羅睿，徐建，魏玉珍，李海龍，劉紅宇，蘇靜，趙莉莉，張玉琴，余利巖

?

以蛋白激酶A為靶點的抗結核藥物高通量篩選模型的建立和應用

羅睿，徐建，魏玉珍，李海龍，劉紅宇，蘇靜，趙莉莉，張玉琴，余利巖

100050 北京，中國醫(yī)學科學院北京協(xié)和醫(yī)學院醫(yī)藥生物技術研究所藥用微生物菌種保藏管理中心

建立以蛋白激酶 A 為靶點的抗結核藥物高通量篩選模型，應用該模型篩選具有特異性酶活抑制活性的微生物發(fā)酵液粗提物樣品。

以結核分枝桿菌 H37Rv 基因組 DNA 為模板，擴增目的基因片段，構建表達載體 pET43.1a-，在大腸桿菌中克隆表達了重組 MTB PknA 蛋白；采用三步級聯的反應方法，利用還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸到氧化型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸這一反應最大吸光值波長的變化，建立和優(yōu)化蛋白激酶A 抑制劑高通量藥物篩選模型。

成功構建了表達載體 pET43.1a-；建立了穩(wěn)定靈敏，可用于靶向結核分枝桿菌蛋白激酶A 的抗結核藥物高通量篩選模型；利用該模型對 4000 個微生物發(fā)酵液粗提物樣品進行篩選，最終得到 21 個抑制蛋白激酶A 活性的陽性樣品，陽性率 0.53%；以恥垢分枝桿菌和海分枝桿菌為檢定菌，平板紙片法檢測陽性樣品的抗分枝桿菌活性，然后對陽性樣品的細胞毒性和酶活抑制特異性進行評價后，最終得到 8 個陽性樣品，其中 I10AA-02916、I09AA-02717、I09AB-02729、I08AB-00801 這 4 個陽性樣品酶活抑制特異性、抗菌活性均較好，且細胞毒性較低。

建立了高穩(wěn)定性的以蛋白激酶A 為靶點的抗結核藥物高通量篩選模型，應用該模型所得到的發(fā)酵液陽性樣品值得進一步研究。

環(huán)AMP依賴性蛋白激酶類； 藥物評價，臨床前； 抗結核藥； 高通量篩選

結核?。╰uberculosis，TB）是由結核分枝桿菌引起的嚴重危害人類健康、流行最廣的感染性疾病之一[1]。20 世紀初，人們曾一度樂觀地估計，將在全球范圍內消滅結核病。然而，結核病不僅沒有被消滅，反而在 20 世紀中后期卷土重來，并陸續(xù)產生多重耐藥、廣泛耐藥和超級耐藥結核分枝桿菌等變種[2-5]。據 WHO 統(tǒng)計，2012 年全球新發(fā) 860 萬結核患者，并有 130 萬人死于結核病。結核病合并艾滋病的流行趨勢也是未來需要面對的挑戰(zhàn)[6-7]。因此，尋找能有效治療多重耐藥結核、廣泛耐藥結核等新型有效的抗結核藥物顯得尤為迫切。

蛋白激酶 A（protein kinase A，PknA）是結核分枝桿菌產生的 11 種絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶（serine/threonine protein kinases，STPKs）之一，是結核分枝桿菌生長所必需的[8]。不僅影響結核分枝桿菌細胞分裂和細胞壁合成，還可能干擾宿主細胞的信號傳導?；蛟谥笖瞪L期顯著表達，過表達 PknA 會降低生長速度并改變細胞形態(tài)，而敲除基因的結核分枝桿菌菌體則變得細長[9-11]。PknA 對結核分枝桿菌的生長分裂和細胞形態(tài)的維持具有重要作用，同時，與人同源蛋白激酶（CK1）基因系列差異較大，相似性低于 30%[12]。因此，可作為理想的新型抗結核藥物篩選靶點，期望獲得選擇性較好的蛋白激酶抑制劑。

微生物的次級代謝產物有結構新穎、多樣和低毒等特點，是新藥開發(fā)的重要資源之一，當前天然產物來源的病原菌蛋白激酶抑制劑報道較少[13-14]。本研究通過建立以 PknA 為靶點的高通量篩選模型，期望在微生物次級代謝產物中開發(fā)新型酶活抑制活性特異和抗菌活性均較好的抑制劑，為開發(fā)有效的抗耐藥結核分枝桿菌先導化合物奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株與載體 大腸桿菌菌株 DH5α、BL21(λDE3)、恥垢分枝桿菌（mc2155，CPCC 203649）和海分枝桿菌（ATCC 927，CPCC 100246）以及用于微生物發(fā)酵液樣品制備的 2000 株藥物篩選菌株均保藏于國家科技基礎條件平臺國家微生物資源平臺的藥用微生物資源子平臺；人巨噬細胞 THP-1、鼠巨噬細胞 Raw264.7 及原核表達載體pET43.1a(+) 為本所免疫室惠贈；pMD?19-T 載體購自日本 Takara 公司。

1.1.2 儀器和試劑 Pyrobest DNA 聚合酶、限制性內切酶、T4 DNA 連接酶均購自寶生物工程（大連）有限公司；丙酮酸激酶、乳酸脫氫酶均購自美國 Sigma 公司；?KTA 層析系統(tǒng)為美國 GE Healthcare 公司產品；PolarFluostar 多功能熒光檢測儀為德國 BMG 公司產品。

1.2 方法

1.2.1 結核分枝桿菌基因重組質粒的構建及其表達

1.2.1.1基因的體外擴增 利用NCBI 數據庫中結核分枝桿菌 H37Rv 的基因組序列信息，獲取蛋白激酶 A 的序列，對該序列設計適當的引物，上游：5' CG（R I）ATGAGCCCCCG AGT 3'；下游：5' CCAA（d III）CGCTA TCTCGTATC 3'。以結核分枝桿菌 H37Rv 基因組 DNA 為模板，PCR 反應擴增出目的基因片段。瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR 產物，進行膠回收純化，然后將目的片段進行末端加 A 反應。使用T4 DNA 連接酶將加尾的 PCR 產物與 pMD?19-T 載體在 16 ℃ 進行連接，連接后的重組質粒命名為 T-。連接產物轉化大腸桿菌 DH5α，藍白斑篩選陽性克隆提取質粒雙酶切鑒定插入的片段，再測序驗證序列的正確性。

1.2.1.2 原核表達載體的構建 分別用R I和d III對 T-和 pET43.1a 進行雙酶切，獲得目的基因片段和線性化的 pET43.1a。用 T4 連接酶在 16 ℃連接6 ~ 8 h。將該質粒轉化大腸桿菌 DH5α，然后涂布于含有 100 mg/L 氨芐西林的 LB 平板上。37 ℃培養(yǎng) 16 h 篩選重組子，提取質粒，雙酶切鑒定載體的正確性，并測序驗證片段及插入方向的正確性。將構建的重組質粒命名為 pET43.1a-。

1.2.2 重組質粒在大腸桿菌中的誘導表達及純化 用構建好測序正確的 pET43.1a-質粒轉化大腸桿菌 BL21(λDE3)，挑取轉化子在 100 mg/L 氨芐西林的 LB 液體培養(yǎng)基中 37 ℃、200 r/min 振蕩培養(yǎng)至600= 0.6 ~ 0.8，加入終濃度1 mmol/L 的 IPTG，20 ℃、200 r/min 培養(yǎng)過夜誘導表達。12 h 后離心收獲菌體，稱量菌體濕重并裂解菌體細胞，通過 SDS-PAGE 蛋白電泳檢測目的蛋白在 BL21 中的表達。采用壓力破碎對菌體進行破壁，裂解液于 4 ℃、12 000 r/min 離心40 min，取上清用 0.22 μm 濾膜過濾。采用 ?KTA 系統(tǒng)對過濾后的裂解液進行蛋白的分離純化，以 5 ml HisTrapTMHP 鎳離子親和層析柱上樣，20 ~ 300 mmol/L 的洗脫緩沖液梯度洗脫目的蛋白，收集洗脫峰，對純化蛋白脫鹽和蛋白定量。加入蛋白保存液，檢測蛋白濃度后，分裝后于–80 ℃凍存。

1.2.3 結核分枝桿菌 PknA 活性的測定 由于還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸（NADH）在 340 nm波長處有最大光吸收，而氧化型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸（NAD+）的最大光吸收在 260 nm 處。伴隨著 NADH 到 NAD+這一反應的進行，反應體系在 340 nm 波長下的光吸收值會大大降低，其數值可通過酶標儀測得。因此本實驗通過檢測反應體系在340 nm 波長下的光吸收值變化來反映體系中 ADP的生成量，進而反映出 PknA 的催化活性大小。酶活測定體系終濃度為：Hepes 100 mmol/L、MgCl210 mmol/L、MnCl22 mmol/L、ATP 2 mmol/L、PEP 1 mmol/L、NADH 1 mmol/L、PknA 9.5 μg/100 μl、丙酮酸激酶 1.8 U/100 μl、乳酸脫氫酶 1.8 U/100 μl。

1.2.4 結核分枝桿菌 PknA 抑制劑酶水平篩選模型的建立、優(yōu)化和應用

1.2.4.1 篩選模型相關指標的測定 考察篩選模型反應體系中各組分對酶活性影響，確定最佳反應條件，對模型進行優(yōu)化，以及對孔板的穩(wěn)定性、均一性進行評價。

模型評價指標計算公式：

S=正常酶反應體系熒光值 N其他成分熒光值平均值

其中 S/N：信噪比；max：最大平均值；min：最小平均值；max：最大標準差；min：最小標準差；n：孔數。

1.2.4.2 待測樣品的前處理 每個菌株均采用兩種培養(yǎng)基 A1 和 A2 進行發(fā)酵[15]。從斜面上挑取生長狀態(tài)良好的菌種轉接入25 ml 發(fā)酵培養(yǎng)基中，28 ℃、190 r/min 旋轉搖床培養(yǎng) 4 d。微生物發(fā)酵液用等體積的丙酮抽提，離心后取 10 ml 的上清真空濃縮揮干，用1 ml DMSO 溶解得到粗提物。篩選時用等體積的DMSO 倍比稀釋，取 1 μl 加入至 100 μl 反應體系。

1.2.4.3 待測樣品對 PknA 抑制作用的測定 依照前文所述配制酶活測定反應體系，并在每 100 μl 反應體系中加入 1 μl 待測發(fā)酵液樣品。陽性對照為不加 PknA（相當于酶活性被完全抑制）的體系，陰性對照為以等體積的發(fā)酵培養(yǎng)基抽提液代替待測樣品（相當于未加抑制劑）。

酶抑制率IR（%）=

(?mOD340/t)陰性對照– (?mOD340/t)樣品× 100% (?mOD340/t)陰性對照– (?mOD340/t)陽性對照

1.2.4.4 假陽性結果的排除 假陽性排除體系：100 mmol/L Hepes、10 mmol/L MgCl2、2 mmol/L MnCl2、2 mmol/L ADP、1 mmol/L 磷酸烯醇式丙酮酸、1 mmol/L NADH、1.8 U 丙酮酸激酶、1.8 U 乳酸脫氫酶，并加入待測樣品。酶標儀 37 ℃下監(jiān)測上述反應體系 5 min 內340值的變化。若反應體系的340值迅速降低，則表明模型篩得的陽性樣品確實是 PknA 的抑制劑而非丙酮酸激酶和乳酸脫氫酶的抑制劑，否則即為假陽性。

1.2.4.5 平板紙片法測定酶水平陽性樣品的抗菌活性 分別采用恥垢分枝桿菌和海分枝桿菌作為檢定菌，建立簡便、快速、有效的細胞水平篩選模型。將檢定菌按 1.0% 分別接種于7H11 培養(yǎng)基中，倒平板。將加有 20 μl 發(fā)酵液樣品的 6 mm 的紙片貼于平板上，分別培養(yǎng) 12 h 和 48 h 后測量抑菌圈的大小。采用異煙肼作為陽性對照，濃度 100 μg/紙片。

1.2.4.6 MTT 比色法檢測陽性樣品的細胞毒性 采用 MTT 法檢測篩選所得的陽性樣品對人巨噬細胞 THP-1 和鼠巨噬細胞 Raw264.7 存活的影響情況[16]。加入的發(fā)酵液終濃度為 1%。細胞存活率計算式為：

細胞存活率（%）=OD加藥組– OD本底× 100% OD空白對照組– OD本底

1.2.4.7 NADH 比色法檢測陽性樣品的酶活特異性 檢測陽性樣品對其他兩個絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶 MTB 蛋白激酶 B（PknB）和 MTB 蛋白激酶 G（PknG），非絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶 MTB 肽脫甲?；福≒DF）和 MTB 苯丙氨酰-tRNA 合成酶（PheRS）以及人蛋白激酶 B（AKT1）的酶活抑制率。初步驗證陽性樣品的酶活特異性。PknB、PknG、PDF、PheRS 酶活檢測步驟詳見參考文獻[17-20]。AKT1 酶活測定方法與 PknA 的酶活測定方法類似，體系濃度為：AKT1 2 μg/100 μl、ATP 1 mmol/L、NADH 1 mmol/L。

2 結果

2.1 原核表達載體的構建及表達

2.1.1 重組質粒 pET43.1a-的構建 以結核桿菌 H37Rv 基因組 DNA 為模板進行 PCR 擴增得到的 DNA 片段與A（1296 bp）基因片段大小相符。構建A 基因的克隆載體并命名為 T-A。通過將基因片段和線性化的 pET43.1a 同時連接，獲得重組質粒 pET43.1a-A。DNA 測序結果表明，基因序列和插入載體的方向正確（圖 1）。

bp 1 2 700055003500 2000 1000 500 pET-43.1a(+) pknA

Figure 1 Digestion analysis of pET 43.1a-by restriction enzymes

2.1.2 結核分枝桿菌重組 PknA 的表達和純化 將重組表達質粒 pET43.1a-A 轉化BL21(λDE3) 感受態(tài)細胞，經 IPTG 誘導后，通過 4% ~ 12% 的梯度膠 SDS-PAGE 電泳檢測總蛋白，結果顯示結核分枝桿菌 Nus-PknA 融合蛋白得到了很好地表達，大小約 115 kD（圖 2）。SDS-PAGE 檢測結果表明純化后的蛋白具有較高的純度，達95.60%。

2.2 結核分枝桿菌 PknA 的酶學性質測定

2.2.1 重組 PknA 蛋白比活力的測定 本研究把 37 ℃下，每分鐘催化 1 μmol/L 底物 ATP 生成產物 ADP 所需的 PknA 量定義為一個活力單位（U）。結果顯示實驗組Δm340/t 值為 21.73，空白對照組 Δm340/t 值為 4.95（圖 3），每分鐘反應的NADH 量為 9.58 μmol/L，即每分鐘反應的 ATP 量為 9.58 μmol/L。反應體系中加入的酶量為 9.5 μg，由此計算得到每 mg 重組 PknA 的比活力是 1008.4 U。

kD 1 2 3 4 5 210 105 785545 34 17 Nus-PknA

Figure 2 The purification of PknA expressed in

圖 3 PknA 催化反應體系光吸收變化曲線

Figure 3 Experimental determination of the reaction rate

2.2.2 反應速率與酶濃度的關系 本研究保持反應體系中其他反應物的濃度不變，分別測定PknA 在不同濃度下的反應速率。結果表明，反應速率隨著酶濃度的增加而逐漸加快，兩者呈良好的線性關系（圖4）。

2.2.3 重組 PknA 蛋白反應動力學研究 本研究中，PknA 催化反應的底物為ATP。在固定其他底物濃度的條件下，分別設置一系列ATP 濃度，研究其酶反應動力學。研究結果表明重組 PknA 對底物 ATP 的米氏常數 Km 值為 0.174（圖 5），最大反應速率 Vmax值為 20.70（Δm340/t）（圖 6）。

反應速率（ΔmOD340/t）Reaction rate (ΔmOD340/t)60 50 40 30 20 10 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 酶濃度（μg/100 μl）Enzyme concenration (μg/100 μl)

Figure 4 Correlation of reaction rate with the concentration of PknA

反應速率（ΔmOD340/t）Reaction rate (ΔmOD340/t)30 25 20 15 10 5 0 2 4 6 8 10 12 底物 ATP 的濃度（mmol/L）Substrate concenration (mmol/L)

Figure 5 Correlation of reaction rate with the substrate concentration

–6 –4 –2 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 1/[S]

Figure 6 The curve of Michaelis-Menten equation

2.2.4 溫度對重組 PknA 酶活性的影響 本研究測定了不同溫度對 PknA 酶活性的影響。結果表明：在 28 ~ 45 ℃范圍內，反應速率在 37 ℃時達到最大，因此選擇 37 ℃為最佳反應溫度（圖 7）。

2.2.5 反應時間對吸光值的影響 本研究測定了不同反應時間對反應體系的影響。結果表明在一定的時間范圍內，反應體系的Δm340值與反應時間具有良好線性關系（圖 8）。反應時間超過 50 min后，反應基本結束，吸光度不再隨反應時間降低。因此反應時間應控制在 50 min 之內較好。

反應速率（ΔmOD340/t）Reaction rate (ΔmOD340/t)35302520151050 28 33 37 39 42 45 反應溫度（℃）Temperature (℃)

Figure 7 Effect of the temperature on absorption

圖 8 反應時間對吸光值的影響

Figure 8 Effect of reaction time on absorption

綜上所述，經優(yōu)化后的酶反應條件為：反應溫度 37 ℃；反應時間 50 min；酶濃度 9.5 μg/100 μl；底物 ATP 終濃度為 2 mmol/L。在此條件下，酶催化活性得到充分發(fā)揮，但又不致反應速率過快，反應速率處于良好的線性范圍內。

2.3 藥物篩選模型的評價

2.3.1 DMSO 濃度對酶活性的影響 反應體系中分別加入 0% ~ 7% 的 DMSO，觀察不同濃度的DMSO對反應體系中酶活性的影響。結果表明，DMSO 濃度高于 2% 時340讀數明顯下降（圖 9）。因此確定體系中最高 DMSO 濃度不超過 2% 為宜。

2.3.2 反應體系中各成分的影響 本研究對反應體系中各成分：ATP、酶、Nus 蛋白、DMSO、A1 培養(yǎng)基抽提物、A2 培養(yǎng)基抽提物等在 340 nm 處吸收值的影響進行了考察，計算該模型的信噪比 = 29.11/5.17 = 5.63，符合篩選模型信噪比大于 3 的要求（圖 10）。

反應速率（ΔmOD340/t）Reaction rate (ΔmOD340/t)35302520151050 0 1 2 3 4 5 6 7 DMSO 濃度（%）DMSO concentration (%)

Figure 9 Effect of the DMSO concentration on enzyme activity

反應速率（ΔmOD340/t）Reaction rate (ΔmOD340/t)302520151050 1 2 3 4 5 6 7 8 反應體系中各成分Components

Figure 10 Effect of single component on the assay

2.3.3 孔板均一性和穩(wěn)定性評價 本研究根據酶反應體系中陽性對照組和陰性對照組的數據來計算變異系數（CV）以及Z'因子對模型進行可行性分析，經優(yōu)化的體系在 96 孔板中反應，分別設陰性對照板（正常酶反應體系）和陽性對照板，實驗重復 3 次，每次反應所需的試劑都需重新配制。實驗結果表明所測得數據不存在明顯趨勢，無明顯邊緣效應。CV陰性對照= 6.54% < 20%；CV陽性對照= 3.56% < 20%；Z' = 0.77 > 0.4。各項指標均符合模型篩選的要求。

表 1 陽性樣品的抑酶活性及抗菌活性

2.4 微生物發(fā)酵液樣品的篩選結果

本研究一共篩選來自微生物發(fā)酵液庫樣品 4000 個。酶活抑制率大于 30% 的樣品認定為陽性，經過 3 次生物學重復和假陽性結果的排除，最終獲得 21 個具有抑制 PknA 活性的發(fā)酵液陽性樣品，陽性率為 0.53%。由于恥垢分枝桿菌和海分枝桿菌 PknA 與結核分枝桿菌 PknA 在基因序列上有較高的相似性（經 NCBI 的 BLAST 序列比對，分別為 83% 和 87%），且我們前期實驗表明，抗恥垢和海分枝桿菌活性與抗結核分枝桿菌活性具有一定的一致性。本研究采用平板法以這兩種分枝桿菌測定發(fā)酵液陽性樣品的抗菌活性，結果表明 9 個發(fā)酵液陽性樣品在酶水平和細胞水平均具有較好的生物學活性，結果見表 1。

2.5 微生物發(fā)酵液樣品的細胞存活率結果

本研究采用 MTT 試驗，檢測了上述發(fā)酵液陽性樣品對人單核-巨噬細胞 THP-1 和鼠單核-巨噬細胞 Raw264.7 的細胞存活率影響。9 個發(fā)酵液陽性樣品中，僅有 1 個樣品 I09AA-02703 的細胞毒性較大，其余樣品細胞毒性較小，結果見表2。

表 2 陽性樣品的細胞存活率（%）

2.6 微生物發(fā)酵液樣品的酶活特異性結果

本研究利用結核分枝桿菌PknB、PknG、PDF、PheRS 和人的 AKT1 酶活測定方法，初步考察了發(fā)酵液陽性樣品的酶活抑制特異性，結果表明I10AA-02916、I09AA-02717、I09AB-02729、I08AB-00801 這4 個發(fā)酵液陽性樣品對 PknA 酶活抑制的特異性較好，并且對人蛋白激酶 AKT1 幾乎無抑制作用，靶向選擇性較好（表 3），值得進一步深入研究。

表 3 陽性樣品的酶活特異性（%）

3 討論

STPKs 已被研究證實是病原微生物重要的毒力因子。STPKs 在蛋白質可逆磷酸化調控中發(fā)揮著關鍵作用，例如應激反應、細胞周期的調控以及生長存活等。這種調控形式在所有生命進化的過程中都是保守的。PknA 是結核分枝桿菌 STPKs 中最重要的分子之一，是結核分枝桿菌生長分裂和細胞形態(tài)調節(jié)的關鍵分子，在蛋白磷酸化的信號傳導過程中發(fā)揮重要作用[21]。其作為潛在藥物靶點的地位已被廣泛認同。本研究對結核分枝桿菌 PknA 進行了克隆表達。由于其為跨膜蛋白，可溶性較差，表達時容易聚合成三種形式[22]。我們采用含有 Nus（約60 kD）標簽的pET43.1a 構建重組質粒，相比使用pET28a 等表達質粒，所得的目的蛋白可溶性有很大提高，并且獲得了純度較高的 Nus-PknA 融合蛋白，100 ml 培養(yǎng)基培養(yǎng)的菌體純化可得到 4.46 mg 目的蛋白，可以滿足大量篩選的要求。實驗證實，Nus 蛋白并不影響酶活體系的測定與評價，保證了模型的可靠性。利用該模型篩選了庫存發(fā)酵液樣品 4000 個，對初篩陽性菌株進行重復發(fā)酵和篩選，選取對 PknA 酶和mc2155、ATCC 927 均有活性的菌株作為復篩陽性菌株。隨后對陽性樣品的真核細胞毒性進行評價，最終得到了8 個發(fā)酵液陽性樣品在酶水平和抗分枝桿菌方面均具有良好的活性且毒性較低。

目前研究已證明 PknA、PknB 和 PknG 是結核分枝桿菌 STPKs 中最重要的 3 個蛋白激酶。本研究選擇結核分枝桿菌另外兩個 STPKs：PknB、PknG 和非 STPKs 的 PDF、PheRS，以及人蛋白激酶 AKT1 對陽性樣品酶活特異性進行了初步研究。結果發(fā)現 9 個陽性樣品對PDF、PheRS 和 AKT1 抑酶活性均較弱。部分陽性樣品對結核分枝桿菌同一家族的PknB 和 PknG 也具有抑酶活性，但對 PknB 的抑制活性具有一定的優(yōu)勢。推測原因可能為：①在結核分枝桿菌中，和基因序列相似性只有 14.0%，但它們的催化活性區(qū)域 PknA（residues 1-338）和 PknB（residues1-331）蛋白的二級結構相似性達 36.8%，激酶活化域中的兩個蘇氨酸殘基催化位點（Thr-172 和 Thr-174）位點相同，活性中心金屬離子均為 Mn2+[23]；②盡管 PknA 和 PknB 磷酸化的底物不同，如 PknA 能磷酸化細胞分裂蛋白 FtsZ 及GlmU、KasA、Wag31 等底物[24-25]，而 PknB 作用于 GarA、N-乙酰葡糖胺-1-磷酸尿苷酰轉移酶、叉頭結構域相關蛋白 Rv0019c、PapA5 等，但 PknA 和 PknB 位于同一操縱子下，均為跨膜蛋白，具有相似生物生理作用，且都能被跨膜的 Mstp 蛋白去磷酸化[22]；③PknG 是可溶性蛋白，對于結核分枝桿菌在巨噬細胞內以“持留”狀態(tài)長期存活有著重要作用。PknA 和 PknG 在N 端激酶活化域也存在保守的氨基酸殘基，可能與個別陽性樣品對其產生抑制作用相關。近來研究發(fā)現，PknB 通過N 端激酶活化域即能夠發(fā)揮磷酸化作用，但PknA 必須通過激酶活化域和近膜結構域兩部分協(xié)同才能產生磷酸化作用[23]。金屬離子 Zn2+等對于它們的磷酸化速率也有不同程度的影響。PknA 和 PknB 兩個靶點的這些異同對我們的后續(xù)研究有著重要的意義。

本實驗室前期的研究發(fā)現，抗恥垢分枝桿菌、海分枝桿菌的活性與抗結核分枝桿菌活性有著較好的一致性，但為了防止漏篩的發(fā)生，在后續(xù)的研究中，除評價上述 9 個陽性樣品抗結核分枝桿菌活性外，也進一步評價了其他酶水平陽性樣品的抗結核分枝桿菌活性。對于具有較好抗結核分枝桿菌活性的樣品，因微生物發(fā)酵液成分復雜，即使是出現粗提品酶活抑制特異性不強或細胞毒性較大的情況，我們都將通過初步的分離純化工作，進一步考察活性成分和毒性成分是否可以分開，以及會不會是不同的組分造成的酶活抑制選擇性不強等問題。后期將針對具有抗結核分枝桿菌活性的陽性樣品進行活性次級代謝產物的分離純化和結構鑒定工作，為發(fā)現新型微生物來源的抗耐藥結核分枝桿菌先導化合物打下基礎。

[1] O'Brien RJ, Nunn PP. The need for new drugs against tuberculosis. Obstacles, opportunities, and next steps. Am J Respir Crit Care Med, 2001, 163(5):1055-1058.

[2] Young DB, Cole ST. Leprosy, tuberculosis, and the new genetics.J Bacteriol, 1993, 175(1):1-6.

[3] Chen MS, Huber AB, van der Haar ME, et al. Nogo-A is a myelin-associated neurite outgrowth inhibitor and an antigen for monoclonal antibody IN-1. Nature, 2000, 403(6768):434-439.

[4] Zwolska Z, Augustynowicz-Kope? E. Drug resistant tuberculosis. Pol Merkur Lekarski, 2011, 30(179):362-366.

[5] Banerjee R, Schecter GF, Flood J, et al. Extensively drug-resistant tuberculosis: new strains, new challenges. Expert Rev Anti Infect Ther, 2008, 6(5):713-724.

[6] Reniero A, Beltrán M, de Kantor IN, et al. AIDS pacient's long-term battle with multiply recurrent tuberculosis: reinfection or reactivation? Rev Argent Microbiol, 2010, 42(4):271-273.

[7] Cohn DL, Bustreo F, Raviglione MC. Drug-resistant tuberculosis:review of the worldwide situation and the WHO/IUATLD Global Surveillance Project. International Union Against Tuberculosis and Lung Disease. Clin Infect Dis, 1997, 24(1):121-130.

[8] Av-Gay Y, Everett M. The eukaryotic-like Ser/Thr protein kinases of Mycobacterium tuberculosis. Trends Microbiol, 2000, 8(5):238-244.

[9] Kang CM, Abbott DW, Park ST, et al. The Mycobacterium tuberculosis serine/threonine kinases PknA and PknB: substrate identification and regulation of cell shape. Genes Dev, 2005, 19(14): 1692-1704.

[10] Del Sol R, Mullins JG, Grantcharova N, et al. Influence of CrgA on assembly of the cell division protein FtsZ during development of Streptomyces coelicolor. J Bacteriol, 2006, 188(4):1540-1550.

[11] Matsuhashi M. Utilization of lipid-linked precursors and the formation of peptidoglycan in the process of cell growth and division. San Diego: Elsevier Science Publisher B, 1994:55-71.

[12] Manning G, Whyte DB, Martinez R, et al. The protein kinase complement of the human genome. Science, 2002, 298(5600):1912- 1934.

[13] Capdeville R, Buchdunger E, Zimmermann J, et al. Glivec (STI571, imatinib), a rationally developed, targeted anticancer drug. Nat Rev Drug Discov, 2002, 1(7):493-502.

[14] Fabbro D, Parkinson D, Matter A. Protein tyrosine kinase inhibitors: new treatment modalities? Curr Opin Pharmacol, 2002, 2(4):374-381.

[15] Wei YZ, Zhang YQ, Zhao LL, et al. Isolation, screening and preliminary identification of endophytic actinobacteria from mangroves at Shankou of Guangxi Province. Microbiol China, 2010, 37(6):823-828. (in Chinese)

魏玉珍, 張玉琴, 趙莉莉, 等. 廣西山口紅樹林內生放線菌的分離、篩選及初步鑒定. 微生物學通報, 2010, 37(6):823-828.

[16] Zou WJ, Liu ZG, Jiang AH, et al. Doxycycline induces apoptosis in THP-1 cells. Chin J Pathophysiology, 2007, 23(6):1195-1198. (in Chinese)

鄒文進, 劉祖國, 蔣愛華, 等. 多西環(huán)素誘導單核細胞系THP-1凋亡的實驗研究. 中國病理生理雜志, 2007, 23(6):1195-1198.

[17] Xing Y, Huang B, Xu J, et al. The establishment and application of a high throughput screening assay for inhibitors of Mycobacterium tuberculosis protein kinase B. Microbiol China, 2014, 41(4):646-653. (in Chinese)

邢韻, 黃彬, 徐建, 等. 以蛋白激酶B為靶點的新型抗結核藥物高通量篩選模型的建立和應用. 微生物學通報, 2014, 41(4):646-653.

[18] Shao TS, Wei YZ, Li QP, et al. The establishment and application of anti-tuberculosis drugs screening model targeting to PknG. Microbiol China, 2010, 37(2):312-318. (in Chinese)

邵天舒, 魏玉珍, 李秋萍, 等. 以蛋白激酶G為靶點的抗結核藥物篩選模型的建立和初步應用. 微生物學通報, 2010, 37(2):312-318.

[19] Zhang LR, Zhao LL, Wei YZ, et al. The establishment and application of high throughput screening model targeting to Mycobacterium tuberculosis peptide deformylase. Chin Med Biotechnol, 2012, 7(2):110-115. (in Chinese)

張麗蓉, 趙莉莉, 魏玉珍, 等. 以肽脫甲?；笧榘悬c的抗結核藥物高通量篩選模型的建立和應用. 中國醫(yī)藥生物技術, 2012, 7(2): 110-115.

[20] Zhang ZM, Sun Y, Zhao LL, et al. The establishment and application of a high throughput screening assay for inhibitors of Mycobacterium tuberculosis Phenylalanyl-tRNA synthetase. Microbiol China, 2012, 39(10):1437-1446. (in Chinese)

張志明, 孫瑩, 趙莉莉, 等. 以苯丙氨酰-tRNA合成酶為靶點的新型抗結核藥物高通量篩選模型的建立和應用. 微生物學通報, 2012, 39(10):1437-1446.

[21] Schreiber M, Res I, Matter A. Protein kinases as antibacterial targets. Curr Opin Cell Biol, 2009, 21(2):325-330.

[22] Chopra P, Singh B, Singh R, et al. Phosphoprotein phosphatase of Mycobacterium tuberculosis dephosphorylates serine-threonine kinases PknA and PknB. Biochem Biophys Res Commun, 2003, 311(1):112-120.

[23] Thakur M, Chaba R, Mondal AK, et al. Interdomain interaction reconstitutes the functionality of PknA, a eukaryotic type Ser/Thr kinase from Mycobacterium tuberculosis. J Biol Chem, 2008, 283(12): 8023-8033.

[24] Thakur M，Chakraborti PK. GTPase activity of mycobacterial FtsZ is impaired due to its transphosphorylation by the eukaryotic-type Ser/Thr kinase, PknA. J Biol Chem, 2006, 281(52):40107-40113.

[25] Thakur M, Chakraborti PK. Ability of PknA, a mycobacterial eukaryotic-type serine/threonine kinase, to transphosphorylate MurD, a ligase involoved in the process of peptidoglycan biosynthesis. Biochem J, 2008, 415(1):27-33.

[26] Chaba R, Raje M, Chakraborti PK. Evidence that a eukaryotic-type serine/threonine protein kinase from Mycobacterium tuberculosis regulates morphological changes associated with cell division. Eur J Biochem, 2002, 269(4):1078-1085.

Establishment and application of a high throughput screening assay for inhibitors ofPknA

LUO Rui, XU Jian, WEI Yu-zhen, LI Hai-long, LIU Hong-yu, SU Jing, ZHAO Li-li, ZHANG Yu-qin, YU Li-yan

To establish and validate a high throughput assay for screening the inhibitors ofPknA.

Agene from the genome DNA ofH37Rv was amplified and recombinant plasmid pET43.1a-was constructed to express the PknA protein in. Using purified PknA, a high throughput screening model was established and optimized to screen for PknA inhibitors. The microbial fermentation extracts were screened using the screening assay, and the anti-bacterial activity, cytotoxicity and specific inhibitory effect of positive samples were further assessed.

21 out of 4000 microbial fermentation extracts were identified with inhibitory effect on activity of PknA, among which 4 samples showed antibacterial activity, lower cytotoxicity and better specificity of inhibitory effect.

The establishment of high throughput screening method and these 8 positive microbial fermentation extracts will facilitate the development of novel antitubercular agents.

Cyclic AMP-dependent protein kinases; Drug evaluation, preclinical; Antitubercular agents; High throuphput screening

YU Li-yan, Email: yly@cpcc.ac.cn

10.3969/cmba.j.issn.1673-713X.2014.06.002

國家自然科學基金（30970038、81373452）；國家微生物資源平臺（NIMR-2013-3）；國家科技重大專項（2014ZX09201001-011）

余利巖，Email：yly@cpcc.ac.cn

2014-05-04

Author Affiliation: Institute of Medicinal Biotechnology, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100050, China