周 廣 麒,齊 文 茂,陳 成,曹 照 平,王 興,曲 世 奇
(大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院,遼寧 大連 116034)
葡萄渣中含有20%左右的纖維物質(zhì)。利用葡萄渣生產(chǎn)飼料其有效營養(yǎng)組分并不充足,且應(yīng)考慮到纖維素降解問題[1]。近些年來,纖維素酶制劑用于發(fā)酵飼料已被接受,不僅可以有效降低飼料中的纖維素含量,同時(shí)也能改善飼料的適口性[2]。香菇菌是著名的食用真菌,菌體內(nèi)含有多種氨基酸、維生素和礦質(zhì)元素,同時(shí)還具有產(chǎn)生纖維素酶的能力[3-4]。發(fā)酵飼料時(shí)所用的酵母菌也是安全食用菌。利用酵母菌發(fā)酵可以軟化植物組織,其與香菇共同作用,更可將纖維素降解時(shí)生成的糖發(fā)酵成其他代謝產(chǎn)物,同時(shí)繁殖大量生物細(xì)胞,提高飼料中蛋白含量及品質(zhì)[5-6],顯著改善發(fā)酵飼料的營養(yǎng)價(jià)值。本文研究了香菇菌和葡萄酒酵母菌共生發(fā)酵葡萄皮渣產(chǎn)生纖維素酶的條件。
冰葡萄渣,遼寧五女山米蘭酒業(yè)有限公司提供。將冰葡萄渣置于室溫下解凍,去枝干及殘留土石塊,經(jīng)研磨成果漿備用。
麩皮,由大連棒棰島食品集團(tuán)調(diào)味食品廠提供。
香菇,市場購買由人工栽培的香菇子實(shí)體,要求生長飽滿、完整,分離純化所得,保藏。
“安琪”葡萄酒活性干酵母,廠家網(wǎng)絡(luò)銷售。
取馬鈴薯200g,去皮、切塊,加水1 000mL,煮沸30min,紗布過濾;分別加入蔗糖20g和瓊脂15~20g,加熱溶化;pH 自然;121℃滅菌20min。
1.2.2 液體培養(yǎng)基
取未加入瓊脂的PDA液體培養(yǎng)基,補(bǔ)加硫酸鎂0.1%,磷酸二氫鉀0.1%[7],冰葡萄渣3%和麩皮3%,121℃滅菌40min。
1.3.1 香菇菌的組織分離和活化
采取無菌操作方法,將香菇用75%酒精消毒,在菌蓋和菌柄交界處切取內(nèi)部組織如麥粒大小菌塊,接入PDA培養(yǎng)基的試管斜面中央,于25℃培養(yǎng)15d至白色菌絲長滿斜面[8]。
1.3.2 酵母菌活化
稱取“安琪”葡萄酒活性干酵母0.5g,加入含2%葡萄糖溶液中,27℃活化培養(yǎng)2h,使之進(jìn)入對數(shù)生長期階段。
1.3.3 發(fā)酵試驗(yàn)
法律法規(guī)是離任審計(jì)工作的規(guī)范,相關(guān)人員在法律法規(guī)要求下開展審計(jì)工作,然而我國離任審計(jì)工作起步較晚,造成審計(jì)工作的弊端較多。例如當(dāng)前我國眾多地勘單位的離任審計(jì)工作只是一項(xiàng)書面上的工作,即有關(guān)法定負(fù)責(zé)人只是根據(jù)法律規(guī)范的書寫要求,填寫審計(jì)工作的任務(wù)單,根本就沒有從實(shí)際出發(fā),發(fā)現(xiàn)自身工作的優(yōu)勢與劣勢,更沒有對工作的合理性展開分析。因此離任審計(jì)工作逐步淪為一種形式性的任務(wù),即使部分地勘單位審計(jì)工作人員嚴(yán)格執(zhí)行相關(guān)法律法規(guī),也無法保證審計(jì)工作的過程公開性,最終使問責(zé)的主體人員不明確,這種情況代表工作人員即使發(fā)現(xiàn)問題,也找不到解決的人員與措施,審計(jì)工作成為無用功。
在無菌條件下,向液體培養(yǎng)基中接入1cm2左右試管斜面香菇菌種,25℃、150r/min的搖床培養(yǎng)5d,待發(fā)酵液中大量生長香菇菌絲體時(shí),接種經(jīng)活化的安琪葡萄酒酵母菌液,繼續(xù)培養(yǎng)3d終止,即為香菇菌-酵母菌共生發(fā)酵液。
1.3.4 纖維素酶活力測定
發(fā)酵液過濾后得到粗酶液。按濾紙酶活力(FPA)測定法[9],向具塞刻度試管中加入粗酶液1mL和pH 4.5的檸檬酸緩沖液1.5mL,50℃水浴5~10min(預(yù)熱),然后加入濾紙條(新華定量濾紙)50mg,保溫1h,立刻加入1.5mL DNS終止酶反應(yīng),檢測OD值并在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出葡萄糖含量,依據(jù)公式計(jì)算出濾紙酶活力。濾紙酶活力定義:在50℃、pH 4.5條件下水解1h纖維素生成1μmol葡萄糖的量,為一個(gè)酶活力單位(U/g)。
式中:m1為纖維素降解所得葡萄糖質(zhì)量,mg;V1為酶液體積,mL;V2為反應(yīng)液中酶液加入量,mL;m2為樣品質(zhì)量,g;t為反應(yīng)時(shí)間,h;5.56為1mg葡萄糖的物質(zhì)的量,μmol。
1.3.5 酵母菌數(shù)的測定
取發(fā)酵液1mL用無菌水倍比稀釋,采用血球計(jì)數(shù)板直接計(jì)數(shù)法。
1.3.6 香菇菌生物量的測定
用已知質(zhì)量的干燥濾紙過濾發(fā)酵液,蒸餾水沖洗菌絲體3次,將濾紙與香菇菌絲體一起放入烘干箱中,80℃烘干4h,轉(zhuǎn)入干燥器中冷卻至室溫,反復(fù)稱量直至恒重[10]。
在25℃條件下,150r/min搖床培養(yǎng)香菇菌5d,然后接種酵母菌混菌培養(yǎng)72h,分別與香菇菌或酵母菌單菌培養(yǎng)狀態(tài)相比較,生長曲線分別如圖1和圖2所示。
圖1 香菇菌-酵母菌共生培養(yǎng)與香菇菌培養(yǎng)的生長曲線Fig.1 Growth curve of the symbiotic fermentation and Lentinula edodes single strain fermentation
圖2 香菇菌-酵母菌共生培養(yǎng)與酵母菌培養(yǎng)的生長曲線Fig.2 Growth curve of the symbiotic fermentation and the yeast single strain fermentation
由圖1可見,2組培養(yǎng)液中香菇生長狀態(tài)相似,至第8天,共生液中香菇菌生物量為13.6g/L,略高于單生香菇菌的12.3g/L,大概是其中有部分酵母菌的緣故。
由圖2可見,當(dāng)香菇菌培養(yǎng)至第5天時(shí)接種酵母菌,此后72h共生培養(yǎng)液中的酵母菌數(shù)與單生酵母菌數(shù)量幾乎一致,前者為3.64×108個(gè)/mL,后者達(dá)到3.81×108個(gè)/mL,相差不大。經(jīng)鏡檢觀察,共生發(fā)酵液中酵母菌生長狀態(tài)良好。
圖1和圖2表明,香菇菌和酵母菌可以在PDA培養(yǎng)液中生長,且共生情況良好。
液體PDA培養(yǎng)基中接種香菇菌,在25℃條件下150r/min搖床培養(yǎng),至第5天接種酵母菌混菌培養(yǎng)72h,共計(jì)8d。從48h開始,每隔24h鏡檢一次。結(jié)果見圖3。從圖3中可見,香菇菌和酵母菌在液體PDA培養(yǎng)基中均生長茂盛、和諧,6d以后鏡下可見大量香菇菌絲體和出芽的酵母菌(圖3(d)、(e)中箭頭所指)。香菇菌絲多以聚集狀態(tài)纏繞在一起,大量菌絲向菌團(tuán)外延伸生長(圖3(d)、(e)、(f));酵母菌細(xì)胞遍布整個(gè)視野,出芽率為15%左右。
圖3 香菇菌-酵母菌共生培養(yǎng)生長狀況顯微照片F(xiàn)ig.3 The microscopic photograph of Lentinula edodes-yeast symbiotic fungus cultivation
在適宜的培養(yǎng)條件下,香菇菌發(fā)酵可以產(chǎn)生纖維素酶以降解培養(yǎng)基中纖維物質(zhì)[11]。在香菇菌-酵母菌共生發(fā)酵過程中,香菇菌生成纖維素酶的能力沒有改變,如圖4所示。由圖4可以看出,0~2d香菇菌發(fā)酵液中纖維素酶活力增長緩慢,第2天時(shí)濾紙酶活力為0.41U/g,2~6d纖維素酶近似于線性增長達(dá)到2.1U/g,而后生成減緩,第8d濾紙酶活力為2.35U/g。
圖4 香菇菌-酵母菌共生發(fā)酵與香菇菌發(fā)酵生成纖維素酶的情況Fig.4 The contrast of producing cellulase between the symbiotic fermentation and the mushroom single strain fermentation
為了得到更好的發(fā)酵效果,采用正交試驗(yàn)法確定香菇菌-酵母菌共生發(fā)酵的最適基質(zhì),在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選取4個(gè)主要影響生長的因素:葡萄渣質(zhì)量分?jǐn)?shù)(A)、蔗糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)(B)、硫酸鎂和磷酸二氫鉀質(zhì)量分?jǐn)?shù)(C)、麩皮質(zhì)量分?jǐn)?shù)(D)。按L9(34)進(jìn)行正交試驗(yàn),因素水平見表1。
表1 基質(zhì)配伍正交試驗(yàn)L9(34)的因素和水平Tab.1 Formula-factors and levels of L9(34)orthogonal test
按照正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案L9(34)進(jìn)行共生發(fā)酵基質(zhì)的優(yōu)化試驗(yàn),分別檢測9組試驗(yàn)組合中的香菇菌生物量M,每組2個(gè)平行試驗(yàn)取平均值,結(jié)果見表2。
表2 基質(zhì)配伍L9(34)正交試驗(yàn)結(jié)果Tab.2 Formula-results of L9(34)orthogonal experiment
以香菇菌生物量為檢測對象,對表2數(shù)據(jù)做極差分析,將最次要因素D作為空列,再進(jìn)行方差分析,結(jié)果見表3。
表3 基質(zhì)配伍試驗(yàn)結(jié)果方差分析Tab.3 Formula-variance analysis of orthogonal test result
由表3可知,因素B影響顯著,因素A影響較顯著,因素C對結(jié)果影響很小。因素作用的主次順序是B>A>C,最優(yōu)水平組合為A2B3C3,因素D無影響,可選擇D1,即香菇菌-酵母菌共生發(fā)酵主要影響生長的因素最優(yōu)配比為:葡萄渣3%,蔗糖3%,微量元素0.3%,麩皮3%。
因?yàn)樽顑?yōu)組合不在表2的9組試驗(yàn)中,所以在最優(yōu)條件下做驗(yàn)證試驗(yàn),取2組平行試驗(yàn)結(jié)果的平均值:香菇菌-酵母菌共生培養(yǎng)8d,香菇菌生物量達(dá)到2.31g/L,比優(yōu)化前提高了57.4%,酵母菌細(xì)胞計(jì)數(shù)為4.54×108個(gè)/mL。
采用正交試驗(yàn)法對香菇菌-酵母菌共生發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶的最佳條件進(jìn)行優(yōu)化,根據(jù)影響酶活力的主要工藝因素,包括溫度、pH、培養(yǎng)時(shí)間等,確定考察的因素為:溫度(G)、pH(H)、發(fā)酵時(shí)間(I)。選擇正交表L9(34),因素和水平見表4。
表4 發(fā)酵條件L9(34)正交試驗(yàn)的因素和水平Tab.4 Fermentation condition-factors and levels of L9(34)orthogonal test
按照正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案L9(34)進(jìn)行共生發(fā)酵條件的優(yōu)化試驗(yàn),分別檢測9組試驗(yàn)組合的纖維素酶量,每組2個(gè)平行試驗(yàn)取平均值,結(jié)果見表5。J為空列。
表5 發(fā)酵條件L9(34)正交試驗(yàn)結(jié)果Tab.5 Fermentation condition-results of L9(34)orthogonal experiment
以纖維素酶為檢測對象,對表5數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析,結(jié)果見表6。
表6 發(fā)酵條件試驗(yàn)結(jié)果方差分析Tab.6 Fermentation condition-variance analysis of orthogonal test result
由表6數(shù)據(jù)可見,因素H和因素G對結(jié)果影響顯著,尤其是因素H;因素I對結(jié)果影響不大。因素作用的主次順序是H>G>I,其產(chǎn)纖維素酶的最優(yōu)條件為G3H1I3,即溫度27℃,pH 5.5,發(fā)酵時(shí)間3~5d。
由于最優(yōu)組合不在表5的試驗(yàn)組合中,所以做驗(yàn)證試驗(yàn),結(jié)果是:采取A2B3C3D1的最佳基質(zhì)配方,共生發(fā)酵3d,纖維素酶活3.2U/g,此時(shí)香菇菌生物量為21.4g/L,酵母菌細(xì)胞計(jì)數(shù)為3.61×108個(gè)/mL,符合正交試驗(yàn)的預(yù)期結(jié)果。實(shí)際做法是,將香菇菌在25℃條件下培養(yǎng)5d,然后升溫到27℃培養(yǎng),此時(shí)接種酵母菌共生培養(yǎng),香菇菌開始快速生成纖維素酶,發(fā)酵至第8天結(jié)束,即可滿足生產(chǎn)要求。
對香菇菌與酵母菌共生發(fā)酵條件進(jìn)行了初步探索,證明香菇菌和酵母菌可以共生,香菇菌產(chǎn)生的纖維素酶能降解葡萄渣培養(yǎng)基中的纖維物質(zhì)[12]生成可發(fā)酵性糖,被酵母菌所利用,可以生長菌體和發(fā)酵產(chǎn)物。將香菇和酵母菌混合,利用優(yōu)化后的共生發(fā)酵液制成微生物發(fā)酵劑,可用于降解草本或木本植物中的纖維物質(zhì),從而達(dá)到軟化原料、提高原料利用率的效果。將這種方法用于飼料生產(chǎn),既可以在飼料中使用更多的纖維原料,又能獲得大量生物質(zhì)蛋白,還會(huì)增加醇酯等風(fēng)味,提高飼料的適口性。
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