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        Peroxiredoxin 2基因慢病毒載體的構建及對結直腸癌SW480細胞增殖的影響①

        2014-11-27 10:26:46馮繼紅傅仲學文坤明張壽儒盧偉東吳星燁
        中國免疫學雜志 2014年8期
        關鍵詞:檢測

        馮繼紅 傅仲學 文坤明 張壽儒 盧偉東 王 昊 吳星燁

        (重慶醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院胃腸外科,重慶 400016)

        結直腸癌是威脅人類健康的主要惡性腫瘤之一,在全球范圍內(nèi)每年新發(fā)病例120萬例,死亡達60萬例[1,2]。目前結直腸癌在我國消化系統(tǒng)惡性腫瘤中列第2位,其發(fā)病和死亡呈逐年上升趨勢,且發(fā)病年齡有所提前[3]。隨著結直腸癌分子生物學發(fā)病機制研究的深入,特定分子靶向治療顯示出極大的臨床應用前景。

        過氧化還原蛋白酶2(Peroxiredoxin2,Prdx2)是一種新近發(fā)現(xiàn)的分子量在20~30 kD的過氧化物酶家族成員之一,廣泛分布于生物有機體內(nèi),在哺乳動物組織細胞和亞細胞器中廣泛分布但又存在差異性。Prdx2功能多樣,具有抗氧化還原、介導細胞信號轉導、參與調(diào)節(jié)細胞周期及凋亡、調(diào)控免疫反應和發(fā)揮分子伴侶等功能。近年研究表明,Prdx2在多種腫瘤組織中表達,作為抑癌或促癌因子發(fā)揮重要作用[4,5]。我們前期實驗結果發(fā)現(xiàn),Prdx2 在結直腸癌組織及細胞中表達明顯較高,提示Prdx2可能與結直腸癌的發(fā)展與轉移關系密切[6]。本實驗通過構建Prdx2基因的慢病毒表達載體,同時包裝高滴度慢病毒顆粒并轉染結直腸癌SW480,篩選建立穩(wěn)定高表達Prdx2的SW480細胞株,同時檢測Prdx2在mRNA和蛋白水平的表達情況,并初步研究轉染Prdx2慢病毒表達載體的SW480細胞的增殖及生長變化,為進一步探討Prdx2基因?qū)Y直腸癌SW480細胞生物學行為的影響及其分子機制奠定基礎。

        1 材料與方法

        1.1 主要試劑和儀器 人結直腸癌SW480細胞株,購于中國生命科學院上海生命科學研究院細胞庫。Ubi-MCS-EGFP-IRES-Puromycin Vector(GV218載體)、AgeⅠ/AgeⅠ酶切、增強劑 Eni.S、polybrene(上海吉凱基因);Lipofectamine 2000(Invitrogen);In-FusionTMPCR Cloning Kit(clontech);Plasmid抽提Kit(QIAGEN);限制性內(nèi)切酶、T4 DNA ligase(NEB);Taq polymerase(SinnBio);DNA Ladder(Fermentas);dNTP Mix(TaKaRa);瓊脂糖(賽百盛公司);瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒(天根生化);FBS、BSA(上海微科生化試劑);DMEM、Leibovitz’s L-15培養(yǎng)基(Gibco);蛋白裂解液RIPA和蛋白酶抑制劑PMSF(上海生物試劑廠);BCA蛋白含量試劑盒(凱基生物);PRDX2鼠抗人抗體(Abcam);GAPDH、HRP標記鼠二抗均購于(Santa Cruz);PCR儀(Applied Biosystems);Positive clone測序(美季生物技術);低溫臺式高速離心機和二氧化碳培養(yǎng)箱(Thermo);IX-51倒置顯微鏡和IX-71倒置熒光顯微鏡(Olympus)。

        1.2 慢病毒載體的構建及鑒定 以Prdx2全長克隆(NM_005809)為模板擴增其編碼框序列,設計Prdx2基因引物序列,Prdx2正向引物序列為:GAG GAT CCC CGG GTA CCG GTC GCC ACC ATG GCC TCC GGT AAC GC;Prdx2反向引物序列為:TCA CCA TGG TGG CGA CCG GAT TGT GTT TGG AGA AAT ATT CC,引物含交換配對堿基、酶切位點,并含有目的基因5’端部分序列用于PCR釣取目的基因。PCR方法釣取Prdx2基因后,將目的載體酶切,酶切產(chǎn)物電泳回收后交換入表達載體,其產(chǎn)物轉化細菌感受態(tài)細胞。對長出的克隆先進行菌落PCR鑒定,再對PCR鑒定陽性的克隆進行測序和比對分析,比對正確即為構建成功的目的質(zhì)粒。PCR反應條件為:94℃ 5 min;94℃ 30 s、55℃ 30 s、72℃ 2 min,30個循環(huán);72℃延伸10 min。PCR鑒定引物其正向序列Ubi-F:GGG TCA ATA TGT AAT TTT CAG TG;反向序列EGFP-N-R:CTG GTC GAG CTG GAC GGC GACG,產(chǎn)物大小:640 bp。同時設立陰性對照組(空載質(zhì)粒為模板)和陽性對照組(插入GAPDH片段的載體組),對假陽性和假陰性結果進行排除。對PCR陽性克隆片段測序鑒定,并在GenBank數(shù)據(jù)庫中將測序出的結果進行Blast比對。

        1.3 慢病毒的包裝與病毒滴度測定 制備編碼慢病毒顆粒的重組病毒質(zhì)粒及其兩種輔助包裝原件載體質(zhì)粒(GV218慢病毒載體、pHelper1.0載體和pHelper2.0載體質(zhì)粒),三種質(zhì)粒載體分別進行高純度無內(nèi)毒素抽提,按 Invitrogen公司 Lipofectamine 2000使用說明進行共轉染293T細胞,轉染后8 h更換為完全培養(yǎng)基,培養(yǎng)48 h后,收集富含慢病毒顆粒的細胞上清液,對其濃縮后得到高滴度的慢病毒濃縮液,逐孔稀釋,滴度測定法實時定量PCR(qRTPCR)法測定其病毒滴度(TU/ml)。獲得攜帶增強綠色熒光蛋白基因(EGFP)和嘌呤霉素(Puromycin)抗性基因的Prdx2慢病毒溶液(Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin)以及空載對照慢病毒(分別命名為 LVPrdx2、LV-Con),病毒液分裝后于-80℃保存。

        1.4 病毒轉染SW480細胞并篩選建立穩(wěn)定表達Prdx2的細胞株 取細胞狀態(tài)良好,處于對數(shù)生長期的SW480細胞,計數(shù)后均勻接種于6孔板,分為3組:轉染組(SW480/LV-Prdx2)、空載慢病毒對照組(SW480/LV-Con)、陰性對照組(Negative control,NC)即未經(jīng)任何處理的SW480組(SW480/NC)。待細胞完全貼壁、細胞匯合率達60%左右后進行轉染,依次加入終濃度為 8 μg/ml Polybrene、Eni.S、L-15培養(yǎng)基及稀釋的標準濃度病毒液(MOI為50),使其總體積達1 ml。轉染作用時間約28 h后更換為含有3 μg/ml嘌呤霉素(Puromycin)的新鮮L-15培養(yǎng)液進行抗性篩選,轉染至48 h后在熒光顯微鏡下觀察轉染效果。待細胞長滿后繼續(xù)在藥物選擇壓力下培養(yǎng)傳代3~4周建立SW480/LV-Prdx2穩(wěn)定高表達Prdx2細胞株。

        1.5 Western blot法檢測 收集SW480/LV-Prdx2組、空載慢病毒對照(SW480/LV-Con)組、陰性對照SW480細胞(SW480/NC)組,PBS洗滌2次,離心棄上清,加入200 μl預冷的RIPA細胞裂解液,置于冰上30 min,4℃、14 000 r/min 離心 16 min,取上清并進行蛋白定量(BCA法)。取30 μg蛋白加入上樣緩沖液,經(jīng)100℃、10 min變性后用100 g/L的SDS-PAGE分離。蛋白半干轉移至PVDF膜,用含50 g/L脫脂奶粉的TBST緩沖液室溫封閉1 h,小鼠抗人Prdx2的一抗或小鼠抗人β-acin的一抗,4℃過夜,TBST洗滌3次,加入HRP標記的山羊抗小鼠二抗室溫孵育1 h,TBST洗滌3次,加入ECL顯色劑后暗室內(nèi)壓片曝光。

        1.6 qRT-PCR檢測 各組細胞以Trizol法提取總RNA(按說明書操作),瓊脂糖凝膠電泳檢測所提取RNA的完整性,逆轉錄反應合成Prdx2 cDNA,qRTPCR法擴增Prdx2和GAPDH。以各組細胞cDNA作為模板,每個組設立3個復孔。反應體系包括:2×SYBR Green Mix:10 μl,引物 Mix:1 μl ,模版:1 μl ,ddH2O:8 μl,總體系為20 μl。GAPDH 上游引物為:5’-TGA CTT CAA CAG CGA CAC CCA-3’,下游引物為:5’-CAC CCT GTT GCT GTA GCC AAA-3’;Prdx2基因上、下游引物如前。PCR的反應條件:95℃ 2 min;95℃ 20 s;60℃ 30 s,72℃ 30 s(40 個循環(huán)),反應完成后,得出Ct值,然后計算出相應Ct值,分析各組之間Prdx2基因的mRNA表達水平的差異。

        1.7 MTT法檢測SW480細胞增殖抑制作用 取狀態(tài)良好,處于對數(shù)生長期各組細胞,消化后制成單細胞懸液,調(diào)整濃度為1×105ml-1,于96孔板內(nèi)均勻接種細胞,每孔加L-15培養(yǎng)基200 μl,每組設5個復孔,另設陰性對照及空白對照孔,常規(guī)培養(yǎng),每2 d換一次液;每天固定時間向每孔加20 μl MTT,37℃孵育 4 h;每孔加 150 μl DMSO,震蕩 10 min,酶標儀490 nm測吸光度(A)值,取5孔平均值。

        1.8 克隆形成實驗 取轉染組及空載對照組的SW480細胞常規(guī)消化成單細胞懸液,以300個/ml均勻接種于6孔板。在CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),2~3 d更換一次新鮮培養(yǎng)基,培養(yǎng)2~3周,待細胞生長至肉眼觀察見有明顯克隆群落時取出結晶紫染色,在倒置顯微鏡下計數(shù)大于50個細胞的克隆數(shù)并拍照。克隆形成百分率按照下列公式計算:克隆百分率=克隆數(shù)/接種數(shù)×100%。

        1.9 統(tǒng)計學分析 數(shù)據(jù)采用SPSS18.0進行統(tǒng)計學分析,各組數(shù)據(jù)采用表示,各組間比較采用方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結果

        2.1 慢病毒表達載體Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin的構建與酶切鑒定 據(jù)GV218載體(Ubi-MCS-EGFPIRES-Puromycin Vector)篩選陽性重組載體Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin,快速小量提取質(zhì)粒DNA,經(jīng)AgeⅠ/AgeⅠ雙酶切后得到一條明亮清晰的條帶,分子量大小約為11.1 kp,與 Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin片段大小一致,說明重組載體構建成功,見圖1A。目的基因Prdx2經(jīng)PCR擴增后瓊脂糖凝膠電泳酶切后的產(chǎn)物,可見在640 bp大小處有明亮清晰的條帶,與設計的克隆片段大小一致,見圖1B。

        Prdx2基因產(chǎn)物純化后轉接插入載體Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin后純化,大腸桿菌菌株 DH5α擴增慢病毒載體和輔助包裝載體質(zhì)粒,并得到數(shù)十個克隆,挑取8個克隆(編碼為1~8號轉化子),小量搖菌后行菌液鑒定,結果表明可擴增出約801 bp的目的片段,與目的條帶理論上大小相符的克隆可視為陽性克隆,PCR菌落篩選電泳結果見圖2。測序結果與GenBank NM_005809序列一致,說明重組載體Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin構建成功。

        2.2 慢病毒載體的包裝與病毒滴度的測定 慢病毒載體共轉染293T細胞,于轉染48 h后在熒光顯微鏡下觀察其293T細胞發(fā)出的綠色熒光。經(jīng)測定,慢病毒載體Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin(LV-Prdx2)濃縮后的病毒滴度大約為2×109TU/ml,空載對照慢病毒LV-Con濃縮后的病毒滴度則為2×108TU/ml。

        圖2 陽性克隆PCR鑒定Fig.2 PCR identification of recombinant containing Prdx2 gene bacteria colonies

        2.3 慢病毒轉染SW480細胞后熒光表達檢測SW480細胞轉染慢病毒Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin(LV-Prdx2)后48 h在熒光顯微鏡下觀察其綠色熒光表達,從明光視野和熒光視野二者比較中,可見其轉染效率較高,可達95%以上(圖3)。

        圖3 轉染SW480細胞48 h熒光表達檢測(熒光顯微鏡,×200)Fig.3 Fluorescent observation of EGFP expression of SW480 cells 48 hours after virus infection(Fluorescent microscope,×200)

        2.4 qRT-PCR檢測 qRT-PCR檢測結果顯示,與SW480/LV-Con組、空白組 SW480細胞比較,SW480/LV-Prdx2組細胞Prdx2 mRNA高表達,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖4。

        圖4 各組SW480細胞中的Prdx2 mRNA表達Fig.4 Expression of Prdx2 mRNA in SW480 cells in three groups

        2.5 Western blot法檢測 Western blot法檢測結果顯示,與陰性對照組及空載慢病毒對照(SW480/LV-Con)組相比,SW480/LV-Prdx2組細胞Prdx2蛋白呈高表達(圖5)。

        圖5 Western blot法檢測LV-Prdx2轉染后SW480細胞中Prdx2的蛋白表達Fig.5 Protein expresstion of Prdx2 detected by Western blot analysis in SW480 cells transfected by LVPrdx2

        2.6 Prdx2高表達對SW480細胞的促增殖作用MTT法檢測各組SW480細胞5 d OD值,繪制生長曲線,結果顯示,SW480轉染組細胞與對照組及空白組相比,生長增殖較快,差異具有顯著性(P<0.05)(見圖6)。

        圖6 MTT檢測高表達Prdx2對SW480細胞的促增殖作用Fig.6 Proliferation effect of over-expression of Prdx2 on SW480 cells by MTT

        2.7 Prdx2對SW480細胞平板克隆形成能力的影響 細胞平板克隆形成實驗結果(見圖7)顯示,LVPrdx2組較空載對照組的平板克隆形成能力明顯升高(P<0.05)。

        圖7 Prdx2高表達對SW480細胞平板克隆形成能力的影響Fig.7 Effect of plate colonity in SW480 cells transfected by LV-Prdx2

        3 討論

        研究表明,近20%的人類癌癥是由轉染和炎癥疾病引起的,在這些疾病過程中激活的炎性細胞產(chǎn)生了大量的活性氧(Reactive oxygen species,ROS)。為了對抗ROS,細胞保護系統(tǒng)可直接破壞活性氧或是修復其造成的各種類型的損害,過氧化還原蛋白(Peroxiredoxins,Prdxs)在細胞對抗 ROS及保持胞內(nèi)穩(wěn)態(tài)的過程中發(fā)揮了極為重要的作用[7]。Prdxs家族是體內(nèi)重要的抗氧化蛋白家族,廣泛存在于真核及原核生物中,哺乳動物細胞發(fā)現(xiàn)的6種Prdxs蛋白可分為3類:典型的2-半胱氨酸亞群(Prdx1~4)、非典型的2-半胱氨酸亞群(Prdx5)、1-半胱氨酸亞群(Prdx6)。Prdxs在清除ROS的過程中,自身也被氧化,隨后可通過合成新的蛋白質(zhì)或在硫氧還蛋白及其他氧化還原劑的作用下再次恢復功能[8]。

        Peroxiredoxin 2(Prdx2)作為Prdxs家族重要成員之一,除發(fā)揮抗氧化功能作用外,還通過過氧化氫(H2O2)介導的細胞因子信號轉導參與細胞的增殖、分化和凋亡[8]。Prdx2與機體的生長發(fā)育、細胞衰老、免疫功能密切相關,并在維持紅細胞生存,促進NK細胞發(fā)揮自然殺傷功能的過程中扮演重要角色[9,10]。另外,近年一個重要的發(fā)現(xiàn)就是Prdx2在不同的腫瘤中異常表達,通過不同的信號通路參與了腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及轉移等。據(jù)報道,Prdx2與實體瘤如乳腺癌[11]、骨肉瘤[12]、肝癌[13]、膀胱癌[14]、前列腺癌[15]、黑色素瘤[16]等有關,是腫瘤重要生物標記物之一,但有趣的是Prdx2在乳腺癌、骨肉瘤、肝癌中其表達上調(diào),可視為促癌因子,但在膀胱癌和黑色素瘤中表達降低,又被認為是抑癌因子,推測Prdx2在不同的腫瘤中可能通過不同的作用機制發(fā)揮調(diào)節(jié)作用。迄今為止,Prdx2在結直腸癌中的研究報道較少,我們前期實驗研究也證實Prdx2在結直腸癌組織及細胞株中表達上調(diào),且與結直腸癌的發(fā)生、發(fā)展及轉移密切相關[6],預測Prdx2可能在結直腸腫瘤組織中發(fā)揮更為關鍵的作用。根據(jù)本實驗結果,Prdx2對結直腸癌SW480細胞的增殖具有明顯促進作用,其作用的周期特點及涉及的分子作用機制仍需進一步深入。

        綜上所述,本實驗通過構建可穩(wěn)定高表達Prdx2的重組慢病毒表達載體Ubi-Prdx2-EGFP-Puromycin,并將其轉染結直腸癌SW480細胞,篩選建立穩(wěn)定高表達Prdx2的SW480/LV-Prdx2細胞株,同時初步證實Prdx2的高表達可促進結直腸癌SW480細胞的增殖,為進一步研究Prdx2在結直腸癌中所發(fā)揮的功能及其作用機制提供實驗依據(jù)。

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