAN D, RESEARCH B C. Roe processing technology manual[M]. Vanc ouver, BC, Canada: BC Food Technology Center, Applied Biology Division, BC Research Corp, 1992: 1-153.

[5] NORHANA M N, POOLE S E, DEETH H C, e t al. Effects of nisin, EDTA and salts of organic acids onListeria monocytogenes, Salmonellaand native microflora on fresh vacuum packaged shrimps stored at 4 degrees C[J]. Food Microbiology, 2012, 31(1): 43-50.

[6] PARLAPANI F F, MALLOUCHOS A, HAROUTOUNIAN S A, et al. Microbiological spoilage and inves tigation of volatile profile during storage of sea bream fillets under various conditions[J]. International Journal of Food Microbiology, 2014, 189: 153-163.

[7] CAPRINO F, MORETTI V M, BELLAGAMBA F, et al. Fatty acid composition and volatile compounds of caviar from farmed white sturgeon (Acipenser transmontanus)[J]. Analytica Chimica Acta, 2008, 617(1/2): 1 39-47.

[8] GOLOVNYA R V, URALETS V P. Monocarbonyl compounds in the volatile components of rossiiskii cheese, flesh salmon, sturgeon and salmon caviar[J]. Food/Nahrung, 1972, 16(5): 497-506.

[9] SELLI S, CAYHAN G G. Analysis of volatile compounds of w ild gilthead sea bream (Sparus aurata) by simultaneous distillation-extraction (SDE) and GC-MS[J]. Microchemical Journal, 2009, 93(2): 232-235.

[10] JOFFRAUD J J, LEROI F, ROY C, et al. Characterisation of volat ile compounds produced by bacteria isolated from the spoilage flora of cold-smoked salmon[J]. International Journal of Food Microbiology, 2001, 66(3): 175-184.

[11] EDIRISINGHE R K B, GRAFFHAM A J, TAYLOR S J. Characterisation of the volatiles of yellowfin tuna (Thunnus albacares) during storage by solid phase microextraction and GC-MS and theirrelationship to fish quality parameters[J]. International Journal of Food Science and Technology, 2007, 42(10): 1139-1147.

[12] DUFLOS G, COIN V M, CORNU M, et al. Determination of volatile compounds to characterize fish spoilage using headspace/mass spectrometry a nd solid-phase microextraction/gas chromatography/ mass spectrometry[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2006, 86(4): 600-611.

[13] SONCIN S, CHIESA L M, PANSERI S, et al. Determination of volatile compounds of precooked prawn (Penaeus vannamei) and cultured gilthead sea bream (Sparus aurata) st ored in ice as possible spoilage markers using solid phase microextraction and gas chromatography/mass spectrometry[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2009, 89(3): 436-442.

[14] HIMELBLOOM B H, CRAPO C A. Microbial evaluation of Alaska salmon caviar[J]. Journal of Fo od Protection, 1998, 61(5): 626-628.

[15] SAFARI R, YOSEFIAN M. Changes in TVN (total volatile nitrogen) and psycrotrophic bacteria in Persian sturgeon Caviar (Acipenser persicus) during processing and cold storage[J]. Journal of Applied Ichthyology, 2006, 22(Suppl 1): 416-418.

[16] WANG Y, YU J X, ZHANG C L, et al. Influence of flavonoids fromPhellinus ign iariuson sturgeon caviar: antioxidant effects and sensory characteristics[J]. Food Chemistry, 2012, 131(1): 206-210.

[17] 趙景麗. 金華火 腿風味形成過程中游離氨基酸參與的美拉德反應研究[D]. 鄭州: 河南農(nóng)業(yè)大學, 2013.

[18] 劉敬科. 鰱魚風味特征及熱歷史對鰱魚風味的影響[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學, 2009.

[19] 劉奇, 郝淑賢, 李來好, 等. 鱘魚不同部位揮發(fā)性成分分析[J]. 食品科學, 2012, 33(16): 142-145.

[20] 丁麗麗, 吳燕燕, 李來好, 等. 咸帶魚加工過程揮發(fā)性風味成分的變化[J]. 食品科學, 2012, 3 3(24): 208-212.

[21] 龍斌, 王錫昌, 張鳳枰, 等. 川鯰揮發(fā)性風味成分和脂肪酸分析[J].食品科學, 2013, 34(22): 250-256. doi: 10.7506/spkx1002-6630-201322050.

[22] 李陽, 汪超, 胡建中, 等. 凍藏前后白鰱魚肉中揮發(fā)性成分含量分析[J].質譜學報, 2014, 35(1): 59-65.

[23] 何雄, 薛長湖, 楊文鴿, 等. 羅非魚鰓組織中脂肪氧合酶的性質研究[J].水產(chǎn)科學, 2005, 24(7): 15-19.

[24] VARLET V, KNOCKAERT C, PROST C, et al. Co mparison of odoractive volatile compounds of fresh and smoked salmon[J]. Journal of A gricultural and Food Chemistry, 2006, 54(9): 3391-3401.

[25] 翁麗萍. 養(yǎng)殖大黃魚和野生大黃魚風味的研究[D]. 杭州: 浙江工商大學, 20 12.

[26] 盧春霞, 翁麗萍, 王宏海, 等. 3 種網(wǎng)箱養(yǎng)殖魚類的主體風味成分分析[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 2010, 36(10): 163-169.

[27] 曾紹東, 吳建中, 歐仕益, 等. 羅 非魚酶解液中揮發(fā)性成分分析[J].食品科學, 2010, 31(18): 342-346.

[28] VARLET V, PROST C, SEROT T. Volatile aldehydes in smoked fish: analysis methods, occurence and mechanisms of formation[J]. Food Chemistry, 2007, 105(4): 1536-1556.

[29] ROSS C F, SMITH D M. Use of volatiles as indicators of lipid oxidation in muscle foods[J]. C omprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 2006, 5(1): 18-25.

[30] ALASALVAR C, TAYLOR K D A, SHAHIDI F. Comparison of volatiles of cultured and wild sea bream (Sparus aurata) d uring storage in ice by dynamic headspace analysis/gas chromatographymass sp ectrometry[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2005, 53(7): 2616-2622.

[31] 李來好, 丁麗麗, 吳燕燕, 等. 咸魚中的揮發(fā)性風味成分[J]. 水產(chǎn)學報, 2012, 36(6): 979-988.

[32] 盛金鳳, 姜元欣, 劉小玲. 熏制即食羅非魚片加工過程中的揮發(fā)性成分分析[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2013, 29(12): 3038-3 045.

[33] 遲明旭, 王帆, 韓德權, 等. 發(fā)酵魚肉香腸揮發(fā)性風味物質的研究[J].中國調味品, 2013, 38(12): 36-41.

[34] CHUNG H Y, YUNG I K S, MA W C J, et al. Analysis of volatile components in frozen and dri ed scallops (Patinopecten yessoensis) by gas chromatography/mass spectrometry[J]. Food Research International, 2002, 35(1): 43-53.

[35] TURCHINI G M, MORETTI V M, MENTAST I T, et al. Effects of dietary lipid source on fillet chemical composition, flavour volatile compounds and sensory characteristics in the freshwater fish tench (Tinca tincaL.)[J]. Food Chemistry, 2007, 102(4): 1144-1155.

Effect of Synthetic Preservatives on Volatile Flavor Compounds in Caviar of Sturgeon (Huso dauricused × sturger schrenckii)

HUANG Hui1, HE Dan1,2, LI Laihao1, LIN Wanling1, WEI Ya1, YANG Xianqing1, HAO Shuxian1,*
(1. National R & D Center for Aquatic Product Processing, Key Laboratory of Aquatic Product Processing, Ministry of Agriculture, South China Sea Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences, Guangzhou 510300, China; 2.College of Food Science and Technology, Shanghai Ocean University, Shanghai 201306, China)

Changes in the volatile flavor comp ounds of sturgeon caviar (Huso dauricused × sturger schrenckii) during cold storage were analyzed by solid phase microextraction (SPME) coupled to gas chromatography-mass spectrometry (GCMS) through NIST 05a.L mass spectral library search and alignment. Stugeon caviar was divided into four groups including control group (with no additives), group A1 (with 0.5‰potassium sorbate and 0.2‰ascorbate), group A2 (with 0.5‰potassium sorbate, 0.2‰ascorbate and 0.2‰nisin), and group A3 (with 0.5‰potassium sorbate, 0.2‰ascorbate and 0.2‰L-ascorbyl palmitate). A total of 46 volatile compounds were identified in fresh sturgeon caviar. The compounds responsible for the flavor of sturgeon carviar were mos tly aldehydes, among which, hexanal, heptanal, octanal, and nonanal showed higher levels. In addition, the unique lemony and woody aroma of fresh caviar may contribute toD-linonene, longifolene and caryophyllene. The loss of volatile flavor compounds in sturgeon caviar was prevented by additive treatments in the present s tudy, and the levels of ketones and alcohols were decreased as well. The reduction reaction of aldehydes was promoted in caviars by the addition of 0.5‰potassium sorbate, 0.2‰ascorbate and 0.2‰nisin, thus leading to a substantial decrease in aldehydes and a notable increase in esters. Finally, the changes in aldehydes caused by A1 and A3 treatments were responsible for a stronger fishy and grassy smell of sturgeon caviar.

sturgeon caviar; solid phase micro-extraction (SPME); gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS); volatiles flavor compounds

TS254.4

A

1002-6630（2015）12-0097-07

10.7506/spkx1002-6630-201512018

2014-11-23

公益性行業(yè)（農(nóng)業(yè)）科研專項（201003055-06）；國家重大科技成果轉化項目（ZD-2014-345-3）；中央級公益性科研院所基本科研業(yè)務費專項（中國水產(chǎn)科學研究院南海水產(chǎn)研究所）（2012YDOl）

黃卉（1980—），女，副研究員，博士，研究方向為水產(chǎn)品加工及質量安全。E-mail：huanghuigd@aliyun.com

*通信作者：郝淑賢（1972—），女，研究員，博士，研究方向為水產(chǎn)品加工與質量安全。E-mail：susanhao2001@163.com