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        基于DSPE-LC-MS/MS法的畜禽產品中雌激素的測定

        2014-12-16 08:08:28孫媛媛唐曉姝張秋香印伯星房東升
        食品工業(yè)科技 2014年23期
        關鍵詞:檢測

        王 剛,孫媛媛,唐曉姝,張秋香,印伯星,房東升,張 灝,陳 衛(wèi),2,*

        (1.江南大學食品學院,江蘇無錫214122;2.江南大學食品科學與技術國家重點實驗室江蘇無錫214122;3.揚州市揚大康源乳業(yè)有限公司,江蘇揚州225004)

        環(huán)境激素是由于人類的生產及活動而釋放到周圍環(huán)境中,能夠影響人類或動物的內分泌、神經(jīng)和免疫系統(tǒng)等,從而導致其生殖、發(fā)育異常甚至惡性腫瘤發(fā)生等異常生物學效應的一類環(huán)境污染物[1-6]。1996年歐盟首次將環(huán)境激素分為5大類,其中類固醇類雌激素是一類生物活性最強的環(huán)境激素[7]。雌激素可以分為天然雌激素和人工合成雌激素兩大類:天然雌激素主要來源于人體和哺乳動物,又稱為內源性雌激素,主要包括雌酮(estrone,E1)、雌二醇(estradiol,E2)和雌三醇(estriol,E3)等;人工合成雌激素以己烯雌酚(diethylstibestrol,DES)為代表。雌激素類藥物在畜禽養(yǎng)殖中具有通過蛋白質同化作用提高食欲的功效,曾被用來提高飼料轉化率,促進動物生長。但由于人工合成雌激素具有致癌作用,美國和加拿大已限量使用,而歐盟則禁止使用[8-9]。我國也于2002年發(fā)布《中華人民共和國農業(yè)部公告第235號》,明確將DES及其鹽列為禁止使用的藥物,在動物性食品中不得檢出[10]。然而現(xiàn)階段雌激素在動物養(yǎng)殖過程中濫用的情況時有發(fā)生,畜禽類產品中的雌激素殘留已經(jīng)成為一個日益嚴重的食品安全問題。因此,對畜禽產品中雌激素的含量進行檢測很有必要。

        雌激素檢測的傳統(tǒng)方法通常有免疫法[11]、液相色譜串聯(lián)質譜法[12]、氣相色譜串聯(lián)質譜法[13]等。本實驗室曾建立了用分散固相萃取方法(DSPE)前處理、液相色譜串聯(lián)四級桿質譜(LC-MS/MS)測定牛奶及酸奶中雌激素含量的檢測方法(DSPE-LC-MS/MS)[14]。本研究在此基礎上,進一步使用該方法對部分畜禽產品中4種雌激素的殘留進行了分析。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        雌酮(E1)、雌二醇(E2,96.7%)、雌三醇(E3,97.4%)、己烯雌酚(DES,99.9%) 中國藥品生物制品檢定所;乙腈、甲醇、醋酸(色譜純)Tedia公司;分析純無水硫酸鈉、無水硫酸鎂、氯化鈉,弗羅里硅土(Florisil,60-100 目),中性氧化鋁(Alumina-N,100-200目):國藥集團;N-丙基乙二胺(PSA)Agilent公司;雞肉、牛肉、豬肉、雞肝及雞蛋等 當?shù)厥袌觥?/p>

        超高效液相-串聯(lián)四級桿質譜儀(UPLC-TQD)及 ACQUITY BEH C18柱(1.7μm,100mm × 2.1mm)美國Waters公司;超聲儀(SB4200DT) 寧波新芝生物技術;電子天平 EL3002(d=0.01g)、分析天平AB103-N(d=0.0001g) 瑞士Mettler Toledo公司;超速離心機(D-78532) 德國Hettich公司;小型高速離心機(5415R) 德國Eppendorf公司;九陽攪拌機(JYL-C020) 九陽股份有限公司。

        1.2 實驗方法

        標準溶液配制:分別精確稱取 E1、E2、E3、DES各2mg置于5mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容,配制成終濃度為400mg/L的單標儲備液,-20℃保存;為達到快速檢測的目的,將4種單標儲備液按一定比例混合配成混合標準液,以繪制標準曲線。由于質譜儀對4種雌激素的響應值不同,通過調整將單標儲備液按比例 E1∶E2∶E3∶DES=2∶8∶8∶1 混合,以保證4種雌激素的峰面積在同一數(shù)量級上。

        樣品制備:稱取剔除骨、皮的動物肌肉組織及內臟樣本200g,用家用攪拌器進行攪拌粉碎,-20℃密封保存;雞蛋只需于實驗前去蛋殼,將蛋清與蛋黃打碎攪勻。向攪碎的畜禽產品中添加不同濃度的混合標準液(每種濃度做6組平行),充分攪拌均勻后超聲5min;取4.00g樣品置于50mL聚丙烯離心管中,加入8mL乙腈,渦旋振蕩5min后并于室溫下超聲20min 以充分萃取;加入 0.05g NaCl和 1.60g 無水MgSO4,渦旋振蕩1min,8000r/min、4℃離心10min;取1mL上清至1.5mL離心管中,加入80mg PSA,渦旋振蕩 1min,6000r/min、4℃離心 6min,上清液經(jīng) 0.22μm微孔濾膜過濾,濾液用LC-MS/MS測定。

        液相色譜條件[14]:色譜柱:ACQUITY BEH C18(1.7μm,100mm × 2.1mm);流動相:1% 醋酸銨溶液(A)和甲醇(B);采用梯度洗脫程序:0~0.3min,90%A,10%B(保持 0.2min);0.5~2min,10%A,90%B;2~3min,0% A,100% B(保 持 2min);流 速:0.3mL/min;進樣體積:2μL。

        質譜條件[14]:電離方式:ESI-;霧化器壓力:310.3kPa;離子噴霧電壓:4000V;干燥器(N2)流速:650L/min;柱溫:40℃;離子源溫度:120℃;檢測以多反應監(jiān)測(MRM)方式掃描;4種雌激素經(jīng)優(yōu)化后的質譜分析參數(shù)見表1。

        表1 4種雌激素質譜分析參數(shù)Table 1 MS/MS parameters of 4 estrogens

        數(shù)據(jù)處理:作圖及實驗數(shù)據(jù)統(tǒng)計、分析均使用Microsoft office Excel 2013。

        2 結果與討論

        2.1 樣品前處理條件的選擇

        萃取劑與其用量對回收率的影響:同處理牛奶及酸奶樣品結果相似[14],當分別使用乙腈和甲醇以沉淀畜禽產品中的蛋白質并萃取雌激素時,甲醇處理后的樣品離心分層效果不明顯,上清液較渾濁;而乙腈萃取的樣品分層效果明顯,上清液清澈。因此本實驗的萃取溶劑仍選擇乙腈。經(jīng)調整,當使用8mL乙腈處理4.0g畜禽樣品時,萃取液可達澄清且足夠檢測。

        吸水劑及其用量對回收率的影響:本研究發(fā)現(xiàn)在雞肉中以無水MgSO4作為吸水劑時,4種雌激素的回收率要明顯高于使用相同量的無水Na2SO4作為吸水劑(結果未顯示)。因此選擇無水MgSO4作為樣品制備時的吸水劑并進一步對雞肉樣品中無水MgSO4的最適加入量進行了研究。如圖1所示,在4.0 g雞肉樣品中加入0.05g NaCl及不同量的無水MgSO4,分別檢測其回收率。結果顯示當加入 1.60g無水MgSO4時,4種雌激素的回收率最高,隨著無水MgSO4含量的增加,回收率幾乎保持不變或稍稍有所下降。因此在本研究中每4.00g畜禽產品中無水MgSO4的添加量定為 1.60g。

        圖1 添加無水MgSO4對回收率的影響Fig.1 Effect of MgSO4amount on the recovery of 4 estrogens

        固相分散吸附劑對回收率的影響:本研究分別以PSA、Florisil和Alumina-N作為固相分散吸附劑檢測了其對雞肉中雌激素回收率的影響。同牛奶中的情況一致,PSA處理過的樣品明顯澄清于用Florisil和Alumina-N處理的樣品(結果未顯示)。因此,選擇PSA作為分散固相吸附劑。

        2.2 流動相選擇及質譜條件優(yōu)化

        由于檢測的雌激素相同,本研究沿用了在檢測牛奶及酸奶中雌激素的流動相參數(shù)以及質譜條件[14]。流動相具體參數(shù)為:體積分數(shù)為1%的醋酸銨水溶液和甲醇溶液。

        2.3 基質效應

        為了評估畜禽產品基質對雌激素檢測的影響,本實驗在質譜分析中比較了加標雞肝、雞肉、牛肉及雞蛋等樣品的響應值(a)與加標純水的響應值(b)的比率(a/b×100,%)。當該比值等于100%時,說明待測物無基質效應;如果比值小于100%,說明基質對待測物的離子響應產生了抑制作用;若比值大于100%,則說明基質的存在增強了待測物的離子響應強度[15]。由表 2可見,4種雌激素的響應比率為90.16%~99.01%,均在 90%以上。畜禽產品基質對4種雌激素的離子響應均只產生了微弱的抑制作用[15]。

        表2 4種雌激素在不同樣品中的基質效應Table 2 Matrix effects of animal products on 4 estrogens

        2.4 線性范圍、標準曲線和檢出限

        以雌激素的質量濃度為X(μg/L),以目標組分的峰面積為Y(S)作標準曲線,得到4種雌激素對應的線性方程及相關系數(shù)。如表3所示,各校準曲線相關系數(shù)的平方值(R2)均大于0.99,4種雌激素的質量濃度在8~1500μg/L具有良好的線性關系。以信噪比為3(S/N=3)時,最低檢出限(LOD)可達到0.66μg/L,根據(jù)樣品處理方式(樣品∶乙腈 =1∶2)折算至畜禽產品各雌激素最低檢出限為:LOD(E1)=8.06μg/kg,LOD(E2)=16.52μg/kg,LOD(E3)=5.86μg/kg,LOD(DES)=1.32μg/kg。

        表3 4種雌激素的線性方程、相關系數(shù)、檢出限和線性范圍Table 3 Regression equation,correlation coefficient(R2),detection limits and linear range of 4 estrogens

        2.5 回收率與精密度

        在雞肝、雞肉和牛肉樣品中分別添加3個濃度水平的4種雌激素混合標準液,每個添加濃度重復測定6次,計算添加回收率和測定結果的相對標準偏差(表4)。雞肝中4種雌激素的回收率為75.00%~79.13% ,相對標準偏差為 0.47% ~8.82%;雞肉中 4種雌激素的回收率為77.40%~81.28%,相對標準偏差為0.42%~6.57%;牛肉中4種雌激素的回收率為75.25% ~80.61% ,相對標準偏差為 0.24% ~6.25%;雞蛋中4種雌激素的回收率為92.36%~96.63%,相對標準偏差為0.21%~2.06%。采用本方法檢測,雌激素在禽蛋中的回收率最高可達96.63%,而在基質更為復雜的畜禽肉類中雌激素的回收率也均在75%以上,參照畜肉產品中其他物質的檢測[16-18],本方法基本能夠滿足畜禽產品中E1、E2、E3、DES檢測的要求。

        2.6 實際樣品檢測

        取不同批次和種類的畜禽產品(每種樣品樣本數(shù)≥5),按照實驗方法1.2中“樣品制備”進行樣品前處理操作(不添加混合標準液),運用LC-MS/MS進行分析,計算各樣品中4種雌激素殘留量的平均值,結果見表5。從表格中可以看到:E1在各樣品中均無檢出,雞蛋和豬肉中檢測出微量的E2和E3,在所有樣品中均未檢出人工合成雌激素DES。天然雌激素主要來源于卵巢的卵泡顆粒細胞和卵泡內膜細胞。在動物體內,E2活性最強、含量最多,在體內代謝后轉化為E1和 E3,一般動物肌肉中的平均自然濃度約為10ng/g[19]。本實驗所收集樣品中檢測到的E2,E3含量均在天然濃度范圍內,且未檢測到人工合成雌激素DES,可以排除飼養(yǎng)過程中人為添加雌激素的情況。

        表4 4種雌激素在雞肝、雞肉、牛肉和雞蛋中的加標回收率和相對標準偏差(n=6)Table 4 Spiked recoveries and RSD of 4 estrogens in chicken liver,chicken,beef and egg(n=6)

        表5 樣品中4種雌激素含量測定Table 5 4 estrogens content in the animal products on market

        3 結論

        本研究利用實驗室建立的在牛奶及酸奶中檢測雌激素含量的DSPE-LC-MS/MS分析方法對畜禽產品包括雞肉、雞肝、雞蛋、牛肉及豬肉中的4種雌激素進行了檢測,取得了較為滿意的結果。該檢測手段采用DSPE前處理方法,操作簡便、無需特殊設備,對于畜禽產品中雌激素的提取凈化效果較好,回收率較高,所得樣品經(jīng)液相色譜質譜聯(lián)用檢測靈敏度高、無明顯基質效應。該方法可用于畜禽產品中E1、E2、E3以及DES等雌激素的殘留檢測。

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