梁慧,薛正蓮,周揚(yáng),汪冬冬,葉楊
(安徽工程大學(xué)生物與化學(xué)工程學(xué)院,微生物發(fā)酵安徽省工程技術(shù)研究中心,安徽蕪湖,241000)
γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)是一種非蛋白質(zhì)天然氨基酸,又稱哌啶酸、氨酪酸,化學(xué)名4-氨基丁酸,是一種非蛋白質(zhì)組成的天然氨基酸,在動(dòng)物、植物和微生物中廣泛存在[1-2]。由谷氨酸(glutamic acid,Glu)經(jīng)谷氨酸脫羧酶(Glutamate decarboxylase,簡(jiǎn)稱GAD或GDC)催化而來,是哺乳動(dòng)物中樞神經(jīng)系統(tǒng)中重要的抑制性神經(jīng)遞質(zhì)[3-5]。關(guān)于GABA的測(cè)定近年來國內(nèi)外有酶法、色質(zhì)聯(lián)用法、柱層析熒光測(cè)定法、紙電泳比色、毛細(xì)管氣相色譜法、放射性受體法、毛細(xì)管電泳法、液相色譜法等,但以上方法大多成本高、費(fèi)時(shí)長,不宜用于大批量樣品的定量分析。
可見光分光光度計(jì)是常用的化合物分析測(cè)量?jī)x器[6],酶標(biāo)儀是酶聯(lián)免疫測(cè)定的常用儀器[7],測(cè)定物質(zhì)含量二者均服從朗伯-比爾定律:物質(zhì)在一定波長處的吸光度與濃度之間存在線性關(guān)系,從而實(shí)現(xiàn)對(duì)化合物定量檢測(cè)的目的??梢姽夥止夤舛扔?jì)法影響因素少,但操作繁瑣,試劑用量大,消耗時(shí)間長;酶標(biāo)儀影響因素較多,但速度快,效率高,試劑用量少,適于大批量樣品的快速分析[8]。
鑒于在菌種選育過程中,獲得的GABA乳酸菌突變株的數(shù)量多,通過96孔板發(fā)酵的樣品多,尋找與之相匹配的簡(jiǎn)便、準(zhǔn)確、快速的GABA測(cè)定方法尤為重要。本實(shí)驗(yàn)采用酶標(biāo)儀法測(cè)定GABA含量,并與分光光度計(jì)法進(jìn)行了比較,用Origin軟件對(duì)2種方法進(jìn)行擬合分析,顯示2種測(cè)定方法具有很好的一致性。到目前為止,尚未見有關(guān)酶標(biāo)儀測(cè)定GABA含量方面的相關(guān)研究報(bào)道,本實(shí)驗(yàn)研究結(jié)果對(duì)于快速,簡(jiǎn)便、準(zhǔn)確的測(cè)定GABA具有很好的指導(dǎo)意義,為高通量選育GABA乳酸菌奠定理論基礎(chǔ)。
γ-氨基丁酸(分析純),上海元吉化工有限公司;L-Glu(純度99.9%,食品級(jí)),河南蓮花味精股份有限公司;NaClO(生化試劑),國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;H3BO3(分析純),國藥集團(tuán)化學(xué)試劑總廠;硼砂(分析純),國藥集團(tuán)化學(xué)試劑總廠;6%重蒸苯酚(生化試劑),國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;FC型酶標(biāo)儀,Thermo Fisher Scientific;常溫室壓等離子體(ARTP),北京思清源生物科技有限公司;單道、八道手動(dòng)可調(diào)移液器,Sartorius;723N可見分光光度計(jì),上海佑科儀器儀表有限公司;Sorvall ST 16R Centrifug,Thermo Fisher Scientific。
糞腸乳酸球菌:本實(shí)驗(yàn)室篩選獲得。
種子培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨10、酵母提取物10、葡萄糖5、乙酸鈉 5、K2HPO40.2、檸檬酸三胺 0.2、MgSO40.2、MnSO40.05、吐溫 -80 0.1 mL/L,pH 6.5。115℃,滅菌25 min。
發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):酵母提取物5、胰蛋白胨5、葡萄糖10、丁二酸鈉5、加入1%的 L-Glu,pH 6.5。115℃,滅菌25 min。
1.4.1 GABA測(cè)定原理及方法
比色法測(cè)定GABA的原理:Berthelot反應(yīng)是利用苯酚和NaClO與游離氨反應(yīng),生成藍(lán)色的吲哚酚類(Indophenol dye),GABA在該反應(yīng)中反應(yīng)靈敏,而α-氨基酸響應(yīng)低,利用在反應(yīng)中的差別來達(dá)到測(cè)定混合氨基酸中GABA的目的[9-10]。
測(cè)定方法:參照文獻(xiàn)[10-11]進(jìn)行。吸取樣液0.8 mL,依次加入1 mol/L的 Na2CO3溶液0.2 mL,0.2 mol/L pH10.0的硼酸鹽緩沖液1 mL,6%的重蒸苯酚2 mL,混勻后加入NaClO溶液2 mL,混勻后放置4~8 min,然后沸水浴10 min,立即冰浴20 min,待溶液出現(xiàn)藍(lán)綠色后,加入4 mL 60%的乙醇溶液,混勻后放置20 min,酶標(biāo)儀在640 nm測(cè)定OD值。
1.4.2 測(cè)定方法中主要影響因素的優(yōu)化
取0.4、0.6和0.8 mol/L的標(biāo)準(zhǔn)GABA溶液0.8 mL,按1.4.1的測(cè)定方法對(duì)主要影響因素硼酸鹽緩沖液、重蒸苯酚以及NaClO的添加量進(jìn)行優(yōu)化;其中對(duì)硼酸鹽緩沖液添加量進(jìn)行優(yōu)化時(shí)0.2 mol/L pH 10.0的硼酸鹽緩沖液取值分別為0.5,0.75,1.0,1.25,1.5 mL;對(duì)6%的重蒸苯酚進(jìn)行優(yōu)化時(shí)6%的重蒸苯酚取值分別為 1.0,1.5,2.0,2.5,3.0,3.5 mL;對(duì)NaClO進(jìn)行優(yōu)化時(shí)含有效氯5.2%的NaClO溶液取值分別為 1.0,1.5,2.0,2.5,3.0 mL。
1.4.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立
采用底物L(fēng)-Glu與產(chǎn)物GABA混合配制標(biāo)樣。精確配制1 g/L GABA和1 g/L L-Glu各100 mL按表1混合制成標(biāo)準(zhǔn)液。按優(yōu)化后的方法在640 nm下酶標(biāo)儀測(cè)值繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,同時(shí)用可見光分光光度計(jì)在640 nm下進(jìn)行測(cè)定并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
表1 標(biāo)準(zhǔn)溶液GABA和L-Glu組成表Table 1 Ingredients of the standard mixed solution composed by GABA and glutamic acid
1.4.4 精密度試驗(yàn)
分別以濃度0.25 g/L和0.75 g/L的GABA按工作曲線的建立方法進(jìn)行同樣操作,按標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性回歸方程計(jì)算GABA的含量,并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
1.4.5 加標(biāo)回收率試驗(yàn)
分別取配制好的 1 g/L L-Glu 9.972、9.944、9.72、7.5、2.5 mL,添加配 制好的 1 g/L GABA 0.028、0.056、0.28、2.5、7.5 mL,配制成 0.002 8、0.005 6、0.028、0.25、0.75 g/L 的 GABA 按優(yōu)化后的方法測(cè)值,并且按標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性回歸方程計(jì)算GABA的含量,進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
1.4.6 兩種方法的擬合驗(yàn)證
將實(shí)驗(yàn)中通過ARTP誘變所獲得的75株乳酸菌突變菌經(jīng)96孔板發(fā)酵制得的發(fā)酵液離心,取上清液0.8 mL,按優(yōu)化后的方法,在640 nm下分別采用酶標(biāo)儀與可見光分光光度計(jì)進(jìn)行測(cè)值,并用origin 8.0 professional軟件擬合驗(yàn)證。
按方法1.4.2所測(cè)得的結(jié)果見圖1。
圖1 硼酸鹽緩沖液添加量對(duì)吸光度的影響Fig.1 The influence of borate buffer on absorbance
如圖1所示,隨著硼酸鹽緩沖液的添加量的增加OD值出現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),且0.4、0.6與0.8 mol/L的GABA都在添加0.75 mL的0.2 mol/L pH10.0的硼酸鹽緩沖液時(shí)OD值達(dá)到最大,這是由于添加0.75 mL的0.2 mol/L pH 10.0的硼酸鹽緩沖液所達(dá)到的pH值是Berthelot反應(yīng)的最適pH值,添加量過多過少都不利于反應(yīng)的進(jìn)行,不能使反應(yīng)達(dá)到最大效率,因此本實(shí)驗(yàn)確定添加0.2 mol/L pH10.0的硼酸鹽緩沖液0.75 mL。
按方法1.4.2所測(cè)得的結(jié)果見圖2。
圖2 6%重蒸苯酚添加量對(duì)吸光度的影響Fig.2 The influence of 6%redistilled phenol on absorbance
如圖2所示隨著6%重蒸苯酚添加量的增加,OD值呈先增加后減少的趨勢(shì),且0.4、0.6與0.8 mol/L的GABA都在添加2.5 mL 6%重蒸苯酚時(shí)達(dá)到最高OD值,究其原因?yàn)樵贐erthelot反應(yīng)中苯酚添加量與NaClO中有效氯含量存在一定比例關(guān)系[12];因此,本實(shí)驗(yàn)確定6%重蒸苯酚的添加量為2.5 mL。
按方法1.4.2所測(cè)得的結(jié)果見圖3。
圖3 NaClO的添加量對(duì)吸光度的影響Fig.3 The influence of NaClO on absorbance
如圖3所示隨著NaClO添加量的增加,OD值呈先增加后減少的趨勢(shì),且0.4、0.6與0.8 mol/L的GABA都在添加2 mL含有效氯5.2%的NaClO時(shí)達(dá)到最高OD值,其原因?yàn)樵贐erthelot反應(yīng)中2 mL 6%的重蒸苯酚與含有效氯5.2%的NaClO在一定pH條件下與游離氨反應(yīng),反應(yīng)效率最高。
按方法1.4.3分別繪制通過可見光分光光度計(jì)與酶標(biāo)儀測(cè)得的GABA濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果分別見圖4和圖5。
圖4 可見光分光光度計(jì)的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.4 The standard curve of GABA by spectrophotometer
圖5 酶標(biāo)儀的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.5 The standard curve of GABA by microplate reader
由圖5可知,GABA的濃度在0~1.0 g/L范圍內(nèi)R=0.998 9線性關(guān)系良好,可以用于GABA濃度的測(cè)定,酶標(biāo)儀法測(cè)GABA最低檢出限為0.002 8 g/L。
按方法1.4.4所測(cè)得的精密度結(jié)果見表2,該方法在低濃度和高濃度都有很好的檢測(cè)精密度,相對(duì)誤差及各組的變異系數(shù)均小于5%;表明酶標(biāo)儀法測(cè)GABA結(jié)果重現(xiàn)性好,精密度高,所得數(shù)據(jù)準(zhǔn)確。
按方法1.4.5所測(cè)得的加標(biāo)回收率數(shù)據(jù)見表3,由表可知,當(dāng)加標(biāo)濃度為檢測(cè)限的10倍時(shí),加標(biāo)回收率為92.86% ~106.07%;為檢測(cè)限的2倍時(shí),加標(biāo)回收率為83.93% ~105.36%;而為最低檢測(cè)限時(shí),加標(biāo)回收率為125.00%。鑒于加入過多或過少標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),均不能保證加標(biāo)樣品有較好的回收率并且一般的分析方法適用濃度范圍的中、高濃度水平,因此,對(duì)0.25、0.75 g/L GABA的加標(biāo)回收率進(jìn)行測(cè)定,加標(biāo)回收率為98.27%~103.60%,表明酶標(biāo)儀法可以用于GABA濃度的測(cè)定。
按方法1.4.5,分別用可見光分光光度計(jì)與酶標(biāo)儀對(duì)75株乳酸菌發(fā)酵液中GABA的含量進(jìn)行測(cè)定,并進(jìn)行擬合,驗(yàn)證兩方法之間的相關(guān)性,擬合曲線見圖6。
表2 精密度試驗(yàn)Table 2 Accuracy examinations
表3 加標(biāo)回收率Table 3 Recoveries of spiked sample
圖6 分光光度計(jì)法與酶標(biāo)儀法的擬合曲線Fig.6 The fitting curve of the spectrophotometer and enzyme-labelling measuring instrument
相關(guān)系數(shù)的正負(fù)表示的是相關(guān)的方向,而相關(guān)的強(qiáng)度決定于相關(guān)系數(shù)的絕度值。統(tǒng)計(jì)學(xué)家根據(jù)經(jīng)驗(yàn)給出了判斷相關(guān)關(guān)系強(qiáng)弱的標(biāo)準(zhǔn),把R=0.70看成是一個(gè)中等到較高的相關(guān)[13]。本實(shí)驗(yàn)的樣本量為75,相關(guān)系數(shù)R=0.949 3,說明酶標(biāo)儀法和可見光分光光度計(jì)之間具有較高的正相關(guān)性,酶標(biāo)儀法可以作為快速、準(zhǔn)確地測(cè)定發(fā)酵液中GABA含量的有效方法。
本實(shí)驗(yàn)基于Berthelot反應(yīng)原理,對(duì)酶標(biāo)儀測(cè)定GABA含量方法的主要因素進(jìn)行優(yōu)化,并對(duì)該方法進(jìn)行精密度檢驗(yàn),表明酶標(biāo)儀法測(cè)GABA可靠性高。本實(shí)驗(yàn)還通過分光光度計(jì)與酶標(biāo)儀對(duì)ARTP誘變獲得的75株突變株分別進(jìn)行測(cè)值并進(jìn)行擬合,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明2種測(cè)定方法具有很好的一致性。酶標(biāo)儀能快速,簡(jiǎn)便、準(zhǔn)確、大批量的測(cè)定發(fā)酵液中GABA含量,為高通量選育GABA乳酸菌奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
[1] 葉惟泠.γ-氨基丁酸的發(fā)現(xiàn)史[J].生理科學(xué)進(jìn)展,1986,17(2):187-189.
[2] Krajnc D,Neff N H,Hadjiconstantinou M.Glutamate,glutamine and glutamine synthetase in the neonatal ratbrain following hypoxia[J].Brain Res,1996,707(1):134-137.
[3] 王芳權(quán),陳蔚青,陳虹.比色法快速測(cè)定酶轉(zhuǎn)化反應(yīng)中γ-氨基丁酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)[J].氨基酸和生物資源,2006,28(2):78-81.
[4] YU Kai,HU Sheng,HUANG Jun,et al.A high-throughput colorimetric assay to measure the activity of glutamate decarboxylase[J].Enzyme and Microbial Technology,2011,49(3):272-276.
[5] Wan-Chung Liao,Chung-Yi Wang,Yuan-Tay Shyu,et al.Influence of preprocessing methods and fermentation of adzuki beans on γ-aminobutyric acid(GABA)accumulation by lactic acid bacteria[J].Fuctional Foods,2013,5(3):1 108-1 115.
[6] 吳洪新,單昌輝,李薇,等.紫外分光光度計(jì)法測(cè)定菊粉多糖[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,36(13):5 251-5 253.
[7] 劉超英.酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)原理和酶標(biāo)儀原理及維修[J].儀器原理,2009,30(2):110-111.
[8] 范鵬,蔣林東,王小丹,等.紫外分光光度計(jì)與酶標(biāo)儀測(cè)定鹽酸川芎嗪含量的比較[J].西南國防醫(yī)藥,2010,20(7):720-722.
[9] 何秋云,楊志偉.馬鈴薯中γ-氨基丁酸快速測(cè)定方法的研究[J].食品科技,2010,35(10):262-266.
[10] 楊勝遠(yuǎn),陸兆新,呂鳳霞,等.谷氨酸脫羧酶活力測(cè)定中GABA比色定量方法研究[J].食品科學(xué),2006,27(7):205-209.
[11] Kitaoka S,Nakano Y.Colorimetric determination of ω-amino acids[J].The Journal of Biochemistry,1969,66(1):87-94.
[12] 孫波,梁海文,遲玉杰,等.比色法快速測(cè)定酶轉(zhuǎn)化反應(yīng)中γ-氨基丁酸含量的研究[J].食品科技,2008,33(5):210-213.
[13] 葉子弘,陳春.生物統(tǒng)計(jì)學(xué)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2012:100-109.