曾 凱,王 永,陳美華,歐陽(yáng)秋芳(福建中醫(yī)藥大學(xué)附屬福建省第二人民醫(yī)院心內(nèi)科,福州 350003;福建中醫(yī)藥大學(xué)附屬福建省第二人民醫(yī)院超聲科;通訊作者,E-mail:fjzengkai@6.com)
冠脈微栓塞(coronary microembolization,CME)是臨床上十分常見(jiàn)的病理生理過(guò)程,嚴(yán)重地影響患者的心功能及預(yù)后。CME的本質(zhì)是心肌微小血管栓塞及微循環(huán)灌注障礙[1],故更有針對(duì)性的干預(yù)切入點(diǎn)應(yīng)是恢復(fù)心肌組織的血流灌注?;謴?fù)血流灌注常用的方法主要有各種干細(xì)胞移植、各種生長(zhǎng)因子干預(yù)及某些藥物刺激等。上述方法有別于外科搭橋手術(shù)及其他血管重建術(shù),但其目標(biāo)仍然是重建有效心肌血供,故被形象的稱為“誘導(dǎo)性心臟自身搭橋”或“治療性心肌血管再生”[2]。
動(dòng)物試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)他汀類藥物具有促血管再生及改善心肌微循環(huán)的效應(yīng)[3]。血管再生包括血管再生(angiogenesis)和血管發(fā)生(vasculogenesis),他汀類對(duì)這兩個(gè)過(guò)程均有重要的影響[4];他汀類改善心肌微循環(huán)障礙主要是繼發(fā)于甲烴戊酸通路的中間產(chǎn)物異戊烯類的生物合成減少,甲烴戊酸的合成減少可以使Akt(絲氨酸-蘇氨酸激酶)磷酸化而激活,從而使eNOs活性和穩(wěn)定性增加,使心肌NO的水平升高[5]?;诖思僭O(shè),本實(shí)驗(yàn)擬建立一種穩(wěn)定的大鼠CME模型,旨在探討辛伐他汀干預(yù)對(duì)CME后心肌微小血管保護(hù)與微小血管再生的影響及可能機(jī)制。
SPF級(jí)SD大鼠40只,雌性,體重(300±20)g,由福建醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及實(shí)驗(yàn)步驟符合國(guó)家實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理?xiàng)l例。
辛伐他汀原藥粉(廣州南新公司),NO試劑盒(南京建成生物醫(yī)學(xué)工程研究所),Ⅷ因子相關(guān)抗原多克隆抗體,PE、TRITC標(biāo)記的山羊抗大鼠的二抗(北京中山生物技術(shù)有限公司),鹽酸氯胺酮(江蘇恒瑞醫(yī)藥股份有限公司)。
TKR-200C小動(dòng)物呼吸機(jī)由江西省特力麻醉呼吸設(shè)備公司提供;多功能生理記錄儀BL-420E型由成都泰盟儀器廠提供,GE SYSTEMⅤ超聲心動(dòng)圖儀及5-MHZ多平面經(jīng)食道超聲探頭由美國(guó)GE公司提供;IMAGE PRO 4.0顯微鏡結(jié)合計(jì)算機(jī)顯微圖像分析系統(tǒng)由日本Olympus公司提供。
1.4.1 CME模型建立 選用SPF級(jí)大鼠,從每只尾靜脈取血2 ml凝固成血栓,CS501-3C恒溫箱37℃過(guò)夜烘干,后取玻璃研磨器研磨,38 μm濾網(wǎng)濾過(guò)使之成為較均勻顆粒。電子天平稱重8 mg血栓顆粒供每只動(dòng)物實(shí)驗(yàn)備用。次日在大鼠腹腔注射戊巴比妥鈉50 mg/kg麻醉后,取仰臥位,術(shù)區(qū)備皮消毒,氣管插管,呼吸機(jī)輔助通氣。取第2肋間水平橫切口,剪斷胸骨,切開(kāi)心包,暴露主動(dòng)脈根部,取已稱好的血栓顆粒溶于0.5 ml生理鹽水中,用1 ml注射針桶吸取血栓懸浮液,使用直徑0.5 mm細(xì)針刺入心尖部,同時(shí)鉗夾升主動(dòng)脈,10 s后松開(kāi)鉗夾的升主動(dòng)脈,壓迫穿刺口止血,關(guān)胸復(fù)蘇。為防止動(dòng)物術(shù)后感染,每天肌注青霉素40萬(wàn)U/只,連續(xù)3 d。
1.4.2 分組及干預(yù)方案 40只大鼠隨機(jī)分成5組:對(duì)照組(C組)、假手術(shù)組(sham組)、CME模型組(M組)、辛伐他汀干預(yù)組(ST組)及辛伐他汀加N-硝酸-L-精氨酸甲酯(L-NAME)干預(yù)組(STN組),全部模型均制作成功,每組各8只動(dòng)物。干預(yù)方案:ST組CME模型制備后,以辛伐他汀2 mg/kg/d,用生理鹽水稀釋到5 ml灌胃,每日一次。STN組:模型制備后,以辛伐他汀2 mg/(kg·d)加N-硝酸-L-精氨酸甲酯15 mg/(kg·d)用生理鹽水稀釋到5 ml灌胃,每日一次。M組:模型制備后,予生理鹽水灌胃,每日一次,一次5 ml。sham組:手術(shù)方法同M組,自心尖部注入生理鹽水替代血栓微粒,術(shù)后予生理鹽水灌胃,每日一次,一次5 ml。C組:未手術(shù)大鼠,予生理鹽水灌胃,每日一次,一次5 ml。所有動(dòng)物均在飼養(yǎng)28 d處死。
1.4.3 主要指標(biāo)檢測(cè) 采用Ⅷ因子染色評(píng)定單位面積心肌微小血管的密度,免疫熒光檢測(cè)單位面積心肌微小血管的數(shù)量,采用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)測(cè)定心肌組織勻漿NO含量。嚴(yán)格按照使用說(shuō)明書進(jìn)行操作。
Ⅷ因子染色結(jié)果顯示,術(shù)后28 d,sham組與C組比較,微小血管密度差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。M組與sham組比較,微小血管密度明顯減少(P<0.01)。ST組與M組比較,微小血管密度明顯增加(P<0.01);STN組與ST組比較,微小血管密度顯著減少(P<0.01,見(jiàn)表1)。C組及sham組心肌微小血管密度正常,M組心肌微小血管密度明顯降低,ST組辛伐他汀干預(yù)后心肌微小血管密度明顯多于M組,STN組L-NAME干預(yù)后心肌微小血管密度較ST組減少(圖1,見(jiàn)第160頁(yè))。
表1 冠脈微栓塞后心肌內(nèi)微小血管密度、微小血管數(shù)量、NO含量比較及辛伐他汀干預(yù)的影響(±s)Table 1 Density of micro-vessel,num ber of micro-vessel and level of NO in myocardium after coronary microembolization and the invention effect of simvastatin(±s)
表1 冠脈微栓塞后心肌內(nèi)微小血管密度、微小血管數(shù)量、NO含量比較及辛伐他汀干預(yù)的影響(±s)Table 1 Density of micro-vessel,num ber of micro-vessel and level of NO in myocardium after coronary microembolization and the invention effect of simvastatin(±s)
與C組和sham比較,*P<0.01;與 M組比較,#P<0.01;與 ST組比較,ΔP <0.01
組別 n 微小血管密度/(/mm2)微小血管數(shù)量/(/mm2)NO含量/(mmol/kg)C組8 7.25 ±0.27 0 27.70 ±1.03 sham 組 8 7.32 ±0.19 0 27.75 ±1.28 M組 8 3.32 ±0.16*1.30 ±0.15* 20.87 ±2.23*ST 組 8 5.05 ±0.24#4.49 ±0.57# 26.37 ±1.30#STN 組 8 3.59 ±0.42Δ 3.28 ±0.22Δ 15.38 ±1.41Δ
免疫熒光結(jié)果顯示,ST組與M組比較,微小血管數(shù)量明顯增加(P<0.01),STN組與ST組比較,微小血管數(shù)量顯著減少(P<0.01,見(jiàn)表1)。
與M組相比,ST組辛伐他汀干預(yù)后心肌新生微小血管明顯增多,STN組L-NAME干預(yù)后心肌新生微小血管較ST組減少(圖2,見(jiàn)第161頁(yè))。
圖1 冠脈微栓塞后心肌內(nèi)微小血管密度比較及辛伐他汀干預(yù)的影響(HE染色,bar=100 μm)Figure 1 Effect of simvastatin on density of micro-vessel in myocardium after coronary microembolization (HE,bar=100 μm)
圖2 冠脈微栓塞后心肌內(nèi)微小血管數(shù)量比較及辛伐他汀干預(yù)的影響(免疫熒光染色×100)Figure 2 Effect of simvastatin on number of micro-vessel in myocardium after coronary microembolization(immunofluorescence,×100)
術(shù)后28 d,sham組與C組比較NO含量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);M組與sham組比較,NO含量顯著下降(P<0.05);ST組與M組比較,NO含量顯著增加(P<0.01)。STN組與ST組比較,NO含量顯著下降(P <0.01,見(jiàn)表1)。
引起CME的常見(jiàn)原因有斑塊自發(fā)破裂、經(jīng)皮冠脈介入治療(PCI)術(shù)中機(jī)械損傷致斑塊破裂、溶栓術(shù)中血栓溶解不全等,CME嚴(yán)重時(shí)可引起患者猝死[1,2]。CME發(fā)生后慢性過(guò)程中心功能仍然持續(xù)性或進(jìn)行性惡化[6]。因此,尋找CME后慢性過(guò)程中有效的干預(yù)措施顯然十分重要。
他汀類藥物是當(dāng)前最強(qiáng)效的降低血清膽固醇或LDL-C的藥物,臨床廣泛應(yīng)用于高膽固醇血癥的治療及冠心病的一級(jí)、二級(jí)預(yù)防。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,術(shù)后28 d,辛伐他汀組與模型組比較,心肌內(nèi)微小血管密度和新生微小血管數(shù)量明顯增加。初步證實(shí)了CME后辛伐他汀干預(yù)可減少心肌微小血管的破壞并增加心肌微小血管及毛細(xì)血管的再生。大量研究表明,他汀類藥物可促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞釋放NO,從而達(dá)到保護(hù)內(nèi)皮細(xì)胞的作用。本研究也進(jìn)一步證實(shí),經(jīng)辛伐他汀處理的動(dòng)物其心肌組織中的NO含量明顯升高。NO與內(nèi)皮細(xì)胞的遷移關(guān)系密切[7],NO還可以促進(jìn)內(nèi)皮祖細(xì)胞表面整合素的表達(dá),整合素可支持血管細(xì)胞建立的新血管,這在微血管再生中起到關(guān)鍵性的作用[8];同時(shí),NO也可以動(dòng)員骨髓內(nèi)皮祖細(xì)胞,增加循環(huán)EPCs數(shù)目,促進(jìn)微血管的發(fā)生[9]。NO為血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)的下游效應(yīng)器,有調(diào)節(jié)血管VEGF促血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖作用[10]。因此,他汀刺激NO的釋放可能就是通過(guò)上述機(jī)制發(fā)揮促進(jìn)血管新生的作用。
L-NAME是NO的特異性阻斷劑之一,我們的研究結(jié)果證實(shí),經(jīng)L-NAME處理的動(dòng)物,辛伐他汀對(duì)CME后新生血管生成的促進(jìn)作用部分消失,進(jìn)一步表明辛伐他汀可能是通過(guò)NO介導(dǎo)的信號(hào)通路來(lái)發(fā)揮促進(jìn)血管新生作用的。
綜上所述,辛伐他汀可增加冠脈微栓塞后心肌內(nèi)微小血管密度和新生微小血管數(shù)量,而這種作用可能是通過(guò)NO介導(dǎo)的。
[1]Su Q,Li L,Liu YC,et al.Effect of metoprolol on myocardial apoptosis and caspase-9 activation after coronary microembolization in rats[J].Exp Clin Cardiol,2013,18(2):161-165.
[2]Chen Z,Qian J,Ma J,et al.Glucocorticoid ameliorates early cardiac dysfunction after coronary microembolization and suppresses TGF-β1/Smad3 and CTGF expression[J].Int J Cardiol,2013,167(5):2278-2284.
[3]Asai J,Takenaka H,Hirakawa S,et al.Topical simvastatin accelerates wound healing in diabetes by enhancing angiogenesis and lymphangiogenesis[J].Am J Pathol,2012,181(6):2217-2224.
[4]Shimada T,Takeshita Y,Murohara T,et al.Angiogenesis and vasculogenesis are impaired in the precocious-aging klotho mouse[J].Circulation,2004,110(9):1148-1155.
[5]Scalia R,Gooszen ME,Joines SP,et al.Simvastatin exerts both anti-inflammatory and cardioprotective effect in apolipoprotein E-deficient mice[J].Circulation,2001,103(21):2598-2603.
[6]Otto S,Seeber M,F(xiàn)ujita B,et al.Microembolization and myonecrosis during elective percutaneous coronary interventions in diabetic patients:an intracoronary Doppler ultrasound study with 2-year clinical follow-up[J].Basic Res Cardiol,2012,107(5):289-294.
[7]Marcelo KL,Goldie LC,Hirschi KK.Regulation of endothelial cell differentiation and specification [J].Circ Res,2013,112(9):1272-1287.
[8]Vaiyapuri S,Hutchinson EG,Ali MS,et al.Rhinocetin,a venomderived integrin-specific antagonist inhibits collagen-induced platelet and endothelial cell functions[J].J Biol Chem,2012,287(31):26235-26244.
[9]Mourino-Alvarez L,Calvo E,Moreu J,et al.Proteomic characterization of EPCs and CECs“in vivo”from acute coronary syndrome patients and control subjects[J].Biochim Biophys Acta,2013,1830(4):3030-3053.
[10]Follin B,Tratwal J,Haack-S rensen M,et al.Identical effects of VEGF and serum-deprivation on phenotype and function of adipose-derived stromal cells from healthy donors and patients with ischemic heart disease[J].J Transl Med,2013,11(1):219.