王承勇, 林 海, 王 錦, 危紅英, 張德慶, 盧 萌, 陳偉輝
成骨細(xì)胞和破骨細(xì)胞的增殖、分化和生長受到多重調(diào)節(jié)作用機(jī)制的影響,除了受局部生長因子、細(xì)胞因子及細(xì)胞黏附分子的調(diào)節(jié)作用外,還受到自主神經(jīng)系統(tǒng)的調(diào)節(jié)[1-4]。Bjurholm等研究表明,在骨組織中存在無髓交感神經(jīng)[5]。交感神經(jīng)對(duì)于骨組織改建和新骨形成中的作用越來越受到重視。較早的研究顯示,6-羥基多巴胺(6-HODA)等藥物可使沙鼠中耳泡中破骨細(xì)胞活性增強(qiáng),表現(xiàn)為骨吸收作用,認(rèn)為交感神經(jīng)能通過調(diào)節(jié)破骨細(xì)胞活性,促進(jìn)骨吸收[6];但最近的研究則提出相反的觀點(diǎn),Cherruau的研究從不同角度提出,交感神經(jīng)興奮可以促進(jìn)骨吸收,減少骨形成[7]。
交感神經(jīng)通過分泌神經(jīng)介質(zhì),包括兒茶酚胺類的β受體激動(dòng)劑以及NPY等神經(jīng)肽類物質(zhì),在骨改建和骨愈合中的作用是復(fù)雜和廣泛的,對(duì)于其作用機(jī)制還未完全明確。本實(shí)驗(yàn)在建立去交感神經(jīng)支配動(dòng)物模型的基礎(chǔ)上,通過建立拔牙窩骨缺損模型,探討去交感神經(jīng)支配對(duì)拔牙窩新骨形成和骨改建的調(diào)節(jié)作用。
1.1動(dòng)物及儀器 5周齡清潔級(jí)雄性SD大鼠50只,體質(zhì)量250~300 g[上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司,許可證號(hào):SCXK(滬)2003-0003];多功能顯微鏡(AX84U-MCB,日本奧林巴斯株式會(huì)社),切片機(jī)(2035,德國徠卡微系統(tǒng)有限公司),并根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求自制手術(shù)器械若干。
1.2實(shí)驗(yàn)方法 (1)失交感神經(jīng)支配模型:具體建模方法參見文獻(xiàn)[8]。50只SD大鼠按5個(gè)時(shí)間點(diǎn)(1,3,7,14,21 d)分為5組,每組10只,其中2只為預(yù)實(shí)驗(yàn)大鼠,未列入最后數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)分析。每組大鼠5只左側(cè)為頸上神經(jīng)節(jié)切除術(shù)組(SCGx),右側(cè)為假手術(shù)組(CG);另5只左側(cè)為CG組,右側(cè)為SCGx組;SCGx組為實(shí)驗(yàn)組,CG組為對(duì)照組。(2)拔牙窩骨愈合模型:10%水合氯醛300~350 mg腹腔注射麻醉,仰臥位,翻開口腔暴露上頜第一磨牙,分離牙齦,小刮匙挺出上頜第一磨牙,建立拔牙窩骨愈合模型。(3)不同時(shí)間點(diǎn)處死大鼠并行多聚甲醛內(nèi)灌注,切取大鼠上頜骨部分,置入新鮮配制4%多聚甲醛,4 ℃低溫固定過夜。微波法上頜骨快速脫鈣,持續(xù)脫鈣直到大頭針可以無阻力穿透上頜骨。
1.3H-E染色檢測拔牙窩 常規(guī)H-E染色,顯微拍照(×100)。利用Image-Pro Plus6.0軟件對(duì)照片進(jìn)行分析。選取拔牙窩區(qū)域作為興趣區(qū)域(AOI),分析拔牙窩內(nèi)組織情況。分為以下成分:血凝塊和血痂(blood clot and scab, BCAS)、未礦化組織(non-mineralized tissue, NMT)、編織骨(woven bone, WB)、板層骨(lamellar bone, LB)、新生骨組織(new bone, NB)、拔牙窩面積(T.Ar)、新骨面積(B.Ar),單位均為像素(pixel)。骨組織形態(tài)計(jì)量學(xué)參數(shù)包括:
新骨面積:B.Ar(NB)=WB+LB,表示拔牙窩內(nèi)新形成骨組織總和
骨體積分?jǐn)?shù):BV/TV=B.Ar/T.Ar×100%,表示既定拔牙窩內(nèi)新骨形成面積與拔牙窩面積之比
各組分分?jǐn)?shù)(以BCAS為例):BCAS/T.Ar×100%,表示拔牙窩內(nèi)各組成成分與拔牙窩面積之比
2.1各組拔牙窩組織形態(tài)學(xué) (1)1 d可見拔牙窩表面大量血性滲出物覆蓋,伴壞死及細(xì)菌感染。拔牙窩內(nèi)血凝塊形成,少量炎癥細(xì)胞浸潤,拔牙窩骨壁周圍可見殘留牙周膜以及纖維素性滲出物。未見新生血管形成,篩狀板周圍少量多核破骨細(xì)胞形成,伴少量骨吸收陷窩。實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組之間差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。(2)3 d可見拔牙窩近牙槽嵴部分有大量肉芽組織形成,血凝塊機(jī)化,毛細(xì)血管形成,拔牙窩中部及底部可見明顯纖維化過程,成纖維細(xì)胞生長活躍,血管數(shù)目較頂部肉芽組織少,拔牙窩底及部分樣本拔牙窩壁形成纖維性骨痂,少量編織骨形成,可見破骨細(xì)胞及骨吸收陷窩增多。對(duì)照組成骨細(xì)胞及編織骨少于實(shí)驗(yàn)組。(3)7 d可見拔牙窩纖維細(xì)胞生長活躍,血凝塊被完全機(jī)化,拔牙窩整體充滿大量成熟的纖維組織,毛細(xì)血管相對(duì)生長活躍,可見明顯編織骨的形成,局部可見骨化現(xiàn)象。側(cè)壁出現(xiàn)骨吸收陷窩,篩狀板因吸收表現(xiàn)為部分連續(xù)性中斷,對(duì)照組毛細(xì)血管相對(duì)較少。(4)14 d可見纖維性骨痂充填牙槽窩,纖維組織成熟,成骨活動(dòng)明顯。新骨形成部位周圍大量成骨細(xì)胞以及毛細(xì)血管分布,骨小梁結(jié)構(gòu)明顯,部分底部骨組織形成板層骨形態(tài)。對(duì)照組結(jié)構(gòu)松散,排列欠規(guī)則。(5)21 d可見骨小梁生長至牙槽嵴頂,骨組織趨于成熟,但骨小梁結(jié)構(gòu)較無序。骨小梁周圍骨髓組織形成,血管數(shù)量明顯減少。板層骨結(jié)構(gòu)對(duì)照組明顯少于實(shí)驗(yàn)組(圖1)。
A~E:實(shí)驗(yàn)組;a~e:對(duì)照組. A、a:1 d;B、b:3 d;C、c:7 d;D、d:14 d;E、e:21 d. :血凝塊和血痂;:牙周膜;:骨髓;:纖維性骨痂;:編織骨;:板層骨;:炎癥細(xì)胞;:血管.
2.2各指標(biāo)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析結(jié)果
2.2.1BV/TV 在術(shù)后早期,實(shí)驗(yàn)組新骨形成均較對(duì)照組快,表現(xiàn)為新骨形成量上的差異,在達(dá)到3周之后,新骨形成在量的方面,二者之間的差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,顯示新骨形成已經(jīng)趨近于穩(wěn)定的狀態(tài)(圖2)。
2.2.2拔牙窩各組成成分 1 d時(shí)間點(diǎn),拔牙窩內(nèi)由BCAS和NMT(主要是殘余牙周膜)兩部分組成,組成比例基本一致,差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。3 d時(shí)間點(diǎn),隨著BCAS機(jī)化的進(jìn)程,NMT開始明顯增多,但BCAS以及NMT在實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組之間差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。有少量新生的WB出現(xiàn),實(shí)驗(yàn)組多于對(duì)照組,差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。7 d時(shí)間點(diǎn),NMT在實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組中差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,反證包括編織骨和板層骨在內(nèi)的NB之間,實(shí)驗(yàn)組量大于對(duì)照組。在NB中,WB之間差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,而LB差別則有意義。14 d時(shí)間點(diǎn),NB及LB的形成上實(shí)驗(yàn)組均多于對(duì)照組;21 d時(shí)間點(diǎn),NB形成上實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組之間的差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,但是在NB中,實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組在WB、LB比例之間的差別均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(表1)。
SCGx:頸上神經(jīng)節(jié)切除術(shù)組;CG:假手術(shù)組. n=8. 與CG組比較,☆:P<0.05.
骨組織的改建是一個(gè)動(dòng)態(tài)平衡過程,骨和骨膜上分布著豐富的交感神經(jīng),而交感神經(jīng)來源的信號(hào)對(duì)成骨細(xì)胞以及破骨細(xì)胞的生長與分化起著特殊的刺激作用。神經(jīng)系統(tǒng)功能紊亂往往可以直接影響骨形成與改建,表現(xiàn)為局部骨質(zhì)減少、病理性骨折、骨折愈合異常、拔牙后牙槽骨吸收和過量骨痂形成等[4,9-10]。
表1 各組拔牙窩構(gòu)成
在之前的研究中,Sherman等利用6-HODA在沙鼠上進(jìn)行試驗(yàn)表明,失交感神經(jīng)支配可以導(dǎo)致骨吸收明顯增加,新骨形成減弱[11]。另一項(xiàng)研究也表明,在失交感神經(jīng)支配的下頜骨骨膜上破骨細(xì)胞增加[6]。其觀點(diǎn)支持交感神經(jīng)的作用是促進(jìn)骨形成,降低骨吸收。
另一方面,Togari的研究指出,交感神經(jīng)末梢對(duì)骨組織中的成骨細(xì)胞以及破骨細(xì)胞均產(chǎn)生影響[12];且近年來的研究指出,交感神經(jīng)活動(dòng)對(duì)骨形成與改建有抑制作用,其作用通過活化成骨細(xì)胞上的β-腎上腺素受體,減少骨基質(zhì)形成[13-15],又通過活化成骨細(xì)胞β-腎上腺素受體,增加了RANKL的表達(dá),后者可以增強(qiáng)破骨細(xì)胞活性和促進(jìn)破骨細(xì)胞形成增強(qiáng)骨吸收作用。Okada等研究發(fā)現(xiàn),應(yīng)用心得安這類β-腎上腺素受體抑制劑可以抑制牙周炎大鼠骨吸收,減少牙槽嵴的骨喪失[16]。近年來的研究均表明交感神經(jīng)作用可以抑制骨形成。
在本實(shí)驗(yàn)中,各時(shí)間段拔牙窩骨形成與改建過程在大體標(biāo)本以及形態(tài)學(xué)表現(xiàn)上同Sato等的研究類似[17],僅在同一時(shí)間點(diǎn)的表現(xiàn)上略有不同。在拔牙術(shù)后3,7,14 d時(shí)間點(diǎn)上,實(shí)驗(yàn)組的新骨形成相對(duì)于對(duì)照組差別具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,即失交感神經(jīng)側(cè)牙槽窩新骨骨量大于交感神經(jīng)支配側(cè)骨量,失交感神經(jīng)支配對(duì)新骨形成起到促進(jìn)作用。術(shù)后21 d時(shí)間點(diǎn),2組之間差別已無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,新骨形成趨于穩(wěn)定,這說明在抑制交感神經(jīng)之后,可以更快地達(dá)到骨形成與骨吸收的平衡點(diǎn)。Haug等的研究從另一方面提出交感神經(jīng)與感覺神經(jīng)在神經(jīng)生長上存在著相互競爭的作用,選擇性的切斷一種神經(jīng)支配會(huì)導(dǎo)致另一種神經(jīng)過度生長,繼而通過增強(qiáng)感覺神經(jīng)對(duì)骨形成的促進(jìn)作用從而促進(jìn)新骨形成[18]。
本實(shí)驗(yàn)針對(duì)新生骨組織中不同的骨質(zhì)成分進(jìn)行單獨(dú)分析發(fā)現(xiàn),在術(shù)后3~21 d的骨愈合早期,新生骨組織變化具有特別意義,不僅表現(xiàn)為新骨形成,并在此過程中伴隨著骨改建和骨成熟。拔牙術(shù)后3~14 d時(shí)間點(diǎn)上不僅表現(xiàn)為總新骨形成差異,而且在成熟的板層骨形成差別也具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。這個(gè)差異在21 d最為明顯(P<0.01)。這說明失交感神經(jīng)支配對(duì)于新骨形成不僅表現(xiàn)在促進(jìn)骨形成,同時(shí)也促進(jìn)了新骨組織的成熟,從而證實(shí)交感神經(jīng)不僅抑制骨形成,也抑制骨改建,延遲了骨成熟,對(duì)于拔牙窩的完全骨愈合起到抑制作用。
綜上所述,失交感神經(jīng)支配不僅僅對(duì)骨形成具有促進(jìn)作用,對(duì)骨改建和新骨成熟也具有顯著的意義。
參考文獻(xiàn):
[1] 王承勇, 陳偉輝, 林 海, 等. 神經(jīng)支配與種植體骨結(jié)合和骨感知的相關(guān)性[J]. 中國組織工程研究與臨床康復(fù), 2010,14(4):684-688.
[2] 陳偉輝, 喬 鞠, 田衛(wèi)東. 應(yīng)力作用下生長因子對(duì)成骨細(xì)胞增殖和分化的調(diào)節(jié)[J]. 國外醫(yī)學(xué)口腔醫(yī)學(xué)分冊, 1999,26(6):347-350.
[3] Ransjo M, Lie A, Mukohyama H,etal. Miroisolated mouse osteoclasts express VIP-1 and PACAP receptors[J].BiochemBiophysResCommun, 2000,274(2):400.
[4] Boggio V, Ladizesky M G, Cutrera R A,etal. Autonomic neural signals in bone: physiological implications for mandible and dental growth[J].LifeSciences, 2004,75(4):383-395.
[5] Bjurholm A, Kreicbergs A, Terenius L,etal. Neuropeptide Y-, tyrosine hydroxylase- and vasoactive intestinal polypeptide-immunoreactive nerves in bone and surrounding tissues[J].AutonNervSyst, 1988,25(2):119-125.
[6] Sherman B E, Chole R A. Effects of catecholamines on calvarial bone resportioninvitro[J].AnnOtolRhinolLaryngol, 2001,110 (7 Pt 1):682-689.
[7] Cherruau M, Morvan F O, Schirar A,etal. Chemical sympathectomy-induced changes in TH-, VIP-, and CGRP-immunoreactive fibers in the rat mandible periosteum: influence on bone resorption[J].JCellPhysiol, 2003,194(3):341-348.
[8] 林 海, 王承勇,王 錦,等. 頸上神經(jīng)節(jié)切除術(shù)構(gòu)建失交感神經(jīng)支配大鼠模型[J]. 福建醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào), 2013,47(6):362-365.
[9] Yoshimoto M, Konig B, Allegrini S,etal. Bone healing after the inferior alveolar nerve lateralization: a histologic study in rabbits[J].JOralMaxillofacSurg, 2004,62(9):131-135.
[10] 徐 琳, 譚穎輝, 葛永玲, 等. 離斷下齒槽神經(jīng)對(duì)兔下頜骨骨折愈合影響的實(shí)驗(yàn)研究[J]. 口腔頜面外科雜志, 2006,16(1):19-22.
[11] Sherman B E, Chole R A. Effect of chemical sympathectomy with 6-hydroxydopamine on osteoclast activity in the gerbilline middle ear bulla[J].OtolNeurotol, 2001,22(2):237-241.
[12] Togri A, Arai M, Mizutani S,etal. Expression of mRNAs for neuropetide receptors and beta-adrenergic receptors in human oseoblasts and human osteogenic sarcoma cells[J].NeuroscienceLetters, 1997,233(2-3):125.
[13] Takeda S, Elefteriou F, Levasseur R,etal. Leptin regulates bone formation via the sympathetic nervous system[J].Cell, 2002,111(3):305-317.
[14] Elefteriou F, Ahn J D, Takeda S,etal. Leptin regulation of bone resorption by the sympathetic nervous system and CART[J].Nature, 2005,34(7032):514-520.
[15] Bonnet N, Brunet-Imbault B, Arlettaz A,etal. Alteration of trabecular bone under chronic beta2 agonists treatment[J].MedSciSportsExerc, 2005,037(9):1493-1501.
[16] Okada Y, Hamada N, Kim Y,etal. Blockade of sympathetic beta-receptors inhibits Porphyromonas gingivalis-induced alveolar bone loss in an experimental rat[J].ArchOralBiol, 2010,55(7):502-508.
[17] Sato H, Takeda Y. Proliferative activity, apoptosis and histogenesis in the early stages of rat tooth extraction wound healing[J].CellsTissuesOrgans, 2007,186:104-111.
[18] Haug S R, Berggreen E, Heyeraas K J. The effect of unilateral sympathectomy and cavity preparation on peptidergic nerves and immune cells in rat dental pulp[J].ExpNeurol, 2001,169(1):182-190.