田 中 樂,吳 文 忠,張 春 枝,吳 迪
(1.大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院,遼寧 大連 116034;2.大連醫(yī)諾生物有限公司,遼寧 大連 116600)
亮氨酸屬于支鏈氨基酸,是人體必需氨基酸中的一種。L-亮氨酸的生產(chǎn)方法有蛋白水解法、化學(xué)合成法、酶催化法、微生物發(fā)酵法等[1]。國內(nèi)L-亮氨酸的生產(chǎn)主要在天然蛋白水解液中提取,微生物直接發(fā)酵目前也已經(jīng)有中試生產(chǎn)的報(bào)道[2]。工業(yè)化的L-亮氨酸需要分離提純,一般的方法有離子交換法、沉淀法、乳狀液膜法及膜分離技術(shù)法[3-4]??紤]到這些方法的處理量、純度、成本等問題,本文著重利用酶液水解L-亮氨酸異丁酯的方法來獲得高純的L-亮氨酸產(chǎn)品,并通過進(jìn)行正交試驗(yàn)對(duì)工藝參數(shù)的優(yōu)化來提高L-亮氨酸收率。
L-亮氨酸(w>98.5%),湖北新生源生物工程公司;L-亮氨酸異丁酯,由L-亮氨酸制得;脂肪酶粉A,來源于試驗(yàn)室;脂肪酶DF“天野”15、脂肪酶G“天野”50、脂肪酶A“天野”6,日本天野酶公司;胰酶,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;木瓜蛋白酶,南寧龐博生物工程有限公司;磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀、氫氧化鈉、無水甲酸、高氯酸、冰醋酸、無水乙醇,分析純;甘氨酸,生化試劑。
按不同pH配制緩沖液體系,將脂肪酶粉A投入到緩沖液中(m(脂肪酶粉A)/V(緩沖液)=0.075g/mL,脂肪酶粉酶活為100 000U/g),轉(zhuǎn)子攪拌提取20min,3 000r/min離心20min,傾倒出上清液即得試驗(yàn)所需脂肪酶液,4℃冰箱冷藏。
稱取L-亮氨酸異丁酯2.0g和適量的酶液,放置于一定溫度的搖床中,用L-亮氨酸的溶解度提前飽和反應(yīng)液,封口膜封口,170r/min搖床中反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束冷卻至室溫,過濾,無水乙醇洗滌,烘箱干燥得L-亮氨酸,稱量后計(jì)算L-亮氨酸收率。
取試驗(yàn)所得L-亮氨酸約0.1g,精密稱定,加無水甲酸1mL溶解后加冰醋酸25mL,按照電位滴定法[5],用高氯酸滴定液(0.1mol/L)滴定,并將滴定的結(jié)果用空白試驗(yàn)校正。
2.1.1 不同酶對(duì)L-亮氨酸異丁酯水解效果的影響
分別用3種天野脂肪酶、木瓜蛋白酶、胰酶以及脂肪酶粉A的水提酶液對(duì)L-亮氨酸異丁酯進(jìn)行水解試驗(yàn),反應(yīng)條件為:L-亮氨酸異丁酯質(zhì)量為2.0g,加入不同酶制成酶液25mL,反應(yīng)前用L-亮氨酸飽和(添加的溶解度按在25℃、100mL水中的溶解度2.3g,即每25mL酶液溶解0.575g L-Leu),46 ℃、170r/min 搖 床 中 反 應(yīng)8h。由表1知,6種酶僅有胰酶及脂肪酶A對(duì)L-亮氨酸異丁酯具有水解作用。脂肪酶 A 水解L-亮氨酸異丁酯得到的L-亮氨酸收率最高,胰酶是混合酶,部分酶起作用時(shí)可能會(huì)伴隨副反應(yīng),故選擇脂肪酶A進(jìn)行L-亮氨酸異丁酯的水解試驗(yàn)。
表1 不同酶對(duì)L-亮氨酸收率的影響Tab.1 Effect of different enzymes on the yield of L-leucine
2.1.2 緩沖液體系對(duì)L-亮氨酸收率的影響
在純水及 KH2PO4-NaOH、KH2PO4-K2HPO4、Gly-NaOH緩沖液體系條件下分別對(duì)脂肪酶粉A進(jìn)行溶解離心,物料比為1∶12.5,酶液先用L-亮氨酸飽和,加入L-亮氨酸異丁酯2.0g,48℃、170r/min搖床中反應(yīng)8h,考察緩沖液體系對(duì)L-亮氨酸收率的影響。如表2所示,4種緩沖體系所提酶液中,Gly-NaOH緩沖液體系水解L-亮氨酸異丁酯效果最好,用純水提取的酶液收率次之,并且反應(yīng)后生成的L-亮氨酸溶液中因沒有離子存在使其部分黏壁,處理較困難。選擇Gly-NaOH緩沖液體系(pH 9.4)水解L-亮氨酸異丁酯。
表2 緩沖液體系對(duì)L-亮氨酸收率的影響Tab.2 Effect of different buffer systems on the yield of L-leucine
2.1.3 物料比對(duì)L-亮氨酸收率的影響
通過確定底物L(fēng)-亮氨酸異丁酯的質(zhì)量、改變酶液用量的方法來調(diào)整物料比。L-亮氨酸異丁酯質(zhì)量為2.0g,分別加入15,18,20,25,30mL的酶液,即L-亮氨酸異丁酯與水的物料比為1∶7.5,1∶9,1∶10,1∶12.5及1∶15。酶液先用L-亮氨酸溶解度飽和,反應(yīng)溫度為48℃,170r/min搖床中反應(yīng)8h,考察物料比對(duì)L-亮氨酸收率的影響。由圖1可知,當(dāng)物料比從1∶10到1∶12.5時(shí),L-亮氨酸的收率由低到高的過程,在物料比增至1∶15時(shí),收率增加不大??紤]到最優(yōu)的酶液總量,需滿足最適的底物濃度,選擇L-亮氨酸異丁酯的水解反應(yīng)的物料比為1∶12.5。
圖1 物料比對(duì)L-亮氨酸收率的影響Fig.1 Effect of material ratio on the yield of L-leucine
2.1.4 反應(yīng)時(shí)間對(duì)L-亮氨酸收率的影響
L-亮氨酸異丁酯初始被水解時(shí),很長時(shí)間都保持油狀,為了獲得較為準(zhǔn)確的數(shù)據(jù),選擇從8h開始。在L-亮氨酸異丁酯為2.0g、物料比為1∶12.5、酶液先用L-亮氨酸飽和、48℃、170r/min的條件下,考察不同的反應(yīng)時(shí)間下L-亮氨酸收率。由圖2可知,L-亮氨酸異丁酯在水解過程中,隨著時(shí)間的增加,L-亮氨酸的收率逐漸增加,12h時(shí)收率達(dá)到89.23%。繼續(xù)增加時(shí)間,L-亮氨酸收率基本不增加,所以選擇最佳反應(yīng)時(shí)間為12h。
圖2 反應(yīng)時(shí)間對(duì)L-亮氨酸收率的影響Fig.2 Effect of reaction time on the yield of L-leucine
2.1.5 反應(yīng)溫度對(duì)L-亮氨酸收率的影響
在L-亮氨酸異丁酯為2.0g,加入25mL的L-亮氨酸飽和后酶液,搖轉(zhuǎn)速為170r/min,反應(yīng)溫度分別為44、46、48、50、54℃條件下反應(yīng)12h,考察反應(yīng)溫度對(duì)L-亮氨酸收率的影響。如圖3所示,在44~50℃時(shí),L-亮氨酸收率呈增加趨勢(shì),溫度到達(dá)54℃時(shí),L-亮氨酸的收率大幅度減小。溫度過低時(shí),脂肪酶水解速率較慢,溫度過高時(shí)酶容易加快變性,所以選擇反應(yīng)溫度為50℃較合適。
圖3 反應(yīng)溫度對(duì)L-亮氨酸收率的影響Fig.3 Effect of reaction temperature on the yield of L-leucine
2.2.1 正交試驗(yàn)
根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,采用L9(34)正交表,以L-亮氨酸收率為指標(biāo),因素水平和正交試驗(yàn)結(jié)果及分析分別見表3、4。從表3、4可以看出,影響L-亮氨酸收率的因素順序?yàn)榱弦罕?、反?yīng)溫度、反應(yīng)時(shí)間,最佳的組合為C3A2B3,即料液比為1∶13,反應(yīng)溫度為50℃,反應(yīng)時(shí)間為13h。
2.2.2 驗(yàn)證性試驗(yàn)
采用正交試驗(yàn)確定最佳的脂肪酶A水解L-亮氨酸異丁酯的工藝條件,以L-亮氨酸收率為指標(biāo),進(jìn)行驗(yàn)證性試驗(yàn)。3個(gè)平行反應(yīng)結(jié)果表明,在此條件下L-亮氨酸的收率為95.23%。
表3 正交試驗(yàn)因素水平表Tab.3 Level table of orthogonal exprimental design
表4 正交試驗(yàn)結(jié)果及分析Tab.4 Result of analysis of orthogonal exprimental
通過不同酶作催化劑水解L-亮氨酸異丁酯,發(fā)現(xiàn)脂肪酶A對(duì)L-亮氨酸異丁酯水解效果最好。通過單因素及正交試驗(yàn)獲得了最佳的工藝參數(shù):以L-亮氨酸異丁酯為原料,選擇Gly-NaOH緩沖液體系提取脂肪酶液,用L-亮氨酸溶解度的質(zhì)量飽和酶液,搖床轉(zhuǎn)速為170r/min,物料比為1∶13,反應(yīng)溫度為50℃,反應(yīng)時(shí)間13h。L-亮氨酸的收率為95.23%。對(duì)所得到的L-亮氨酸進(jìn)行含量測(cè)定,測(cè)定其純度為99.80%。該方法制備的L-亮氨酸產(chǎn)品色澤光亮,純度好,L-亮氨酸收率高。
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