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        大鼠缺血性急性腎損傷對(duì)海馬CA1區(qū)的形態(tài)學(xué)影響*

        2014-12-03 03:51:12朱立志李郭錦李曉明
        天津醫(yī)藥 2014年2期
        關(guān)鍵詞:光鏡細(xì)胞質(zhì)電鏡

        朱立志 李郭錦 田 鶴 李曉明 郭 敏△

        急性腎損傷(acute kidney injury,AKI)是臨床常見癥候群,病死率極高,除AKI外,AKI誘導(dǎo)的腎外器官損傷如急性肝、肺損傷等,也構(gòu)成患者死亡原因[1]。引起AKI的原因多為腎缺血,又稱缺血性急性腎損傷(IAKI)。Caspase依賴的細(xì)胞死亡和聚二磷酸腺苷核糖聚合酶1(PARP-1)介導(dǎo)的細(xì)胞死亡是2種典型的不同形式的細(xì)胞死亡,caspase-3是外源性凋亡的執(zhí)行者[2],細(xì)胞死亡過程中PARP-1的過度激活可致受損細(xì)胞死亡,又稱PARP-1介導(dǎo)的細(xì)胞死亡[3]。IAKI可引起中樞神經(jīng)系統(tǒng)癥狀和體征,如急性尿毒癥性腦病,其機(jī)制不明[4],原因之一是尚不完全清楚神經(jīng)元對(duì)IAKI的反應(yīng)機(jī)制。海馬是對(duì)外源性刺激,如缺血、游離基等反應(yīng)最為敏感的部位[5],盡管有學(xué)者通過光鏡觀察了海馬神經(jīng)元對(duì)IAKI的反應(yīng)[6],但有關(guān)IAKI對(duì)海馬神經(jīng)元形態(tài)學(xué)的影響尚鮮見報(bào)道。本研究復(fù)制了IAKI大鼠模型,應(yīng)用光鏡、電鏡、免疫組織化學(xué)及免疫印跡技術(shù)對(duì)海馬CA1區(qū)神經(jīng)元進(jìn)行觀察和分析,報(bào)告如下。

        1 材料與方法

        1.1 材料 (1)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物。清潔級(jí)SD大鼠12只,8周齡,雌雄各半,體質(zhì)量250~300 g,購自大連醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,許可證號(hào):SCXK(遼)2008-0002。飼養(yǎng)于遼寧醫(yī)學(xué)院SPF級(jí)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室,許可證號(hào):SYXK(遼)2009-0004。(2)主要試劑及儀器。羊抗大鼠PARP-1(Santa Cruz公司)、兔抗大鼠caspase-3單克隆抗體(abcam公司);二抗試劑盒(辣根酶標(biāo)記抗羊和羊抗兔多聚體、辣根過氧化酶標(biāo)記抗羊和羊抗兔IgG抗體)、β-actin鼠單克隆抗體及DAB顯色試劑盒(北京中杉金橋生物有限公司)。LKB-V型超薄切片機(jī)(德國Leica公司),EX1200透射電鏡(日本電子公司)。

        1.2 方法

        1.2.1 動(dòng)物模型制備 動(dòng)物以苦味酸編號(hào),之后按單純隨機(jī)法(按隨機(jī)數(shù)字表)將動(dòng)物分為2組,實(shí)驗(yàn)組(IAKI組)8只,苯巴比妥鈉麻醉后開腹,應(yīng)用無損傷血管夾阻斷雙側(cè)腎動(dòng)脈血流60 min后放開血管夾。對(duì)照組(sham組)4只,手術(shù)過程同前,但不阻斷腎動(dòng)脈血流。2組動(dòng)物關(guān)腹后于無菌條件下飼養(yǎng)24 h后取材。

        1.2.2 取材 各組一半動(dòng)物麻醉后經(jīng)腹主動(dòng)脈取血2 mL用于腎功能常規(guī)檢查。然后經(jīng)心室用2.5%多聚甲醛戊二醛灌流固定大腦,經(jīng)200 mL成功灌注(大鼠出現(xiàn)去大腦強(qiáng)直表現(xiàn))后,取大腦入同樣固定液進(jìn)行浸潤(rùn)固定48 h;另一半動(dòng)物斷頭后迅速切取海馬組織用于免疫印跡測(cè)定分析。

        1.2.3 光鏡電鏡標(biāo)本制備 部分多聚甲醛戊二醛固定的腦組織經(jīng)水洗后進(jìn)行系列乙醇脫水,二甲苯透明后石蠟定向包埋,行7~8 μm厚切片,部分切片蘇木素、伊紅染色,光鏡觀察;部分切片免疫組織化學(xué)染色備用。部分經(jīng)2.5%多聚甲醛戊二醛固定的腦組織再經(jīng)1%鋨酸后固定后,常規(guī)電鏡標(biāo)本制備,樹脂Epon812包埋,LKB-V型超薄切片機(jī)半薄切片,厚1 μm,甲苯胺藍(lán)染色,光鏡觀察海馬各區(qū)定位后再行超薄切片,厚70 nm,重金屬雙染色,EX1200透射電鏡觀察。

        1.2.4 PARP-1和caspase-3免疫組織化學(xué)染色 采用石蠟切片免疫組化Envision法。切片常規(guī)脫蠟至水,3%過氧化氫溶液處理30 min以去除內(nèi)源性過氧化物酶,高壓修復(fù)抗原,分別滴加稀釋(1∶100)的一抗(PARP-1和caspase-3單克隆抗體)4℃過夜,滴加辣根酶標(biāo)記的抗羊和羊抗兔多聚體(PV6001)37℃孵育30 min,DAB顯色。以上各步驟之間用0.01 mol/L PBS洗滌3次,蘇木素復(fù)染,脫水,透明,中性樹膠封片,光鏡下觀察。陰性對(duì)照用PBS替代一抗。蛋白陽性表達(dá)呈棕黃色,PARP-1陽性顆粒分布于細(xì)胞核,caspase-3陽性顆粒出現(xiàn)在細(xì)胞質(zhì)。

        1.2.5 PARP-1和caspase-3免疫印跡檢測(cè) 各組新鮮海馬組織加入RIPA裂解液,0℃下剪碎和超聲波粉碎20 s后靜置30 min,4℃下12 000 r/min離心20 min,留取上清液,BCA法測(cè)定蛋白含量,并按每20 μL含50 μg蛋白制成樣品,-20℃冰箱保存。取已制備樣品適量加入電泳槽,100 V電壓下電泳,轉(zhuǎn)膜,常溫下半干轉(zhuǎn)印,TBST沖洗后,5%小牛血清白蛋白室溫封閉1~2 h。分別加入一抗(PARP-1和caspase-3抗體,稀釋度1∶1 000)4℃孵育過夜,TBST緩沖液洗脫3次,每次5 min;分別加入二抗(辣根過氧化酶標(biāo)記的抗羊和羊抗兔IgG抗體,稀釋度1∶200)室溫孵育1 h,TBST緩沖液洗脫3次,每次5 min,ECL發(fā)光顯色;采用β-actin作為內(nèi)參,掃描電泳條帶,用凝膠分析軟件分析各蛋白目的條帶吸光度。以目的條帶與內(nèi)參條帶吸光度的比值表示待測(cè)蛋白含量。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 應(yīng)用SPSS 13.0軟件分析,計(jì)量資料用x±s表示,2組間比較采用t檢驗(yàn),Plt;0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 腎功能檢測(cè)結(jié)果 IAKI組血尿素氮為(39.1±2.7)mmol/L,血清肌酐為(318±26)mmol/L,高于Sham組的血尿素氮(4.2±0.8)mmol/L,血清肌酐(88±17)mmol/L,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t分別為24.597和14.832,均Plt;0.05),IAKI動(dòng)物模型成立。

        2.2 光鏡觀察結(jié)果 海馬結(jié)構(gòu)可分CA1、CA2、CA3和DG 4個(gè)亞區(qū),由分子層、錐體細(xì)胞層和顆粒層組成。Sham組海馬結(jié)構(gòu)清晰,錐體細(xì)胞層無異常變化,見圖1A。IAKI組海馬明顯的變化發(fā)生在CA1區(qū)錐體細(xì)胞層,出現(xiàn)了固縮的神經(jīng)元,細(xì)胞核與細(xì)胞質(zhì)均固縮,見圖1B、C。

        2.3 電鏡觀察結(jié)果 Sham組海馬CA1區(qū)錐體細(xì)胞層神經(jīng)元呈正常結(jié)構(gòu),見圖2A,細(xì)胞核圓形,染色質(zhì)疏松,核仁明顯,細(xì)胞質(zhì)電子密度中等,核糖體與粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)清晰可見。IAKI組海馬CA1區(qū)錐體細(xì)胞層神經(jīng)元呈固縮狀,細(xì)胞質(zhì)固縮,細(xì)胞核萎縮,核仁依然可見,染色質(zhì)無固縮邊聚表現(xiàn),見圖2B;高倍鏡下可見內(nèi)質(zhì)網(wǎng)擴(kuò)張,線粒體腫脹變性,脊紊亂,見圖2C(箭頭所示)。

        Figure 2 The electron microscope image of hippocampal CA1 pyramidal neurons圖2 海馬CA1區(qū)錐體細(xì)胞層神經(jīng)元電鏡圖像

        2.4 免疫組織化學(xué)染色結(jié)果 Sham組海馬CA1區(qū)錐體細(xì)胞層PARP-1呈陰性染色,見圖3A,IAKI組海馬CA1區(qū)錐體細(xì)胞層固縮的神經(jīng)元PARP-1呈陽性表達(dá),陽性顆粒集中出現(xiàn)在細(xì)胞核內(nèi),見圖3B,少許出現(xiàn)在細(xì)胞質(zhì)中,見圖3C;2組caspase-3均呈陰性表達(dá)。

        2.5 免疫印跡檢測(cè)分析結(jié)果 2組caspase-3表達(dá)均不明顯;IAKI組海馬PARP-1蛋白表達(dá)量高于sham組(0.579 6±0.103 5vs0.351 3±0.092 3,t=3.293,Plt;0.05),見圖4。

        Figure 4 Results of immunoblot analysis of PARP-1 in two groups圖4 2組PARP-1免疫印跡電泳條帶

        3 討論

        國內(nèi)外常用的大鼠AKI動(dòng)物模型有缺血性和非缺血性2種,前者為腎缺血再灌注損傷引起的,多采用腎缺血60 min再灌注24 h[7]。從本實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出大鼠腎缺血60 min再灌注24 h后(IAKI組)腎功能嚴(yán)重?fù)p傷,說明本實(shí)驗(yàn)IAKI動(dòng)物模型是成立的。

        有報(bào)道IAKI引起腎外器官某些細(xì)胞發(fā)生固縮性損傷,如肝細(xì)胞[7]。本課題組也有同樣的發(fā)現(xiàn)[8],光鏡下細(xì)胞固縮,有的核染色質(zhì)固縮,有的則無固縮表現(xiàn),經(jīng)電子顯微鏡觀察以及caspase-3免疫組化染色發(fā)現(xiàn)部分光鏡下所見的固縮性損傷為凋亡的肝細(xì)胞。IAKI誘導(dǎo)的海馬神經(jīng)元的固縮性改變是否屬于細(xì)胞凋亡尚未知。Liu等[6]于2008年報(bào)道IAKI誘導(dǎo)海馬錐體細(xì)胞層發(fā)生固縮性損傷的形態(tài)學(xué)改變,并提出了固縮性神經(jīng)元(pyknotic neuron)這一概念,但只是在光鏡下所見,沒有進(jìn)行電子顯微鏡觀察以及PARP-1和caspase-3等免疫組化染色分析。從形態(tài)學(xué)角度確認(rèn)細(xì)胞死亡的條件有4個(gè):(1)細(xì)胞膜完整性消失。(2)細(xì)胞核固縮碎片化。(3)被吞噬或自噬。(4)細(xì)胞固縮,主要細(xì)胞器空泡化,又稱細(xì)胞質(zhì)死亡(cytoplasmic death)[9]。本研究應(yīng)用電鏡觀察發(fā)現(xiàn)海馬CA1區(qū)錐體細(xì)胞層固縮的神經(jīng)元細(xì)胞核染色質(zhì)無固縮邊聚的表現(xiàn),細(xì)胞器的損傷也不支持凋亡的結(jié)論;同樣也沒有細(xì)胞腫脹、細(xì)胞膜破潰等細(xì)胞壞死的特征;也沒有被吞噬的表現(xiàn);但具有細(xì)胞質(zhì)死亡的特點(diǎn),光鏡下細(xì)胞固縮,電鏡下主要表現(xiàn)為細(xì)胞質(zhì)內(nèi)主要細(xì)胞器,如線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等呈腫脹空泡化。

        2012年國際細(xì)胞死亡分類命名委員會(huì)在倡議綜述中提出,從分子生物學(xué)或生物化學(xué)角度命名細(xì)胞死亡的時(shí)代已經(jīng)來臨。Caspase依賴的細(xì)胞死亡和PARP-1介導(dǎo)的細(xì)胞死亡是典型的2種不同形式的細(xì)胞死亡。Caspase-3是外源性凋亡的執(zhí)行者(excutor),也是判斷細(xì)胞凋亡的生化標(biāo)志(biochemi?cal marker)[2,10],PARP-1的過度激活引起的細(xì)胞損傷或細(xì)胞死亡,也稱PARP-1介導(dǎo)的細(xì)胞損傷(PARP-1 mediated cell injury)或PARP-1介導(dǎo)的細(xì)胞死亡[3,11]。本實(shí)驗(yàn)免疫印跡檢測(cè)分析及免疫組織化學(xué)染色結(jié)果顯示缺血性急性腎損傷的海馬cas?pase-3陰性表達(dá)而PARP-1表達(dá)明顯增強(qiáng),說明IA?KI誘導(dǎo)的海馬神經(jīng)元的固縮性改變不屬于caspase依賴的細(xì)胞死亡(細(xì)胞凋亡),可能是由于PARP-1的過度激活引起的細(xì)胞損傷或死亡。

        Figure 3 The photos of PARP-1 immunohistochemical staining圖3 PARP-1免疫組織化學(xué)染色圖像(×200)

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